Агар минеральный

Примечание графы 1 — основной минеральный раствор, 2—минеральный раствор с ПАВ, 3 — то же, с глюкозой, 4 — некомплектный агар, 5 — комплектный агар, б — голодный агар, 7 — среда для хранения штаммов. [c.64]

Аэрация. Всем облигатным аэробам в качестве акцептора электронов необходим молекулярный кислород. Для бактерий, растущих на агаре или в тонких слоях жидкости в присутствии воздуха, кислорода обычно вполне достаточно. В жидких средах при большом объеме жидкости аэробные бактерии могут расти только на поверхности, так как в более глубоких слоях по мере удаления от поверхности условия приближаются к анаэробным. Для нормального роста аэробных микроорганизмов в глубоких слоях жидкой культуры требуется аэрация. Микроорганизмы способны использовать только растворенный кислород. В то время как минеральные соли и органические вещества можно добавлять к среде в концентрациях, обеспечивающих рост бактерий на протяжении нескольких часов и даже дней, с молекулярным кислородом этого еде- [c.181]

Б и Д, заполнен хлористым калием и агар-агаром. Сосуд с анодом закрыт слоем минерального масла А. [c.50]

Л —СЛОЙ минерального масла Б —анод Л— раствор содержащий топливо, электролит и катализаторы (бактерии или ферменты) Г —мостик с КС] и агар-агаром Д —катод — раствор, содержащий окислитель и электролит. [c.50]

Определение количества бактерий группы кишечной палочки в этих водах производится методом мембранных фильтров, в соответствии с требованиями ГОСТа 5216-50, со следующими дополнениями после фильтрации исследуемого объема воды мембранный фильтр дважды промывают небольшим количеством (5 мл) стерильной водопроводной воды для удаления из фильтра остатка минеральных солей и затем уже укладывают его на фуксин-сульфитный агар. [c.169]

Существуют различные методы испытаний смазок на микробиологическую стабильность стационарные методы испытаний в чашках Петри на сусловом и минеральном агаре, а также микробиологическое разрушение смазок, нанесенных на металлические пластинки. Оценку роста микроорганизмов проводят, как правило, по пятибалльной системе О — отсутствие роста грибков на поверхности смазки, 5 — грибки полностью покрывают смазку. Испытания с нанесением смазок на металлические пластинки позволяют более четко судить об их микробиологической стабильности. [c.293]

В медицине применяются многочисленные препараты, содержа- щие минеральное масло вместе с другими слабительными сред-, 7 ствами, например вазелиновое масло и агар вазелиновое масло агаром и крушиной вазелиновое масло с агаром и магнезиальным молоком вазелиновое масло с агаром и фенолфталеином. Обычно эти препараты представляют собой эмульсии, которым придан приятный вкус и запах. [c.16]

Агар уже в течение длительного времени применяется в бактериологии как ценная среда для культур. В фармации агар употребляют или в отдельности или вместе с другими веществами, например минеральным маслом и фенолфталеином при лечении хронического запора. При введении в кишечник агар не переваривается, благодаря поглощению воды набухает и увеличивает объем содержимого кишечника. [c.198]

Культуры выращивают на косяках, в столбиках агара или в жидкой среде соответствующего состава. После появления достаточно хорошего роста в пробирку в стерильных условиях наливают слой минерального масла высотой не менее 2 см (косяки агара должны быть покрыты полностью) для защиты от высыхания, а также для уменьшения метаболической активности и замедления роста культур [5, 11]. [c.515]

Для производства посевного материала исходную культуру клубеньковых бактерий выращивают сначала на агаризованной среде, содержащей, например, отвар семян бобовых растений, 2% агара и 1% сахарозы, затем полученную культуру размножают в колбах на жидкой питательной среде в течение 1—2 сут при 28—30°С и pH 6,5—7,5. На всех этапах промышленного культивирования применяют питательную среду одного и того же состава, включающую такие компоненты, как мелассу, кукурузный экстракт, минеральные соли в виде сульфатов аммония и магния, мел, хлорид натрия и двухзамещенный фосфат калия. [c.82]

Посевной материал готовят на агаровых средах, содержащих до 2% сахарозы и минеральные соли. Культуру выращивают при 27°С около 3—5 сут. Об окончании процесса судят по полному покрытию поверхности агара слизистой массой коричневого цвета. Полученный посевной материал стерильно смывают с поверхности агара водой и переносят на подготовленный субстрат. Содержимое бутылок тщательно перемешивают, а затем термостатируют при 25—27°С. Культивирование продолжают до тех пор, пока в 1 г почвы или торфа количество бактерий достигнет 50 млн. Полученные таким образом препараты сохраняют свою активность в течение 2—3 мес. [c.85]

Агар, как указывалось выше, содержит примеси органических и минеральных веществ, которые иногда нежелательны. Чтобы избавиться от большинства из них, Рис. 36. Приготовление скошенной поступают следующим образом, агаризованной среды в пробирках Агар заливают водопроводной [c.52]

Выделение чистой культуры. Выделение чистых культур проводят путем получения единичных колоний на оптимизированных средах, дополненных 1,5% агара. Перед внесением агара при приготовлении минеральной среды ее нужно нейтрализовать до значения pH 6—7. В противном случае [c.61]

Для приготовления почвенного или торфяного азотобактерина испо5аьзуют хорошо культивированную, богатую перегноем почву или разлагающийся торф с нейтральной реакцией. Грубые частицы и примеси отделяют просеиванием. К просеянной почве или торфу добавляют 1—2 /о извести или мела и 0,1 о/о суперфосфата. Затем по 500 г этой смеси помещают в пол-литровые бутылки, увлажняют водой до 40—60% (по объему), закрывают ватными пробками и стерилизуют. Посевной материал выращивают на агаровых федах, содержащих 1—2% сахарозы и минеральные соли. Культуру инкубируют 3—5 сут при температуре 26—27°С до тех пор, пока поверхность агара не покроется слизистой массой. [c.128]

Отобранные простерилизованные семена помещают в чашку Петри с фильтровальной бумагой и оставляют в тонком слое стерильной воды. Посев проводят через сутки. К этому времени семена прорастают (длина проростков 3—5 мм). Расплавленной агаризованной минеральной средой с помощью стерильных пипеток заполняют пространство между предметными стеклами в подготовленной системе. После застывания агара в каждую систему помещают три проростка. Посев проводят асептически. Далее по две таких системы устанавливают в пробирки с жидкой минеральной средой. Через сутки семена и среДу инокулируют тремя каплями густой суспензии двухсуточной культуры клубеньковых бактерий. Для исследований под микроскопом через 4—5 суток после посева, соблюдая условия асептики, осторожно стерильным пинцетом вынимают одну систему. Бритвой разрезают нитки. Одно предметное стекло удаляют На агар наносят каплю воды, на нее помещают покровное стекло и корни просматривают под микроскопом. [c.187]

Для определения количества жизнеспособных клеток в бактериальных препаратах используют соответствующие питательные среды. При установлении численности клеток азотобактера готовят безазотную минеральную среду Эшби, для быстрорастущих клубеньковых бактерий — бобовый агар (стр. 183), для медленнорастущих (соя, люпин) — маннитно-дрожжевой агар. [c.188]

Примечание. Опыты проводили в пробирках объемом 50 мл с 1 мл минеральной среды и 15 мл топлива. Суспензию спор гриба готовили смывом стерильной водопроводной водой с налета культуры на скошенном сусловом агаре. От мицелия суспензию освобождали фильтрованием через стерильную вату. Количество спор в суспензии подсчитывали под микроскопом в камере Горяева. Определенные объемы суспензии вносили в минеральную среду. Пробирки закрывали резиновыми пробками, обернутыми фольгой. Гриб культивировали неподвижно при 28. .. 30 °С. Сухую биомассу определяли с аомош,ью мембранных фильтров, используя на одно фильтрование весь объем культуры в пробирке. Знаком — отмечен рост очень слабый в виде тонкой прозрачной пленки. [c.513]

Содержит 70—80% полисахаридов, 10—20% воды, 1,5—4% минеральных веществ. Из агара выделены две фракции полисахаридов агароза — линeй[ ь й полисахарид, образованный из чередующихся остатков -D-галактопиранозы "и [c.5]

Третий метод — обработка водорослей водой с небольшим содержанием хлорной извести или гипохлорита натрия (возможно СЬ, Н2О2 и др.) при этом в раствор переходит 85—90% иода, большая часть минеральных солей, маннит и органические азотсодержащие вещества. Из раствора, содержащего 0,5 г/л иода в виде иодноватокислых солей, извлекают иод и маннит или только иод. Из оставшихся отбеленных водорослей получают агар-агар. [c.242]

В США для разведения хлопковой совки используется кормовой субстрат, состоящий из готовой смеси для детей, агара, дрожжей, аскорбиновой кислоты и смеси аминокислот и сахара, получаемой из зерна кукурузы (стимулятор питания гусениц) [1] кормовая смесь для личинок плодовых мух содержит 8,3% морковного порошка, 7,5—10% сухих дрожжей, 0,05% соляной кислоты, 0,007% ни-пагина и 81,7—84,2% воды [153]. Для выкармливания гусениц яблонной плодожорки применяют либо падалицу яблок [174], либо смесь из проростков пшеницы, казеина, целлюлозы, сахара, минеральных солей, 13 витаминов и желе-образующего вещества. Из этой кормовой среды приготовляют искусственные яблоки, в которые внедряются гусеницы [171] с 1 кв. м подносов " получают 5500 бабочек. [c.17]

АГАР (агар-агар) — продукт, получаемый из некоторых морских водорослей (агарофитов), характерным свойством к-рого является способность давать плотные гели. А. неоднороден содержит 70—80% полисахаридов, 10—20% воды, 1,5—4% минеральных в-в. В составе полисахаридов обнаружены D- и Ъ-галактозы, 3,6-ангидрогалактоза, пентозы, D-глю-куроновая кислота и пировиноерадная кислота химич. строение полисахаридов изучено мало. Получены две фракции полисахаридов агароза и амило-пектин. Агароза — линейный полисахарид, образованный из чередующихся остатков p-D-галакто-пиранозы и 3,6-ангидро а-Ь-галактопиранозы обладает ярко выраженной способностью к образованию гелей. Амилопектин является, по-видимому, смесью полисахаридов очень сложного строения, в состав к-рых входит глюкуроновая к-та и эфирно-связанная серная к-та. А. применяется в пищевой, особенно в кондитерской пром-сти, в микробиологии при приготовлении плотных сред для выращивания микроорганизмов. [c.13]

Сначала растворяют первые три компонента в дистиллированной воде, а затем добавляют индикатор и раствор минеральных элементов. Доводят pH до 7,2. Добавляют агар и смесь кипятят до растворения. Разливают по 9,0 мл в пробирки и стерилизуют, поместив на мгновение в автоклав с давлением водяного пара 1,54 10 Па. Охлаждают до 45—50°С. Во время автоклавирования может образоваться осадок, который при охлаждении растворяется. В каждую пробирку добав- [c.71]

Бактерии рода Pseudomonas выделяют обычно на мясо-пеп-тонном агаре, бактерии родов Arthroba ter, My oba terium — иа агаризованной среде, включающей равные объемы мясо-пептонного бульона и сусла. Для выделения нитрифицирующих бактерий используют минеральные среды с аммонием, для сульфатредуцирующих — специальные среды с сульфатами. [c.665]

Среда Плоскирева (бактоагар Ж). Выпускается в сухом виде и содержит питательный агар с лактозой, бриллиантовым зеленым, солями желчных кислот, минеральными солями и индикатором (нейтральный красный). Эта среда является не только дифференциально-диагностической, но и селективной, так как подавляет рост многих микро- [c.46]

Выращивали суспензию зрелых дифферепцироваппых клеток корней, стеблей или листьев моркови и табака. Затем по одпой клетке переносили в свежую жидкую среду. Возникали клоны из клеток табака — аморфные каллусоподобные массы клеток, из клеток моркови — небольшие сердцевидные скопления, очень похожие на нормальные зародыши моркови. Затем эти клоны переносили па твердый субстрат — почву или агар, обогащенный минеральными веществами и гормонами роста растений, и выращивали. В копце концов из них развивались нормальные растения с корнями, стеблями, листьями и даже цветами и семенами (рис. 13-3). Следовательно, в ходе дифференцировки клеток, послуживших родопачальниками клонов, весь геном сохранялся. [c.231]

Количественный учет ксантобактера. Выполняют в атмосфере Нг, СО2 и Q по Калининской-Редькиной. Можно определять численность методом предельных разведений на жидкой среде с метанолом. Состав среды на 1 л минеральная основа по Федорову -Калининской (см. с, 96) и витамины (можно использовать только биотин - 10 мкг/л), метанол - 2,0 г и дрожжевой автолизат - 0,06 г. Ацетилен вводят во флаконы на второй-третий день после посева. Количество образующегося этилена определяют на седьмые сутки инкубации. Численность рассчитывают по таблице Мак-Креди (см. табл. 2). Микроскопируют после высева на минеральные агаризованные среды с метанолом или на картофельный агар. [c.98]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология