Окрашивание срезов

После окрашивания срезов определяют их толщину и в дальнейшем показатели оптической плотности пересчитывают на толщину среза в 10 мк. [c.165]

Окрашивание срезов проводят в 0,1%-ном растворе красителя прочного зеленого, приготовленного на буфере с pH 8,5— 9,0. В качестве буферного раствора обычно берут 0,01—0,005%-ный водный раствор соды. Продолжительность окрашивания 30 минут, после чего срезы промывают буфером того же pH, дифференцируют этанолом, просветляют ксилолом и заключают в бальзам. [c.170]

Главным условием получения высокопрочных вискозных волокон является однородная (по сечению) надмолекулярная структура, что определяется по равномерности окрашивания среза волокна. Площадь рубашки в сечении волокна должна равняться 90—100%. [c.247]

Краситель, составленный из 4 ил метилового синего ( .I. 42780) (1%-ный водный раствор) и 12 мл эозина ( .I. 45380) (1 %-ный раствор в. 70%-ном спирте), добавляют к 10 мл разжиженного желеобразного глицерина. Окрашивание среза производится в желеобразном глицерине. Фенолформальдегидные смолы окрашиваются в зеленый или синий цвет 1199]. [c.313]

Для выявления структурных особенностей полинозных волоков применяют крашение нитратом серебра. Препарат и красящий раствор готовят таким же образом, как и при крашении срезов вискозных волокон (стр. 27), но в этом случае крашение проводят до тех пор, пока все одиночные волокна не примут равномерной темно-коричневой окраски по всему поперечному срезу. После полного окрашивания срезы помещают в раствор тиосульфата натрия, что приводит к удалению темно-коричневой окраски со слоев среза, имеющих рыхлую структуру (типа ядра). Слои среза, имеющие плотную структуру (типа оболочки), после обработки сохраняют темно-коричневую окраску. [c.30]

Естественно, что чем выше содержание этой формы азотнокислых соединений в растении, тем оно лучше обеспечено азотом. Но азот поступает в растения из почвы, поэтому интенсивность окрашивания среза растения при реакции с дифениламином, в свою очередь, является показателем наличия большего или меньшего количества доступного азота для исследуемой культуры в той почве, на которой она растет. [c.58]

В качестве красителей для негативного окрашивания используются различные соли тяжелых металлов. Наш опыт свидетельствует о том, что самой подходящей солью является молибдат аммония, так как он хорошо распределяется, не реагирует с белками и большинством других компонентов суспензии и его концентрацию легко регулировать для создания требуемой степени контраста [32]. Пожалуй, чаще других используются растворы фосфорновольфрамового натрия и калия, в целом удовлетворительные при нейтральных значениях pH. Широко применяются соли урана, поскольку их молекулы, обладающие небольшими размерами, хорошо проникают в поверхностные неровности и тем самым улучшают разрешение тонких деталей. Уранилацетат, который, как правило, имеется в электронно-микроскопических лабораториях, потому что его используют также при окрашивании срезов, дает хорошие результаты при концентрации 1 % или меньше. Но его растворы имеют очень низкий pH (около 2,5), и, даже будучи частично нейтрализованным непосредственно перед использованием, он начинает выпадать в осадок при pH выше 4,5. Некоторые структуры ура- [c.103]

Схема головного мозга низших позвоночных показана на примере тигровой саламандры на рис. 3.13А. Как было сказано выше (см. рис. 3.6), здесь ясно видны все основные части мозга. В каждой области мозга находятся разные центры, в которых комбинируются разные виды входных сигналов и из которых отправляются сигналы к другим центрам. Эти связи выявляются при использовании окрашивания срезов по Гольджи в сочетании с другими методами прослеживания проводящих путей. [c.72]

Фосфолипиды окрашиваются в темно-синий цвет. Их можно идентифицировать, лишь сравнив с окрашиванием срезов, экстрагированных ацетоном и хлороформ — метанолом, последние не должны давать окрашивания, обусловленного присутствием липидов. [c.167]

Удаление парафина и окрашивание срезов [c.83]

Существующие методы окрашивания можно разделить на две группы. При первой —с прогрессивным окрашиванием — срезы помещают в слабый раствор красителя. Окрашивание длится несколько минут, пока необходимые структуры в клетке не будут четко видны на препарате. При второй — с регрессивным окрашиванием — срезы заведомо перекрашивают концентрированным раствором красителя. Избыток краски удаляют 0 срезов в специально подобранных растворах. Этот прием называют дифференцированием препаратов, в ходе которого краску следует оставить только на определенных структурах клетки. Контроль за дифференцированием ведут под микроскопом, используя объективы с небольшим увеличением. [c.85]

Окрашивание срезов гематоксилином по Дела ф и л ь д у. Этот способ чаще используют в работе с эмбриологическими препаратами. Хорошие результаты получаются только при правильном приготовлении красителя. К 100 мл насыщенного водного раствора алюмоаммонийных квасцов прибавляют по каплям раствор, состоящий из 1 г гематоксилина, [c.87]

Окрашивание срезов проводят по методикам, описанным Г. И. Роскиным, А. Б. Левинсоном [8] и Э. Пирсом [7]. [c.173]

П ш е н и ц а и я ч м е и ь. Не у всех злаков различие люминесценции срезов семян в зависимости от их жизнеспособности выражено отчетливо. В таких случаях пользуются другим приемом люминесцентного ана лиза — окраской флуоресцентными красителями. Так, жизнеспособность семян пшеницы, р ки и ячменя определяют после предварительного окрашивания Срезов зародышей флуорохромами, увеличиваюхцимп контрастность свечения зародыша и эндосперма. Для окраски срезов зародышей пшеницы применялся водно-спиртовой раствор родамина 6 ЖДН концентрации 0,00005—0,0001 г/сл , а для окраски срезов ячменя — содовый раствор (1% N33003) акридинового оранжевого концентрации 0,0003- - [c.233]

Структура волокна после щелочных обработок изучалась по поперечным срезам волокон, обработанных красителем, окрашивающим только ядро или только оболочку обычного вискозного волокна. При окраске ядра поперечного среза стандартного полинозного волокна наблюдалось слабое и равномерное окрашивание всего поперечного среза. При обработке тем же красителем готового волокна, подвергнутого действию щелочи с концентрацией 60 г/л, образуется сильноокрашенная, довольно толстая оболочка. При окрашивании тем же красителем волокна, подвергнутого щелочной релаксации в свежесформованном состоянии, получается тонкая, более интенсивно окрашенная оболочка. Такая же примерно картина наблюдается при окрашивании среза волокна Т-61А. Фотографии срезов исследуемых волокон представлены на рис. 2. [c.126]

Микроскопия. На поперечном срезе видно характерное для корня преобладание тонкостенной паренхимной ткани. В коре находятся многочисленные тангентально вытянутые группы лубяных волокон, расположенные прерывистыми концентрическими поясами. Более мелкие группы волокон разбросаны в древесине. Волокна толщиной 10—35 жо1 со слабо утолщенными неодревеспевшими или слабо одревесневшими стенками и большим просветом. Сосуды и трахеиды расположены небольшими группами. Сердцевинные лучи одно-, реже двухрядные. В паренхиме видны многочисленные крупные клетки со слизью, находящиеся как в коре, так и в древесине. В воде слизь растворяется, клетки становятся бесцветными и кажутся пустыми. Раствор метиленового синего окрашивает клетки со слизью в голубой цвет. Для проведения двойного окрашивания срез помещают в раствор хлорида окисного железа на 20 минут, раствор удаляют фильтровальной бумагой, прибавляют спиртовой раствор метиленового синего и промывают водой. Слизистые клетки окрашиваются в желтый, волокна — в синий, сосуды — в зеленый цвет клетки паренхимы остаются бесцветными. [c.579]

Перед окрашиванием срезы должны быть депарафинизиро-ваны ксилолом и обработаны серией этанолов с понижающейся концентрацией, вплоть до дистиллированной воды. Примечание. Поскольку пары ксилола токсичны и могут быть канцерогенными, работать с ним следует в вытяжном шкафу. [c.243]

Окрашивание срезов в раствоое карбол-фуксина при + 60°С, 3 ч (10 г основного фуксина, 50 г фенола, 100 мл этанола, 1000 мл дистиллированной воды). [c.251]

Окрашивание срезов гематоксилином по Гей-денгайну. Гематоксилин готовят из экстракта кампешевого дерева. Для окрашивания срезов используется продукт окисления гематоксилина — гематеин (С16Н12О6). Существует два способа приготовления красителя. [c.85]

Во время окрашивания срезов надо стремиться ие загрязнить краситель. Окрасив небольшую партию препаратов, его нужно отфильтровать и вновь использовать. Перед употреблением хранившегося красителя сначала определяют его пригодность для работы. Для этого в стакан с водопроводной водой вливают несколько капель гематоксилина. Испорченный краситель дает желтую или грязно-лиловую окраску, нормальный — аметисто-лиловую. [c.86]

Существует ускоренный способ окрашивания срезов лселез-ным гематоксилином. В этом случае протравливание в квасцах н окрашивание в гематоксилине ведут в течение 30—40 мйц в термостате при температуре 45—56°С. [c.87]

Окрашивание срезов генциановым фиолето- .врм по Ньютону, Метод применяют для окрашивания цитологических и эмбриологических препаратов. Он занимает мало времени. Хромосомы окрашиваются в фиолетовый цвет, оставаясь полупрозрачными, что облегчает подсчет длинных, нале- [c.88]

Окрашивание срезов ацетокармином по Фаворскому. В цитологической практике ацетокармин обычно применяют для окрашивания временных препаратов. Однако его можно использовать и для приготовления постоянных препаратов. Н. В. Фаворский предложил два способа окрашивания. [c.89]

Окрашивание срезов по Модилевскому. Эмбриологические препараты можно хорошо окрасить, применяя следующую схему работы. [c.90]

Окрашивание срезов для выявления нуклеиновых кислот, белков и углеводов. Для выявления дезоксирибонуклеиновой кислоты в ядрах клеток применяют реакцию Фёльгена. Известно, что в состав ДНК входят остатки фосфорной кислоты, сахар (а-дезоксирибоза) и азотистые основания. Дезоксирибоза в ходе гидролиза с соляной кислотой превращается в альдегид, который при взаимодействии с фуксиносернистой кислотой (реактив Шиффа) окрашивается в красновато-фиолетовый цвет. Таким образом, реакция Фёльгена состоит из двух этапов гидролиза и окрашивания. В качестве контроля используются препараты, не подвергавшиеся гидролизу. Их помещают в фуксиносернистую кислоту на 10—15 мин. Окрашивания не должно быть. [c.91]

Объекты после фиксации в 10%-м растворе формалина в течение 3—6 ч промывают в проточной воде 10—12 ч, обезвоживают и по обычной методике парафинируют. Краситель готовят, растворяя 100 мг прочного зеленого в 10 мл воды, и доводят pH до 8. Перед окрашиванием срезы помещают в 5%)-й раствор трихлоруксусной кислоты на 15 мин при 100для удаления нуклеиновых кислот, которые могут маскировать окраску иа белки. Последовательность работы следующая. [c.94]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология