ВИЧ хлоропластов гороха

Данная работа представляет собой обзор результатов, полученных в наших работах [5—8] количественный анализ спинового обмена макромолекул [7, 8] проводится с использованием нового теоретического подхода. Вначале излагаются способы определения величин Тх и и учета ядерной релаксации методом НН, затем рассматривается применение метода НН для изучения спинового обмена. макромолекул и регистрации выделения кислорода в хлоропластах гороха под действием света. [c.212]

Рнс. 7. Влияние света на амплитуду центральной компоненты спектра ЭПР зондов 5 и 6 в хлоропластах гороха [c.221]

Интенсивность эндогенного фотофосфорилирования сравнительно невелика (добавление ФМС и его производных стимулирует фотофосфорилирование у хроматофоров бактерий в 10, а у хлоропластов — в 2000 раз), но позволяет вполне удовлетворительно оценить роль условий проведения опытов в изменении интенсивности образования АТФ. Например, Нобелем (1967) были установлены оптимальные концентрации осмотически активных веществ, обычно используемых для создания среды, изотоничной по отношению к внутреннему содержимому хлоропластов. Так, для хлоропластов гороха оптимальной концентрацией сахарозы является 0,2 М, а в случае использования хлористого натрия — 0,075 М (фиг. 86). [c.191]

Кинетика затухания флуоресценции хлоропластов гороха [c.299]

Исследования тонкой структуры фотосинтетических мембран хлоропластов гороха и кукуру.зы (Л. К- Островская и др.) показали, что фракция 145 ООО д содержит в основном частицы [c.187]

Как видно из табл. 5.1, подобно ацетилхолину, его агонисты мускарин и ареколин стимулируют выход натрия и калия из интактных хлоропластов гороха и поглощение тилакоидами ионов Н" ". [c.58]

Пример аминокислотного состава очищенной холинэстеразы хлоропластов гороха приведен в табл. 5.5. [c.65]

Аминокислотный состав очищенной холинэстеразы из хлоропластов гороха [c.65]

Рис, 8.2, Концентрационная зависимость действия ацетилхолина бромида на выделение ионов Ка" и интактными хлоропластами гороха [c.111]

Ядра, митохондрии и хлоропласты растений, как сообщалось, также синтезируют белок. Ядра, тщательно выделенные из гороха, включают в белок меченый лейцин в присутствии других белковых аминокислот и АТФ. Синтез белка в митохондриях растений показан не очень убедительно, так как не было исключено загрязнение данной фракции рибосомами. Препараты хлоропластов, как обнаружено, также катализируют включение аминокислот в белок. [c.482]

Фиг. 29. Влияние освещения на объем хлоропластов у гороха.

Активные хлоропласты, способные к интенсивному фотосинтезу, обычно извлекают из листьев шпината и гороха. Интенсивность фиксации ОЮ2 у хлоропластов, извлеченных из листьев 12-дневного гороха, была равна 8,2, у 20-дневного — 2,0 и у 28-дневного — 0,4 мк М/мг [c.134]

Электрические заряды этих частиц и молекул создаются ионизированными группировками боковых цепей аминокислот, производных моносахаридов (уроновые кислоты, аминосаха-ра [92]), полярными группировками некоторых мембранных липидов (фосфолипиды и сульфолипиды хлоропластов). Отметим, однако, что мембраны хлоропластов гороха (ламеллы и оболочки) лишены гликопротеинов [54]. Электрические заряды повышают растворимость, когда значение pH отдалено от изоэлектрической точки частиц, создавая силы отталкивания между частицами одинакового знака электрического заряда. Наоборот, вблизи изоэлектрической точки суммарный заряд частиц равен нулю агрегация их облегчена. Так, изоэлектрическая точка рибулозобисфосфаткарбоксилазы/оксигеназы нескольких видов растений находится в диапазоне pH 4,4 и pH 4,7 [4], и вследствие этого все белые протеины осаждаются практически спонтанно при этих pH [60]. Точно так же поликатионные агенты, которые образуют мостики между частицами с отрицательными зарядами, благоприятствуют флокуляции (коагулированию) белков зеленого клеточного сока при изоэлектрической точке растворимых белков [2] либо осаждению зеленых белков посредством термокоагуляции [61]. Однако термокоагуляция обусловливается в первую очередь не ионными взаимодействиями, а перераспределением гидрофобных взаимодействий. [c.246]

Недавно Воскресенской с сотрудниками удалось обнаружить, что не только повышенные, но и обычные концентрации кислорода (21%) затормаживают интенсивность восстановления окислителя в реакции Хилла, по сравнению с низкими концентрациями (1—3%), у хлоропластов гороха при освещении светом красной области спектра. [c.182]

Хлорбромурон уничтожает многие сорняки как при проникновении через корни, так и через поверхность листьев. Он действует как сильный ингибитор реакции Хилла при фотосинтезе. На изолированных хлоропластах гороха сорта Аляска для хлорбромурона найдено 50 = 2,2-10 М, для метобромурона 2,1-10 М и для фторметурона 4,5-10 М [566]. [c.305]

Рис. 5.3. Зависимость 1 /Т2тах1с) от интенсивности действующего света (1св). Хлоропласты гороха

Рис. 7.9. А. Отсутствие индукции в изолированных хлоропластах гороха после кратковременного пребывания в темноте [38а]. Прежде чем жорость фиксации СО2 достигала максимума, должно было пройти несколько минут. Однако после кратковременного затемнения фиксация СО2 возобновлялась без заметной задержки. По окончании освещения фиксации СО2 в темноте не было. Б. Сохранение скорости фотосинтеза после темпового периода. Две одинаковые реакционные смеси содержали хлоропласты гороха и ортофосфат (10" М). Одну из них подвергали краткому затемнению (см. Л), а другую нет. Запись вели одновременно. С — свет, Т — темнота.

Рис. 8.18. Подавление фотосинтеза в хлоропластах гороха пирофосфатом. В отличие от шпината у проростков гороха мембраны хлоропластов имеют ббльшую проницаемость для пирофосфата, который оказывает ингибирующее действие, и для АТР, который снимает этот эффект (кривая I). Нормальное ингибирование ортофосфатом снимается ФГК, как и в случае шпината, но не АТР (кривая П) (Robinson, Wiski h, 1977).

В хлоропластах гороха (или в хлоропластах, выделенных из незрелых тканей) реакция на пирофосфат еще более осложняется действием многочисленных факторов. Так, пирофосфат может обмениваться с эндогенным АТР при помощи переносчика аденилатов (разд. 8.25), что приводит к ингибированию (рис. 8.18). Робинсон и Уискич высказали предположение, что пирофосфат может также проникать в хлоропласты с помощью переносчика ортофосфата (разд. 8.23), подвергаться внутри иих гидролизу и снижать экспорт промежуточных метаболитов в результате конкуренции с фосфоглицератом за транспорт из хлоропластов. Это объяснило бы тот факт, что ADP наряду с подавляющим действием на хлоропласты гороха (он либо ингибирует превращение ФГК в триозофосфат, либо создает дефицит ортофосфата за счет обмена между АТР и ADP) обладает стимулирующим действием, если его добавлять вместе с пирофосфатом (который сам по себе привел бы к ингибирова- [c.238]

Ацетилхолин стимулирует поглощение кислорода целыми и изолированными митохондриями корней Phaseolus aurus, но практически не влияет на отношение Ф/0 и утилизацию неорг анического фосфата. Ацетилхолин регулирует синтез АТФ в хлоропластах в низких концентрациях (< 10 М) - стимулирует фотофосфорилирование в хлоропластах гороха по сравнению с контролем, причем чем выше освещенность и температура, тем эффективнее низкие концентрации, а в более высоких - угнетает. [c.29]

Ацетилхолин и биогенные амины могут влиять на метаболизм растительных клеток путем регуляции активности фермешов или (и) включения в отдельные реакции в качестве субстратов. В концентрациях 10 -10 М ацетилхолин стимулирует пероксидазную активность в растительных тканях, а в более высоких - угнетает, при этом ингибирование достигает 50 %. Имеются данные об ингибировании ацетилхолином, адреналином и норадреналином активности светоиндуцируемой зависимой АТФазы хлоропластов гороха. [c.31]

Рис. 5.4. Влия1ше агонистов ацетилхолина на выход ионов Na из хлоропластов гороха, предварительно обработанных АХ

При анализе гидролиза ацетилхолина фракциями гомо] ената листьев и хлоропластов гороха и крапивы обнаружено, что наибольшая гидролизующая активность сосредоточена в хлоропластах. [c.63]

Рис.5.8, Действие агониста дофамина 2-амино-6,7-дигидрокси-1,2,3,4- тетрагидро-нафталена гидробромида на фотофосфорилирование с НАДФ" и ферредоксином в изолированных хлоропластах гороха

Установлено также, что низкие (<10 М) концентрации адреналина, норадреналина, а также дофамина стимулируют фотофосфорилирование и a /Mg проницаемость мембран хлоропластов гороха. Далее было показано, что селективный агонист дофамина - 2-амино-6,7-дигидроксИ 1,2,3,4-тетрагидронафтален гидробромид вызывал стимуляцию синтеза АТФ в концентрациях М (рис. 5.8). [c.71]

Рис. 5. 9. Влияние иохимбина на стимуляцию норадреналином фотофосфорилирования с НАДФ" и ферредоксином в изолированных хлоропластах гороха

Рис. 8.3. Действие норадреналина на выход кальция и магния из интактньа хлоропластов гороха

Как уже отмечалось, под влиянием экзогенного ацетилхолина наблюдается выход в среду ионов Ка и из интактных хлоропластов. Внутри хлоропластов гороха концентрация этих ионов вьш1е, чем в цитоплазме, но оболочка пластиды непроницаема для них. Открывание ионных каналов под действием ацетилхолина, по-видимому, способствует пассивному транспорту ряда ионов по градиенту электрохимического потенциала. Однако протон в этом случае по-разному поступает в отдельные компартменты органелл. [c.113]

Известно, что в листьях гороха НАДФ-специфичная дегидрогеназа фосфоглицеринового альдегида локализована исключительно в пластидах, тогда как НАД-специфичная дегидрогеназа найдена как в хлоропластах, так и в цитоплазме [14]. [c.278]

При освещении листьев происходит изменение среднего объема у хлоропластов, что хорошо иллюстрируется данными, полученными на горохе. Средний объем хлоропластов из темновых растений был равен 39 1. , а из освещавшихся — 31 а . Половинное время, необходимое для сжатия хлоропластов после начала освещения, составляло in vivo 3 минуты, а для восстановления первоначального объема в темноте — 5 минут. [c.215]

Содержание МС в хлоропластах в пррпентах от РНК всей клетки у рада высших растений (шпинат, горох, табак и другие) варьирует в пределах 15-35 , у эвглены - 10-20 . [c.40]

Включение глицина в белки хлоропластов и рибосом проростков гороха ( в1ввак1ап ег а1., 1965) [c.48]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология