Температура влияние на электрофорез

В работах [30, 488] изучено влияние температуры на толщину полимолекулярных адсорбционных пленок воды на поверхности плавленого кварца. Если при >65°С толщина пленки не превышает монослоя, то при 10 °С она составляет приблизительно 10 нм. Температурная зависимость ряда свойств, таких, как теплопроводность [489, 490], вязкость [491], амплитуда колебаний частиц при электрофорезе в переменном поле вблизи подложки [492], скачкообразно изменяются при 65—70 °С. Такое поведение, так же как и исчезновение эффекта термоосмоса вблизи 70°С [463], авторы объясняют полным разрушением ГС. [c.172]

Температура является критическим фактором при электрофорезе, оказывающим существенное влияние на подвижность белков [130] вследствие того, что при понижении температуры вязкость воды повышается. В то же время повышение температуры только на 1 °С (с 17 до 18 С) приводит к тому, что скорость перемещения белков увеличивается более чем на 20%. Если отвод тепла недостаточен, то образуются искривленные полосы, так как центральная часть геля обычно нагревается сильнее, чем края, и потому подвижность макромолекул в ней выше. Для устранения этого эффекта нужно использовать более разбавленный гель или буферный раствор, а электрофорез проводить в холодильнике. [c.106]

Таблица 3 Влияние температуры на подвижность золя серебра при электрофорезе [104

Электрофорез — метод анализа, основанный на способности заряженных частиц к передвижению во внешнем электрическом поле. Передвижение частиц при электрофорезе зависит от ряда факторов, основными из которых являются напряженность электрического поля, величина электрического заряда, скорость и размер частицы, вязкость, pH и температура среды, а также продолжительность электрофореза. При электрофорезе на носителях (твердая среда) на подвижность и эффективность разделения дополнительное влияние оказывают адсорбция, неоднородность вешества носителя и его ионообменные свойства, электроосмос и капиллярный эффект. [c.144]

Борковский и др. [94] разделяли основания ДНК, аденин, гуанин, цитидин и тимин методом электрофореза на слоях агарового геля, используя 0,1 М буферный раствор ацетата натрия и уксусной кислоты (pH 3,7). Электрофорез, проводили в течение 45 мин при напряженности поля 5—7 В/см. Образец получали в результате 60-минутного гидролиза ДНК 72 %-ной хлорной кислотой, а после гидролиза выпаривали хлорную кислоту, освобождая основные соли. Цанев и др. [95] изучали влияние концентрации РНК, величины pH, температуры, состава буферного раствора и концентрации геля на фракционирование и подвижность РНК при электрофорезе на слоях геля. Для электрофоретического разделения АМР, ADP, АТР [96] и смесей аденина, аденозина, адениловой кислоты и ди- и трифосфатаденозинов [97] применяли также гель агарозы. [c.136]

Опытные данные подтверждают заключение, что скорость электрофореза пропорциональна приложенному градиенту потенциала. Обычно (хотя и не всегда) она не зависит от размера частичек, а часто и от их формы. Как указано в табл. 3, изменение температуры влияет на подвижность в силу ее влияния, в первую очередь на вязкость растворителя произведение вязкости и подвижности [c.207]

В процессе электролиза на электродах выделяются пузырьки кислорода, водорода и другие, которые транспортируют вещество из жидкости на ее поверхность. Под действием электрического тока происходит электрофорез — направленное движение взвещенных твердых частиц, пузырьков газа, коллоидных частиц и капель другой жидкости. Протекание этих процессов оказывает значительное влияние на скорбеть электрохимического растворения металла. Кроме того, на этот процесс существенно влияют солевой состав электролита и его активность, температура, чистота растворяемого металла, плотность тока, частота смены полярности, скорость движения воды в межэлектродном пространстве и др. При наличии в алюминии легирующих примесей анодное растворение его значительно ускоряется. Интенсифицирующее влияние примесей зависит от их природы, количества и условий протекания процесса. [c.189]

Согласно уравнению (12.1), электрофоретическая подвижность обратно пропорциональна вязкости среды. Вязкость уменьшается с увеличением температуры, и поэтому подвижность увеличивается примерно на 2,7% с повышением температуры на каждый градус. Подвижность частиц также может снижаться под влиянием носителя, который может быть гелем, может иметь волокнистую или порошкообразную структуру, может быть насыщен электролитом. В таких случаях путь частицы фактически удлиняется и одновременно уменьшается напряженность электрического поля. Гелеобразные носители могут проявлять молекулярно-ситовые свойства, что приводит к замедлению движения или даже к полной остановке частиц с большим стоксовым радиусом. Эти эффекты нашли широкое практическое применение в зонном электрофорезе. На ход разделения оказывают влияние и сорбционные процессы. [c.284]

Рис. 97. Влияние формальдегида-на белки мембран эритроцитов человека [1228], Тени эритроцитов инкубировали с формальдегидом в течение 30 мин при комнатной температуре и затем анализировали с помощью электрофореза в полиакриламидном геле с ДСН. Образцы 1—4 содержали соответственно О, 5, 10 и 15 мМ формальдегид. МК — маркерный краситель-(пиронин V) НЬ — диссоциированные полипептидные цепи гемоглобина.

Органические смолы и пластики, которые затвердевают при комнатной и высоких температурах, используют в качестве связующих. Могут также применяться неорганические керамические и некерамические связующие они должны иметь относительно высокую термостойкость и эластичность, чтобы не оказать отрицательного влияния на смазывающие свойства смазочного материала. Антифрикционные лаки, высыхающие на воздухе, отличаются от лаков высокотемпературного отверждения (100—250 °С), которые высыхают за 15—18 мин. Для исключения более высоких температур, и, следовательно, чрезмерного отверждения при нанесении, и для увеличения адгезии применяют такие процессы, как плазменное напыление, электрофорез, гальваностегия, гальваноплакирование или катодное распыление для получения пленок, прочно прилипающих к поверхности [7.24, 7.32]. [c.174]

Недавно было показано, что нуклеопротеиды [147] и другие белки [148], разделенные с помощью гель-электрофореза, можно перенести на нитроцеллюлозные или диазобензилоксиметилцел-люлозные фильтры. Более того, белки после такой процедуры сохраняют способность связываться с ДНК [148]. С помощью этого метода, по-видимому, можно выделить и охарактеризовать белки, взаимодействующие с ДНК или РНК. В работе [149] показано, что /ас-репрессор из Е. соИ специфически удерживается на колонке с диазобензилоксиметилцеллюлозой, содержащей ковалентно связанные фрагменты /ас-оператора Е. соН. В отличие от электрофоретического разделения, которое требует соблюдения весьма специфических условий, этот тип аффинной хроматографии идеально подходит для изучения влияния ионной силы, pH и температуры на эффективность взаимодействия белков с нуклеиновыми кислотами. Такого рода аффинную хроматографию, вероятно, можно использовать для очистки белков, контролирующих экспрессию генов. [c.196]

Для изучения влияния низких положительных и отрицательных температур на белки мицелия и плодовых тел изученных видов и штаммов грибов использовали электрофорез в ПААГе в присутствии ДДС-Ка. [c.34]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология