Электрофорез в в ацетилцеллюлозе

Электрофорез проводят либо в свободной незакрепленной среде (в свободной жидкости) — фронтальный электрофорез, либо в закрепленной среде — зональный электрофорез — на крупнопористых носителях (фильтровальная бумага, целлюлоза, порошкообразная пластмасса, агар-агар, ацетилцеллюлоза, стеклянный порошок) или на мелкопористых носителях (силикагель, полиакриламидный гель, целлюлоза, оксид алюминия, крахмал и др.). [c.237]

Такое возрождение ТСХ повлекло за собой и возобновление интереса к электрофорезу на твердых носителях (ацетилцеллюлозе [c.458]

Ионообменная ТСХ гидрофильных белков вполне возможна, но ее практически оттеснил более совершенный метод электрофореза в полиакриламидном геле и пленках ацетилцеллюлозы (последний метод нашел себе применение для клинических анализов физиологических жидкостей). [c.490]

Иногда электрофорез в ацетилцеллюлозе используют в сочетании с электрофорезом на бумаге [29] или с повторным электрофоретическим разделением в другой среде. В одной из недавно вышедших работ [30] показано, что ацетилцеллюлоза является идеальной опорной средой для иммуноэлектрофореза. [c.260]

При электрофорезе на тонком слое носителя для разделения неорганических ионов имеет значение выбор подходящего электролита и сорта носителя. Возможность варьирования в выборе носителя также является преимуществом метода неорганического тонкослойного электрофореза. В качестве носителя в этом методе используют ацетилцеллюлозу [102] и целлюлозу [139], кварцевый песок [97], крахмал [435], соли гетерополикислот [275], кизельгур [295], силикагель с крахмалом [78, 419] или с гипсом [120], смесь тефлона и целлюлозы [109], фотографический желатин [261] и другие. [c.127]

Электрофорез на ацетилцеллюлозе можно проводить при напряжении около 5000 В, что увеличивает скорость разделения, не ухудшая его качества. - Прим. ред. [c.272]

В качестве пористого носителя для зонного электрофореза используют различные вещества фильтровальную бумагу и картон, стеклянный порошок, кварцевый песок, крахмал, ацетилцеллюлозу, агар-агар и любой другой пористый материал, не проводящий электричество. Наибольшее распространение благодаря своей простоте получил зонный электрофорез на бумаге [7, 18—22]. [c.26]

Электролит можно стабилизировать в вертикальной колонке путем создания градиента его плотности в направлении от верхнего конца колонки к нижнему, однако обычно неподвижность электролита обеспечивается в результате его абсорбции различными природными или синтетическими полимерами. В соответствии с природой носителя различают методы электрофореза на бумаге, мембранах из ацетилцеллюлозы, в гелях агара или крахмала, полиакриламидном геле и т. п. Электрофоретические методы можно также классифицировать по способу разделения или по типу применяемой аппаратуры (например, колоночный и тонкослойный электрофорез). [c.28]

Пример, на ацетилцеллюлозе), а также методом бумажного электрофореза. В статьях [1, 2] обобщены данные по плоскостным методам разделения, и каждому специалисту, начинающему работать в указанной области, следует прежде всего ознакомиться с этим материалом. [c.316]

ЭЛЕКТРОФОРЕЗ ГЕМОГЛОБИНОВ НА АЦЕТИЛЦЕЛЛЮЛОЗЕ [c.241]

Из сорбентов для проведения электрофореза в тонком слое наиболее часто применяют целлюлозу и силикагель. Однако работают также на ацетилцеллюлозе, кварцевом песке, кизельгуре, смеси тефлона с целлюлозой. Органические соединения разделяют на кизельгеле. [c.159]

Двумерное фракционирование олигонуклеотидов в первом направлении — электрофорезом в кислом пиридин-ацетатиом буфере на полоске ацетилцеллюлозы, во втором — гомохроматографией или элюцией солевым градиентом на пластинке ДЭАЭ-целлюлозы. [c.460]

Гидролиз примерно 20 мкг Р-РНК рибонуклеазами Т1 или А (1 мкг) воли в капилляре, в объеме 3—5 мкл на старт полоски ацетилцеллюлозы наносили всю иикубацноииую смесь. Электрофорез вели в кислом водио-оргаиическом буфере (pH 3,5), содержащем 0,5% пиридина, 5% СН3СООН и 7,5 М мочевины. Полоску размером 3 X 55 см предварительно замачивали — клали иа открытую поверхность буфера, давая возможность жидкости постепенно впитываться в материал полоски с нижией ее поверхности так удавалось избежать задержания в сетке ацетилцеллюлозы микропузырьков воздуха. Затем один конец полоски подсушивали и наносили нрепарат на старт, в 10 см от конца. По обеим сторонам от препарата наносили маркерные красители (метилоранж, фуксин и ксилепциа- [c.496]

Рис. 170. Устройство для осуществления высоковольтного электрофореза гидролизата РНК на полоске ацетилцеллюлозы [ВаггоИ, 1971]

Такую смесь меченых фрагментов олигонуклеотида снова подвергают двумерному фракционированию электрофорезом на ацетилцеллюлозе и гомохроматографией на ДЭАЭ-целлюлозе, как описано выше, а затем проводят авторадиографию. Однако теперь вместо разбросанных по всей иластпнке иятен фингерприита получается зигзагообразная цепочка следующих друг за другом пятен (рис. 173), анализ расположения которых дает информацию о последовательности нуклеотпдов в олигонуклеотиде. [c.504]

Исключительно четкое разделение белков в микромасштабах получают на полосках ацетилцеллюлозы [28]. Этот материал практически является гелем, очень хрупким в сухом состоянии, но вполне прочным и мягким во влажном виде. Он поступает в продажу в очень чистой фэрме в виде полосок шириной 5 см (фирма Охо Ltd , London). llpn электрофорезе в этой среде соблюдаются в основном те же принципы, которые уже обсуждались при описании электрофореза на бумаге. При этом используют несколько меньшую плотность тока 0,4—0,5 лш на I см ширины полосы, во избежание чрезмерного испарения и появления обожженных участков. Иногда бывает трудно доэиться равномерного увлажнения полос. На- [c.259]

В некоторых случаях тонкослойный электрофорез превосходит электрофорез на бумаге и тонкослойную хроматографию. Так, например, предложенный в работе [102] метод дает гораздо меньший разброс результатов при анализе РЗЭ, чем электрофорез на бумаге и ТСХ. В упомянутой работе авторами было показано, что на тонких слоях ацетилцеллюлозы (0,24—0,30 мм), предварительно в течение 1 часа пропитанных 0,2—0,4 М раствором а-оксиизомасляной кислоты, электрофоретическим методом хорошо разделяются все РЗЭ и особенно тяжелые (сила тока 8,2—8,7 ма, градиент потенциала 40— 80 б1см). Пятна РЗЭ тем компактнее, чем меньше количество нано- [c.128]

При этом олигонуклеотиды вначале разделяют электрофорезом на полоске ацетилцеллюлозы. Затем вещество с полоски ацетилцеллюлозы переносят на лист DEAE -бумаги и [c.56]

Как кратко описано в гл. 4, для разделения олигонуклеотидов, содержащихся в нуклеазном гидролизате, сначала применяют электрофорез на полоске ацетилцеллюлозы, затем полученные пятна переносят с полоски на лист DEAE -бумаги и вновь проводят электрофорез при низких значениях pH в направлении, перпендикулярном первоначальному. Радиоак- [c.264]

Буфер для электрофореза на ацетилцеллюлозе содержит 0,5% пиридина, 5% уксусной кислоты и 0,001 М ЕОТАв [c.270]

По окончании электрофореза ток выключают, осторожно вынимают рамку из камеры и дают бумаге высохнуть. Положение голубого маркера отмечают радиоактивными чернилами и для проведения радиоаутографии бумагу разрезают на две части. Обычно для экспозиции достаточно 8 ч, если на полоску ацетилцеллюлозы нанесено 3-10 имп/мин Положение пятен на экспонированной пленке соответствует положению радиоактивных пятен на DEAE-бумаге. Пятна на бумаге обводят карандашом, нумеруют и вырезают. [c.274]

Фильтровальная бумага из-за ее пригодности для многих разделений и доступности остается наиболее популярной в качестве стабилизирующей среды, особенно для систем, в которых не требуется анализа большого количества компонентов. Если разрешающая сила является чрезвычайно важным фактором разделения смеси,то вместо бумаги используют полоски ацетилцеллюлозы, которая обладает большей проницаемостью для продвижения крупных молекул, например,протеинов. В качестве других пористых носителей буферного электролита были предложены картон, стеклянный порошок, кварцевый песок, ряд дающих лучшее разделение, чем бумага гелей (крахмал, агар-агар, акриламад, поливинилхлорид и др). Помимо этого для разделения небольших количеств смесей использовали тонкие пленки кизельгура, а также специальную асбестированную бумагу для электрохроматографии в расплавленных солях. Если объемы образца больше, чем те.которые могут быть нанесены на фильтровальную бумагу или тонкий слой другого носителя, можно применять колонки, заполненные тем или иным пористым материалом. Для препаративных разделений существуют различные мод икации установок непрерывного электрофореза,в которых используется ряд рассмотренных выше носителей. [c.163]

Наибольшее распространение получил электрофорез в твердых поддерживающих средах целлюлозе, ацетилцеллюлозе, геле агар-агара, крахмальном и полиакриламидном гелях. На электрофореграммах белки выявляют с помощью красителей амидового черного (амидошварц 10В), бромфеноло-вого синего, кумасси бриллиантового голубого и др. [c.28]

При электрофорезе белков используют мембраны из ацетилцеллюлозы. Как было отмечено, мембраны из нитроцеллюлозы сильно связывают макромолекулы и поэтому их нельзя применять для электрофореза. Сотрудники фирмы Гелман провели обширные исследования [80], чтобы определить, какой тип полимерной мембраны является лучшим для электрофо- [c.325]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология