Фенолы, флавоноиды, кумарины

ФЕНОЛЫ, ИХ ПРОИЗВОДНЫЕ. КУМАРИНЫ И ФЛАВОНОИДЫ [c.80]

ФЕНОЛЫ, ФЛАВОНОИДЫ, КУМАРИНЫ [c.114]

Применение бумажной хроматографии. Методом БХ разделяют органические кислородсодержащие соединения спирты, сахара, альдегиды и кетоны, органические кислоты, фенолы, флавоноиды, кумарины, стероиды и терпеноиды, хиноны, антрахи-ноны, полициклические соединения, пигменты из растений и т. п. [c.356]

К этой группе относятся большое число природных соединений, включая кумарины, флавоноиды, антоцианидины и ксантоны, а также некоторые синтетические красящие вещества, например фенолфталеин и флуоресцеин. Из них только кумарины, некоторые флавоноиды и флуоресцеин, а также их производные привлекли внимание с точки зрения метаболизма. Метаболические реакции большинства фенолов этой группы подобны уже описанным для простых карбоциклических фенолов. [c.188]

Фенилаланин и тирозин играют главную роль в образовании растительных фенолов. Они способствуют увеличению количества производных коричной кислоты, кумаринов, лигнинов, флавоноидов и некоторых алкалоидов. Кроме того, они способны распадаться до соединений g( s- 2) и 7( 6- i). В последние годы с помощью исследований на ферментативном уровне достигнут некоторый прогресс в установлении функций этих аминокислот в биосинтетической схеме, ведущей к фенолам. Однако, прежде чем перейти к обсуждению этих работ, следует рассмотреть ферменты, обусловливающие образование фенилаланина и тирозина из соответствующих кетокислот. Образование последних было описано выше в разделе ПА. [c.320]

Фенолы Флавоноиды Танины Кумарины Оксикорич-ные кислоты Хлоропласты Вакуоль, пластиды Вакуоль, хлоропласп>1, ЭПР ЭПР, хлоропласты, митохондрии Вакуоль, хлоропласты, СП Вакуоль, СП, ЭПР Вакуоль Вакуоль, СП, хлоропласты [c.181]

Для спиртов предложены методы бумажной хроматографии как алифатических спиртов, так и циклических и гликолей. Разработаны методы для низших членов гомологических рядов первичных спиртов, для высших членов этого ряда, для инозита, инозиттетрафосфата. Определялись также ксантогенаты, у-мен-толы, многоатомные вторичные спирты, сорбит, трополоны, фи-тол. Довольно обширный раздел представляет бумажная хроматография фенолов и родственных веществ их выделяют в форме производных и определяют в растениях, животных продуктах, в виде алкилфенолов, дифенолов, галлокатехинов, полифенолов, нитрофенолов, в присадках к нефтепродуктам. Предложены методы определения флавоноидов, кумарина, хромона, флавона, аурона, антоцианинов и антоцианидинов, катехинов, лигнина. [c.200]

Если применению полиамидов в исследованиях таких групп природных соединений, как фенолы, флавоноиды, хиноны, кислоты, стероиды и др., посвящено довольно значительное число работ, то в области изучения кумаринов, фурокумаринов, фурохромонов, ксантонов и т. д. этот сорбент пока не нашел широкого распространения. Это частично можно объяснить тем, что для разделения этих веществ вполне пригодны общепринятые окись алюминия и силикагель вследствие их малой полярности. Но в последнее время появляются сообщения [c.120]

Хотя ряд химически простых фенолов участвует в животном метаболизме, основная масса фенольных соединений из числа встречающихся в природе найдена в растениях (например, флавоноиды, коричные кислоты, кумарины и таннины), как правило в соединении с другими веществами (например, гликозиды). Большинство фенольных соединений или их производных (например, глюкуронидов), присутствующих в нормальной моче, проистекают из этих двух источников, но применение лекарств и других чужеродных органических соединений, содержащих ароматическое ядро, может способствовать образованию фенолов, даже если исходное соединение не содержит фенольных групп. Таким образом, в понятие фенольные входит широкий набор соединений с различными реакционноспособностью и полярностью, и поэтому выбор как растворителя для разделения, так и реагента для обнаружения зависит от класса исследуемых соединений. [c.408]

Часть приведенных в табл. 98 фенолкарбоновых кислот находится в природных смесях в свободном состоянии, а другие часто получают при щелочном плавлении лигнинов, дубильных веществ, кумаринов, флавоноидов, лигнанов, кислот лишайников и т. д. Еще в 1957 г. Лиман с сотрудниками [30] исследовал возможности разделения 26 производных фенола на слоях силикагеля (метод хроматографических полос ). Большая часть приведенных в этой работе величин Rf помещена в табл. 98 (графы А1 — Аз). Кратцл [c.385]

Глава 3, написанная Харборном и Симмондсом, посвящена описанию природных источников простейших фенолов, кумаринов, флавоноидов, халконов, антоцианов и других фенольных агликонов растительного и животного происхождения. Здесь собран большой справочный материал по химическим структурам различных фенольных соединений. Глава не претендует на какие-либо теоретические обобщения, однако является весьма ценным собранием информационного материала. Весьма близка по содержанию и характеру изложения глава 4 (Харборн), в которой трактуются вопросы строения фенольных гликозидов, сахаров, агликонов и указываются их природные источники (в основном, растительного происхождения). [c.6]

Хроматографические свойства этих соединений, как и соединений других типов, зависят от нх гидрофильности, т. е. от числа полярных функциональных групп, главным образом гидроксильных. Для обнаружения соединений этой группы используются специфические реакции с участием фенольных гидроксильных групп. К числу основных обнаруживающих реагентов относятся 0,1%-ный раствор хлорида железа(П1), который дает зеленую окраску с о-диоксифенолами и чернильно-синюю окраску с вицинальными триоксифенолами, нитрат серебра (ОР-2), растворы диазотированных аминов, например сульфаниловой кислоты (ОР-20) или п-нитроанилина (ОР-19). Реже применяется классический реагент Фолина-Дениса или Гиббса (1%-ный этанольный раствор 2,6-дихлорхинонхлоримида). Удобен также реагент, в состав которого входят хлорид железа (III) и ферри-цианид калия (ОР-21) в реакцию с этим реагентом вступают не только фенолы, но и все другие восстанавливающие вещества. Флавоноиды и кумарины можно также обнаружить по их флуоресценции. Флавоноиды, если только не происходит гашения флуоресценции, обычно проявляют себя флуоресценцией от желтого до зеленого цвета, которая усиливается после обработки хроматограммы парами аммиака. Кумарины чаще всего об- [c.115]

AI2O3 или целлюлозе в колонках большого сечения и малой длины в системе с pH >> 7, При этом сапонины полностью отделялись от фенольных соединений (кумаринов, флавоноидов, фенолов и их гликозидов) и почти полностью от моно- и олигосахаридов. Следует отметить, что большинство исследователей, работавших с так называемыми сырыми сапонинами или даже многократно переосажден-ными, получали сапонины, загрязненные этими веществами. Таким образом, уже грубая хроматография оказалась более эффективной, чем описанные ранее методы очистки. [c.47]

Термин фенольные соединения объединяет широкий круг природных веществ [9], среди которых можно выделить две основные группы прость е фенольные соединения и флавоно-иды. К первой группе относятся фенолы, например пирокате хин и резорцин, фенолкарбоновые кислоты, например протокатеховая и сиреневая кислоты, а также оксикоричные кислоты и их лактоны, называемые кумаринами. К флавоноидам относятся широко распространенные водорастворимые пигменты — антоцианы и флавоны — и множество родственных соединений,, например изофлавоны, катехины, таннины и бифлавонилы [10]. Кроме того, в настоящей главе описано разделение пигментов растительного и животного происхождения, имеющих хиноидную структуру [11], и родственных им растительных ксантонов Разделение фенольных соединений, в состав которых входят азотсодержащие функциональные группы, в данной главе подробно не рассматривается, хотя эти соединения играют важную роль. [c.243]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология