Тест-культуры

Биологическую активность амфотерицина В определяют методом диффузии в агар с использованием тест-культуры andida utilis (Васильева, Могилевская, 1976). Помимо микробиологического предложен поляриметрический способ определения амфотерицина В (Берштейн и др., 1970). [c.68]

При проведении лабораторных и промысловых исследований отдельных видов биоповреждений и разработке химических средств защиты изучали наличие и активность микроорганизмов в соответствующих точках системы пласт-скважина-наземное оборудование на устьях нагнетательных и добывающих скважин, из призабойных зон при изливе скважин и по цепи подготовки нефти и сточных вод. Общее количество гетеротрофных бактерий (ГТБ) и отдельные группы бактерий определены в закачиваемых и добываемых водах более 30 характерных месторождений. Основное внимание из-за особой опасности уделено группе сульфатвосстанавливающих бактерий (СВБ). Эту группу бактерий определяли во всех случаях, а при лабораторных испытаниях использовали в качестве тест-культуры. [c.37]

Известно несколько сот видов грибов (см. гл. 1), способных вызывать повреждения разных субстратов. Перечень тестов культур их по стандартам включает до 20 видов (табл. 7). С учетом [c.30]

Исследования микроорганизмов включают идентификацию их до вида исследование морфологических, культуральных и физиологических признаков характер взаимодействия с другими видами, родами и группами определение адаптации и особенностей изменчивости исследование продуктов метаболизма изучение биохимических особенностей и эффектов воздействия на различные материалы исследование условий стимулирования и подавления развития, выявление биоцидов и биостатических веществ определение опасности для человека и теплокровных принятие решения о депонировании и использовании микроорганизмов в качестве тест-культур для испытания биостойкости материалов и покрытий, в качестве продуцентов, стимулирующих или ингибирующих повреждения материалов (коррозию, старение и т. п.) определение целесообразности патентования и стандартизации новых штаммов культур с учетом их полезных свойств. [c.60]

В качестве тест-культур микроорганизмов нужно выбирать штаммы с высокой ферментативной активностью, способные расщеплять соответствующий субстрат с минимальной антагонистической активностью в отношении сочетаемых видов. Виды, специфичные для конкретного материала, нужно применять в виде чистых культур [32, с. 181]. [c.75]

Состав питательных сред для выращивания тест-культур, получения спор и определения активности антибиотиков [c.221]

Определение свободной П. к. и ее солей осуществляют колориметрич. методами, основанными на цветных р-циях продуктов их гидролитич. расщепления в кислой или щелочной среде, методом газо-жидкостной хроматографии производных П. к. и продуктов ее распада или микробиол. методами с тест-культурами. КоА определяют спектральным методом при X 260 нм, посредством колориметрич. р-ций на [c.444]

На основе выявленной закономерности оказалось возможным обнаруживать антибиотики-полиены непосредственно в культуральной жидкости и мицелии продуцента. Ингибирующее действие актиномицетов, продуцирующих антибиотики-полиены, в отношении дрожжевых тест-культур заметно уменьшается в присутствии холестерина, который при этом не снимает подавляющего действия продуцентов других противогрибковых антибиотиков (табл. 35). Аналогичная картина наблюдается и при работе с культуральными жидкостями, а также экстрактами из культуральных жидкостей и мицелия этих актиномицетов. [c.137]

Определение фитотоксичности методом проростков. Метод основан на реакции тест-культур при внесении в почву удобрений, мелиорантов, загрязняющих веществ и т. п. По сути дела, этот метод позволяет выявлять токсичное (ингибирующее) действие тех или иных веществ, и стимулирующее влияние, активизирующее развитие тест-культур. Семена тест-культур высеваются в вегетационные сосуды или лабораторные стаканы, заполненные почвой с добавками изучаемых веществ, или загрязненной и незагрязненной почвой. В ходе опыта фиксируют всхожесть, энергию прорастания, длину надземной и корневой систем, массу сухого вещества надземной и подземной части. [c.224]

Приготовление тест-культур [c.171]

Свежеприготовленную тест-культуру мож но заменить суспензией этой культуры в подходящем растворителе, таком, как стерильный пептон (1 г/л)ИР2, которая хранилась замороженной при —70 °С перед употреблением суспензию соответствующим образом оттаивают. [c.171]

Для проверки способности каждой культуральной среды поддерживать рост микроорганизмов необходимо использовать штаммы микроорганизмов с точно установленными питательными и аэробно-анаэробными потребностями в тест-культуре, содержащей лишь небольшое число организмов (менее 100). Среду следует инкубировать при той же температуре, при которой она будет использоваться в испытании на стерильность наличие роста должно быть очевидным через 24 ч. [c.174]

Хранение и подготовка тест-культуры для анализа музейную культуру выращивают на скошенной агаровой среде и хранят в холодильнике. Один раз в месяц культуру пересеивают на свежую среду и после переноса выдерживают от 16 до 18 ч при 37 °С. [c.51]

Обе среды разливают в пробирки по 5 мл, стерилизуют насыщенным паром под давлением в паровом стерилизаторе при 1 ати (0,1 МПа) 20 мин. Пробирки охлаждают в наклонном положении. На скошенный агар делают посев музейной культуры. Тест-культуру инкубируют от 16 до 18 ч при 37 °С и используют для приготовления посевного материала. [c.51]

Определение проводят не менее двух раз. Колбы закрывают ватными пробками и стерилизуют насыщенным водяным паром в паровом стерилизаторе при 1 ати (0,1 МПа) 15 мин. После охлаждения в каждую колбу вносят по 2 капли разведенной взвеси тест-культуры. Засеянные колбы инкубируют при температуре от 29 до 30 °С 48—72 ч. Для прекращения роста дрожжевой культуры все колбы подвергают обработке текучим паром в течение 5 мин. После этого колбы охлаждают и интенсивность роста тест-культуры в колбах с растворами рабочего стандартного и испытуемого образцов измеряют на фотоэлектроколориметре-нефелометре при длине волны около 540 нм в кювете с толщиной слоя 10 мм. [c.59]

Для заражения питательных сред допускается использование лиофилизированных тест-культур с точно известным содержанием количества микробных клеток (спор) в ампуле, которые после суспендирования в соответствующем растворителе (растворе натрия хлорида изотонического 0,9 % или дистиллированной воде) вносят в питательную среду без предварительного пересева. [c.220]

Место отбора почвенных образцов Среда для выделения Среда для изучения антибиотических свойств Тест-культуры Литерату- ра [c.145]

По окончании инкубации в термостате (время ее зависит от скорости роста тест-культуры) вокруг агаровых блоков с антибиотиками возникают зоны, где не наблюдается роста тест-организма. По диаметру зоны судят о его чувствительности к тем или иным антибиотикам. [c.85]

При использовании метода штриха на питательный агар в чашки Петри по диаметру высевают культуру продуцента антибиотика. К выросшему организму вплотную подсевают перпендикулярно штрихи тест-культуры. Нечувствительные к антибиотику тест-куль-туры развиваются от края штриха продуцента. Чем чув- [c.85]

Одним из перспективных является метод меченых культур грибов радиоактивным Р з, Он позволяет оценить интенсивность внедрения гриба в полимерные материалы и определить их грибо-стойкость. Одновременно оценивается и активность гриба. Этим методом выявлено, что гриб А. niger растет только на поверхности образцов, поэтому использовать его в качестве тест-культуры при исследованиях грибостойкости материалов нецелесообразно. [c.75]

Исследования биоповреждаемости органических жидкостей и топлив показали, что в основном меняются их кислотность и оптическая плотность. Причем об изменении этих характеристик можно судить по критерию наличия биомассы отсутствие ее — топливо устойчиво, количество биомассы до 0,7 г/л — умеренное поражение, св. 0,7 г/л — интенсивное поражение микроорганизмами (см. табл. 14). Испытания проводят по методу инкубации смеси топлива с водноминеральной (питательной) средой и определенными видами микроорганизмов. Условия — благоприятные для развития тест-культур [32, с. 67]. [c.76]

Установлена зависимость между диаметром зоны подавления роста тест-культуры и логарифмом концентрации трилана в растворе. Интервал определяемых концентраций трилана 5...100 мкг в 0,1 мл раствора. Погрешность — не более 10 % [8, с. 66]. Метод целесообразно применять при анализе следов трилана в окружающей среде. [c.84]

Выбор тест-культур. Желательно иметь быстро прорастающие культуры, которые обычно выращиваются в хозяйствах изучаемого региона. Так, для изучения дерново-подзолистой почвы нередко используют овес как представитель злаковых несимбиотрофных растений и горох — представитель бобовых, способных к азотфиксации. Для степных почв можно взять пшеницу, люцерну, бобы, фасоль. Важно, чтобы были использованы одновременно растения, фиксирующие и не фиксирующие азот. [c.224]

В стеклянные стаканы помещают по 100 г субстрата (смеси или почвы), увлажняют его до 70 % от ПВ (и такую влажность поддерживают в течение всего опьгга) и в каждый сосуд высевают по 13 семян тест-культуры. На четвертые сутки стаканы помещают на световой стеллаж с освещением в течение 14 ч в сутки (с 6 до 20 ч). В этих условиях тест-культуры выращивают в течение двух недель. [c.225]

Bordetella bron hisepti a. Тест-культуру выращивают в течение ночи на культуральной среде Кс2 (pH 6,5—6,6 после стерилизации) три температуре 35—37 °С. Суспензию готовят смыванием культуры и разведением изотоническим стерильным раствором ИР или водой до определенной степени мутности взвеси, такой, например, при которой слой толщиной 1 см при 650 нм пропускает 50% падающего света. Суспензию можно хранить в течение 2 нед при температуре не выше 4°С. [c.171]

Аспарагин растворяют отдельно в 10 мл воды с прибавлением 2 капель раствора хлористоводородной кислоты (1 моль/л) при слабом подогревании и прибавляют к раствору солей устанавливают pH полученной смеси до 7,0 15 % раствором едкого натра, доводят объем среды водой до 100 мл, прибавляют 0,2 г глицерина и 1,5 г агара микробиологического. Смесь подогревают на водяной бане до полного растворения агара, затем прибавляют 10 мкг цианокобаламина. За сутки до проведения анализа тест-культуру пересевают на скошенный пептонно-солевой агар следующего состава [c.51]

Приготовление посевного материала делают смыв суточной тест-культуры со скошенного пептонно-солевого агара раствором натрия хлорида изотоническим 0,9 %. Плотность микробной взвеси должна быть от 1 до [c.52]

Поддержание тест-культуры 5. 1ис1м1Г1ди КМ поддерживают на скошенном сусло-агаре, приготовленном из солодового сусла, доведенного до 7 °Б (Баллинга) с помощью сахарометра, с добавлением 1,5% агара микробиологического. Инкубацию ведут при температуре от 29 до 30 С в течение 48 ч. Тест-культуру хранят при температуре от 4 до 6 С, пересевают не реже одного раза в месяц. [c.60]

Для получения эпифитных стимуляторов растений используют отобранные по биологическим тестам культуры родов Pseu- [c.130]

М. В. Бибикова и др. (1975) предложили метод ранней идентификации продуцентов полиеновых антибиотиков, основанный на взаимодействии полиенов и стероидов в агаризо-ванных средах ингибирующее действие полиеновых антибиотиков на засеянную тест-культуру может ослабевать или вовсе не проявляться. [c.136]

Для проведения нитратного теста культуру засевают в нитратный бульон Барретта или полужидкую среду Мюллера—Хинтона с 0,2 % нитрата калия и инкубируют в оптимальных условиях. При положительном результате после добавления в пробирку тест-реактива (сульфоновая кислота + нафтиламин) развивается красное окрашивание. [c.221]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология