Флавианаты

Хлортетрациклина гидрохлорид — желтый кристаллический порошок без запаха, горького вкуса, устойчив на воздухе, очень мало растворим в воде, мало в этиловом и метиловом спиртах, практически не растворим в хлороформе и в ацетоне. Устойчив в слабокислой среде, легко разлагается в растворах кислот и щелочей. На свету медленно разрушается. С органическими кислотами образует труднорастворимые соли, например пикрат, т. пл. 168—178° (с разл.), флавианат, т. пл. 230—240°. В присутствии хлора водные растворы хлортетрациклина инактивируются, равно как и при облучении рентгеновскими лучами напротив, новокаин стабилизирует растворы. Удельное вращение [а]о = 230° до 245° (с = 0,5, вода). Удельный показатель [c.693]

Кипячение препятствует выпадению аргининдифлавианата и затрудняет выделение флавианатов других аминокислот. [c.63]

L-A.-необходимый компонент пищи для человека и животных (незаменимая кодируемая аминокислота). Встречается во мн, организмах в своб. виде и в составе белков особенно велико содержание в протаминах и гистонах. L-A.-один из основных метаболитов в орнитиновом цикле. Биосинтез может осуществляться из цитруллина. Выделяют из гидролизатов желатины в виде флавианата м.б. синтезирован из орнитина и цианамида. В спектре ЯМР L-A. хим. сдвиги в D2O для протонов у а-, -, у- и 5-атомов углерода составляют соотв. 3,777, 1,918, 1,703 и 3,256 м. д. При взаимод, А. с а-нафтолом (или 8-гидроксихинолином) [c.193]

В этой работе было высказано предположение, что в решетки гидроокисей определенных металлов, например цинка и меди, могут внедряться молекулы жирных органических кислот. Справедливость этого предположения была доказана получением таких веществ со слоистой структурой, как основные нитрофеноляты цинка [118], основные флавианаты цинка, кадмия и меди [122], соединения включения нафтогельба 8 с гидроокисями М , Си, N1, Со, Мп и С(1 [119— 121] и ряда подобных структур [123]. С изменением состава основных флавианатов цинка, т. е. числа в в Ъп ОЩ -п 2пР1а, где Р1а — двухзарядный анион [c.324]

Основы метода. Аргинин и гистидин осаждают совместно в виде серебряных солей при pH 13—14. После удаления реагентов выделяют количественно аргинин в виде флавианата (Коссель и Гросс, [384]) и высчитывают содержание гистидина по разности между общим азотом раствора и азотом осадка флавианата. [c.17]

Потери, связанные с растворимостью аргинин-флавианата в присутствии избытка флавиановой кислоты, почти ничтожны. [c.34]

Метод, а) 1 г белка гидролизуют НС1 или H2SO1 и доводят реакцию раствора до слабо кислой по конго [386]. Аргинин осаждают добавлением концентрированного водного раствора 4 эквивалентов флавиановой кислоты. Целесообразно перемешивать раствор в течение первых нескольких часов. Для полного образования осадка реакционную смесь оставляют стоять на холоду 2—3 дня. Затем желтый осадок отфильтровывают и промывают холодным разбавленным раствором флавиановой кислоты. Осадок растворяют в горячей воде, добавляя небольшое количество разбавленного раствора аммиака, и нагревают на паровой бане в течение 2 час. общий объем составляет 100—150 мл воды, содержащей небольшое количество флавиановой кислоты. После охлаждения раствора в течение некоторого времени отфильтровывают флавианат аргинина. Оранже- [c.49]

Для выделения аминокислот используют различные методические приемы — изоэлектрическое осаждение, выделение в виде солей, сложных эфиров, хлоргидратов, солей сульфокислот, электродиализ, ионофорез. Широкое применение получили методы осаждения аргинина в виде флавианата, глутаминовой кислоты — в виде хлоргидрата, аспарагиновой кислоты — в форме тригидрата медной соли, метионина — в виде ртутного комплекса [116, 494—496]. [c.91]

Электродиализное разделение флавианата аргинина. Используемый в промышленности способ выделения -аргинина из гидролизатов белкового сырья основан па осаждении аргинина флавиановой кислотой (2,4-динитро-а-нафтол-7-сульфокислота) с получением монофлавианата аргинина [c.63]

При проведении процесса электродиализного разделения раствор флавианата аргиннна загружали в емкость I. Под действием электрического поля анионы флавиановой кислоты [c.64]

Для предотвращения осаждения флавианата аргинина в процессе электродиализного разделения pH раствора поддерживали в пределах 8—9. Процесс разделения флавианата проводили до полного перехода -аргинина в емкость П. [c.65]

Скорость электродиализного разделения флавианата аргинина зависит от плотности тока и от исходной концентрации флавианата аргинина (табл. 1). Скорость миграции -аргинина в условиях проводимых опытов 4—12 г/час. [c.65]

Параметры электродиализного разделения флавианата аргинина [c.65]

Выход -аргинина, считая на загруженный флавианат аргинина, составлял 80—83 или 60—65%, считая на содержание аргинина в исходном гидролизате. Удельный расход электроэнергии и выход по току представлены в табл. 1. [c.65]

Процесс электродиализного разделения растворов иикра-та пролина иа пикриновую кислоту и -пролин проводили аналогично процессу разделения растворов флавианата аргинина на типовой установке (рисунок). [c.66]

Изучена возможность электродиализного разделения флавианата аргинина, пикратов пролина и оксипролина. [c.67]

Установлено, что скорость миграции аргинина и пролипа увеличивается с увеличением плотности тока и уменьшается с увеличением исходной концентрации флавианата и пикратов. [c.67]

П. легко образуют соли с различными к-тами, хлориды, нитраты и сульфаты П. растворимы в воде пикраты, флавианаты, хлораураты — нерастворимы. П. осаждаются в присутствии 20%-ной трихлоруксусной к-ты. В сперме рыб П. содержатся в виде солеобразных соедииений с нуклеиновыми к-тами и могут быть выделены в свободном виде экстракцией высушенной и обезжиренной спермы раствором серной к-ты TI последующим осаждением пикриновой к-ты, П. не расщепляются пепсином, но образуют с ним нерастворимый осадок. Трипсин, папаин, лейцинаминопентидаза и др. протеолитич. ферменты расщепляют П. Биологич. роль И не выяснена. Поскольку П. образуют комплексы с дезоксирибонуклеиновой к-той ДНК) ядер клеток, предполагается, что они имеют значение в функционировании ДНК и передаче наследственных свойств. [c.186]

Выбор метода выделения зависит от свойств получаемого пептида. Выделение сопряжено с особенно большими трудностями в случае пептидов, хорошо растворимых в воде [2638]. Некоторые пептиды мол<но осаждать спиртом из их водных растворов, поскольку ацетаты аммония и натрия растворимы в спирте [2247]. Возможно также выделение пептидов в виде нерастворимых солей, например флавианатов [2638], пикратов [627] или бариевых солей [2583]. Часто, однако, приходится прибегать к более сложным процедурам [2583]. Необходимо учитывать также, что при неполном восстановлении сульфонильной группы образуется сульфит, который частично окисляется кислородом воздуха и превращается в сульфат [1847]. В настоящее время наилучшие результаты можно получить на основе использования при очистке ионообменных смол этот способ нашел особенно широкое применение в исследованиях последних лет [686, 1414, 1524, 1943]. Так, Рудингер [1847] использовал этот метод для удаления избытка металлического натрия, с помощью ацетата аммония. При этом сначала путем добавления катионита ионы натрия замещались ионами аммония, затем сульфит- и сульфат-ионы осаждались ацетатом бария, и, наконец, для замещения ионов бария ионами аммония вновь использовалась катионообменная смола. В результате в растворе оставалась единственная соль — ацетат аммония, который хорошо растворим в спирте и не мешает осаждению пептида. Ацетат аммония можно также удалить лиофилизацией. При изучении применимости для реак- [c.42]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология