Ацетаты целлюлозные

ЭЛЕКТРОФОРЕЗ НА АЦЕТАТ-ЦЕЛЛЮЛОЗНОЙ МЕМБРАНЕ [c.14]

Сравнительно новой разновидностью зонального электрофореза является электрофорез на ацетат-целлюлозной мембране [6]. Ацетат-целлюлозная мембрана, по-видимому,— очень хорошая поддерживающая среда, уже нашедшая благодаря ряду достоинств широкое применение. Выше мы отмечали, что приготовление крахмального и агарового гелей—довольно трудоемкая операция, осложняющая метод. В то же время способы предварительной обработки ацетат-целлюлозной мембраны почти так же просты, как и в случае с фильтровальной бумагой. При этом разделение белков происходит лучше и быстрее, а для анализа достаточно 5—1000 мкг белка, растворенного в объеме 0,1—10 мкл. Как белки, так и гликопротеиды очень хорошо окрашиваются на ацетат-целлюлозной мембране, поэтому она является прекрасной поддерживающей средой с точки зрения количественной оценки этих соединений. Электрофорез на ацетат-целлюлозной мембране позволяет получить больше белковых фракций сыворотки крови, чем электрофорез на бумаге, но меньше, чем электрофорез в крахмальном геле. С помощью электрофореза на ацетат-целлюлозной мембране можно определять весьма малые количества индивидуальных белков, благодаря чему он очень подходит для анализа гомогенности выделенного нативного белка. Ацетат-целлюлозные мембраны могут быть использованы также в опытах по иммунодиффузии, что является еще одним достоинством этого метода электрофореза. [c.14]

Б. ЭЛЕКТРОФОРЕЗ НА АЦЕТАТ-ЦЕЛЛЮЛОЗНОЙ МЕМБРАНЕ [ 15] [c.71]

Принцип метода. Белки, нанесенные на смоченную буферным раствором ацетат-целлюлозную мембрану, мигрируют в электрическом поле в соответствии с общим зарядом их молекул. [c.71]

Камера для электрофореза. На фиг. 6 схематически представлена камера, которую предложил Кон [15] специально для электрофореза на ацетат-целлюлозной мембране. [c.71]

Окрашивать ацетат-целлюлозную мембрану можно так же, как бумажную электрофореграмму (см. стр. 54), либо используя пунцовый 5 (см. стр. 73). [c.72]

Описанный микроэлектрофорез на ацетат-целлюлозной мембране позволяет анализировать от 5 до 1000 мкг белка, при этом разделение происходит лучше, чем при электрофорезе на бумаге. Значительными достоинствами этого метода являются быстрота фракционирования и весьма малое количество необходимого для исследования материала. [c.72]

Электрофорез на ацетат-целлюлозной мембране можно проводить практически в любой камере для горизонтального электрофореза, в которой размещаются полоски длиной свыше 8—10 см. Контакт с буферным раствором может осуществляться непосредственно концами мембраны или полосками фильтровальной бумаги. [c.72]

ОКРАШИВАНИЕ АЦЕТАТ-ЦЕЛЛЮЛОЗНЫХ ЭЛЕКТРОФОРЕГРАММ. [c.73]

Примененные Коном (стр. 71) для электрофореза ацетат-цел-люлозные мембраны могут быть также успешно использованы в опытах по иммунодиффузии, Ацетат-целлюлозные мембраны лишены ряда недостатков, присущих агаровому гелю. [c.161]

Принцип метода. Раствор белкового антигена Ги специфическая иммунная сыворотка, диффундируя навстречу друг другу на ацетат-целлюлозной мембране, в месте встречи образуют полосы преципитации. [c.161]

Электрофорез на ацетат-целлюлозных мембранах описан на стр. 71. По окончании электрофореза на закрепленную в электрофоретической камере мембрану капиллярной пипеткой наносят иммунную сыворотку. Наносить следует по возможности одним движением на расстоянии 0,1—1,0 см от места нанесения исследуемого образца параллельно направлению его разделения при электрофорезе. После того как нанесенная иммунная сыворотка впитается, мембрану извлекают из электрофоретической камеры и погружают в вазелиновое масло. Остальные стадии методики те же, что и в предыдущем методе исследования (стр. 161). [c.162]

Интерпретация результатов иммунодиффузии и иммуноэлектрофореза на ацетат-целлюлозной мембране не отличается от описанной соответственно на стр. 131 и 142. [c.162]

Ацетат-целлюлозная пленка Ацетобутират-целлю-лозная пленка Полиэфирные смолы с поперечными связями Нет [c.558]

Но наиболее подходяш,ими по совокупности свойств в большинстве случаев оказываются порошки целлюлозы и крахмала, а из листовых материалов — бумага и (в последнее время) ацетат-целлюлозные мембраны. Реже применяются другие материалы — порошок стекла, пористая резина и т. д. [c.81]

Иммунодиффузию можно сочетать с электрофорезом не только на бумаге, но и на ацетат-целлюлозных мембранах, в крахмальном геле и т. д. Этот метод нашел широкое применение при исследовании белков благодаря высокой специфичности реакции преципитации и очень хорошей разрешаюш,ей способности. Пример разделения приведен на рис. 18. Подробно иммуноэлектрофорез описан в обзорах [33, 52]. [c.100]

Выше были описаны только основные электрофоретические методы. Кроме них, существует огромное множество их модификаций, приспособленных для специальных целей препаративного разделения в растворе, разделения микроколичеств вещества на ацетат-целлюлозных волокнах, непрерывный электрофорез, электрофорез в сочетании с хроматографией и т. д. Электрофорез является очень щадящим методом на его результаты сравнительно слабо влияют неконтролируемые изменения условий разделения pH, температуры, ионной силы раствора растворы разделяемых веществ практически не разбавляются. Несомненно, что метод находится еще в стадии развития. Особенно это относится к электрофорезу в градиенте плотности и в гелях. [c.106]

При пропускании воды и соли через асимметричные ацетат-целлюлозные ГФ-мембраны энергии активации уменьшаются при увеличении содержания воды в мембране (см. рис. 2.30). Эффект повышения температуры проявляется в уменьшении размеров водных кластеров (табл. 2.9), что, в свою очередь, вызывает увеличение диэлектрической постоянной упорядоченной воды. Размер водородной связи и доля более класти-рованных водных единиц при повышении температуры при этом уменьшаются (табл. 2.10). [c.75]

Данные очистки сточных вод на ацетат-целлюлозных мембранах при давлении 10,0 МПа [c.259]

В агаровом геле или на ацетат-целлюлозной мембране белковый антиген и специфические антитела диффундируют навстречу друг другу и образуют в месте контакта линии преципитации, которые можно видеть невооруженным глазом или выявить специальным окрашиванием. При анализе двух белковых смесей, например двух разных сывороток или выделенных нативных белков, с помощью этого метода можно не только узнать число индивидуальных белков, присутствующих в нашей системе, но и получить данные об их имму-нохимической идентичности, родственности или различиях. Все эти выводы могут быть сделаны на основании числа и взаимного расположения линий преципитации. [c.20]

В продаже имеются Й1сты ацетат-целлюлозной мембраны размером 54 х 57 см. Их можно использовать для электрофореза в крупногабаритных приборах. [c.72]

И. ИМНУНОДИФФУЗИОННЫЙ АНАЛИЗ БЕЛКОВ НА АЦЕТАТ-ЦЕЛЛЮЛОЗНЫХ МЕМБРАНАХ [13] [c.161]

Из листа ацетат-целлюлозной мембраны вырезают круг нужного диаметра и карандашом или недиффундирующей краской отт мечают на нем места йанесения антигена и иммунной сыворотки. Затем мембрану смачивают буферным раствором, осторожно промокают фильтровальной бумагой и в горизонтальном положении помещают во влажную камеру (например, на дно чашки Петри, крышка которой изнутри выстлана влажной фильтровальной бумагой). [c.161]

Сточные воды целлюлозно-бумажных предприятий обычно содержат взвешенные твердые вещества и волокна, поэтому используются трубчатые обратноосмотические системы. Проницаемость ацетат целлюлозных мембран для воды и растворенных веществ можно изменять в широком интервале путем варьирования температуры термообработки мембран при их формировании. Следовательно, можно получать и использовать мембраны со свойствами, охватывающими интервал от высоких скоростей потока и низкого задерживания до низких скоростей цотока и высокого задерживания. Исходя из этого, в качестве оборудования, наиболее пригодного для [c.259]

Одним из недостатков бумаги является заметная адсорбция и денатурация белков на ней. Практически это явление всегда в той или иной мере имеет место. В этом отношении многообещающим является сравнительно новый листовой материал — пористая ацетат-целлюлозная пленка, применяемая обычно для изготовления мембранных фильтров. Начало применению этого материала было положено Коном в 1957 г. Сейчас некоторые фирмы производят листы довольно больших размеров (36x5 сж), хотя можно работать и с меньшими листками. Толщина листка такова (около 0,1 мм), что позволяет работать лишь с малыми количествами вещества (около 0,1—20 мкл раствора, содержащего 5— 500 мкг белка). Было показано, что адсорбция белка крайне мала, разделение обычно очень хорошее даже для тех белков, которые сильно адсорбируются на бумаге (инсулин, лизоцим). После окрашивания зон, погрузив листок в жидкость с показателем преломления, близким к 1,474, можно сделать его полностью прозрачным как для видимого света, так и для ультрафиолета, что облегчает количественный анализ. Подробное описание методики работы с ацетатом целлюлозы можно найти в работе [35]. [c.93]

Гемоглобины дают очень интересный материал для изучения генетических мутаций у высших животных и человека. Их разделение и идентификация осуществляются обычно на бумаге или ацетат-целлюлозной мембране при pH 6,5 в фосфатном или како-дилатном буфере, хотя отличия в электрофоретической подвижности между некоторыми из них очень невелики. Электрофорез в гелях, обладающий гораздо большей разрешающей силой, все чаще применяется для вышеуказанной цели [53]. [c.103]

Более точный метод определения механических примесей изложен в ГОСТ 10577—78. Испытываемое топливо фильтруют через мембранный нитроцеллюлозпый фильтр № 5 или ацетат-целлюлозные Владипор марки МФА-МА № 9 с размером пор 0,8-=-0,95 мкм. Затем определяют массу механических примесей, задерживаемых фильтром. Мембранный фильтр с осадком вынимают из специальной воронки для фильтрования, помещают на часовое стекло и сушат в течение 30 мин в сушильном шка- [c.226]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология