Лабораторные животные

Токсиколог и фармаколог проводят экспериментальное [зучение того или иного вещества, в том числе и всасывания его через кожу, на лабораторных животных с тем, чтобы попытаться предсказать действие этого вещества на человека, а затем при необходимости выработать меры, исключающие интоксикацию или другой неблагоприятный эффект. Таким образом, экспериментальное изучение действия вещества на животных дает нам информацию, которая является основой для прогнозирования. Точность подобного прогнозирования всегда зависит от выбора лабораторного животного, полноты и качества экспериментальной работы и, наконец, от умения правильно интерпретировать ее результаты. [c.28]

Изучение влияния химических продуктов, содержащихся в воде водоемов, на здоровье человека осуществляется в санитарно-токсикологическом эксперименте на подопытных лабораторных животных, в результате которого устанавливается максимально недействующая концентрация (МНК) вредного вещества в условиях длительного воздействия на организм с последующей экстраполяцией данных на человека. [c.105]

В отдельных случаях при проведении опытов на крупных лабораторных животных при сравнении с фоном допускается использование группы из шести животных. [c.114]

В целях решения вопроса о классе токсичности отходов, полученных по технологии обжига в среде экзогаза, проводили эксперимент с лабораторными животными. Он состоял из двух этапов. [c.55]

При проверке радиозащитных свойств химического вещества прежде всего необходимо получить доказательства наличия у него защитного эффекта при летальном воздействии однократного тотального гамма- или рентгеновского облучения. Этот критерий защитного действия проверяемого вещества, как правило, используется у мелких лабораторных животных, прежде всего мышей. Доказательство радиозащитного действия вещества у разных видов животных является необходимым шагом, позволяющим экстраполировать экспериментальные данные на человека. Важно также обнаружить защитное действие вещества при различных синдромах острой лучевой болезни и в случае его повторного введения. Радиозащитное действие желательно определять при удобных способах введения радиопротектора. [c.121]

Результаты опытов на мелких лабораторных животных показали, что гаммафос при меньшей токсичности обладает большим, чем цистамин, радиозащитным действием, оцениваемым по выживаемости летально облученных животных. [c.139]

Для первичной оценки проводят исследования на мышах и крысах, используют различные методы аппликации. Можно, например, наносить вещество на участок кожи, освобожденный от шерсти. Остановимся на наиболее распространенной методике с погружением хвоста мелких лабораторных животных в -раствор исследуемого вещества и последующей регистрацией его действия. Она имеет ряд преимуществ во-первых, в контакте с веществом находится значительная поверхность кожи по отношению к весу животного, во-вторых, легко исключить поступление его в организм другими путями (Н. С. Правдин, 1947). Кроме того, гистологическое строение кожи хвоста крысы весьма сходно со строением кожи человека. [c.29]

Рис. 2. Специальный станок для фиксации мелких лабораторных животных.

Исследования на втором этапе также могут быть проведены на мелких лабораторных животных (крысы). [c.31]

Главное заключается в количественной стороне проблемы. В ряде случаев организм человека более чувствителен к ядам по сравнению с организмом лабораторных животных, что особенно характерно при воздействии алкалоидов. Так, человек, как известно, наиболее чувствителен к атропину, несколько менее чувствительны кошки. Собаки и кролики могут переносить атропин в дозе, превосходящей в 100 раз дозу, смертельную для человека. В других случаях отдельные виды животных оказываются более чувствительными, чем человек. [c.134]

Еще более выраженными, казалось бы, могут быть различия видовой чувствительности на несмертельных уровнях воздействия, что может создать впечатление о невозможности использования данных эксперимента на животных в гигиенической практике. К счастью, это не так. В большинстве случаев чувствительность человека н лабораторных животных оказывается близкой. [c.134]

Несмотря на известные физиологические особенности подросткового организма, трудно предположить во всех случаях повышенную чувствительность подростков к вредным факторам среды по сравнению с чувствительностью взрослых. Ошибочность в суждениях может быть от неправильно выбранных контрольных групп работающих (или отсутствия таковых), недооценки комплекса производственных и социальных условий, неадекватных методов исследования и др. Для устранения указанных источников артефактов надежно служит повторно воспроизводимый эксперимент, поставленный на лабораторных животных в строго стандартизированных условиях. [c.145]

ПКост — пороговая концентрация острого действия, установленная на лабораторных животных при однократном ингаляционном воздействии, мг/л [c.8]

ПКхр — пороговая концентрация хронического действия, установленная на лабораторных животных при ингаляционном воздействии по 4 ч пять раз в неделю на протяжении 4 месяцев, мг/л [c.8]

Значительное распространение получают сейчас методы экспрессного регламентирования атмосферных загрязнений. Один из них — метод, описанный в работе [1.13J. Б одномесячном эксперименте получаются кривые зависимости концентрация — время , которые экстраполируются на логарифмической сетке до точки, соответствующей 2880 ч, т. е. 4-месячному хроническому эксперименту. Таким образом, время эксперимента уменьшается в 4 раза. Постоянной величиной здесь является эффект, а переменными — концентрация и время. При определении эффекта принимается первое статистически достоверное изменение биологических показателей у лабораторных животных. Животные подвергаются непрерывному воздействию 4—5 различных концентраций, причем наивысшая из них должна дать достоверные изменения уже в первые часы исследований. Наибольшая концентрация выбирается, как правило, на уровне порога острого действия или соответствует (7 2-7ю) ЛКзо. [c.16]

Второй подход применяется в странах с традиционными представлениями о существовании порога воздействия сунерэкотоксикантов (в их числе и Россия) При этом допустимые суточные дозы заметно выше. В основу расчетов закладываются дозы, считающиеся не действующими по канцерогенному и тератогенному эффектам у животных при хрогшческом воздействии. Принято считать, что если допустимые дозы для четьфех типов лабораторных животных (обычно мыши, крысы, морские свинки, кролики) различаются незначительно (< 3 раз), то существует вероятность (> 70%) того, что для человека дозы будут такими же. После экстраполяции этих доз на человека с учетом коэффициента запаса определяются нормативы суточного поступления сунерэкотоксикантов в течение всей жизни В табл. 1.1 приведены значения ПДК для некоторых суперэкотоксикантов в различных средах. [c.34]

Оценка токсичности и опасности. Клиническая картина отравления различных лабораторных животных однотипна и характеризуется в первые часы после введения препаратов вялостью, заторможенностью, позднее усилением перистальтики кишечника. Кроме того, при введении реагентов ИК-5 и ИКБ-6-2(3) появляется одышка, ИКБ-6-2(3), виско 938, додигена 1641-8 нарушается координация движений, виско 936 и виско 938 вызывают боковое положение животных. Животные погибают через несколько суток, а при введении ИК-5— через несколько часов в судорогах. Среднесмертельные дозы ингибиторов коррозии при пероральном введении находятся в пределах для белых мышей от 0,38 (ИК-5) до 23,5 г/кг (ИКБ-4С), для белых крыс от 0,9 ИК-5) до 31,0 г/кг (ИКБ-4С). Все изученные ингибиторы коррозии по величинам ДЛ50 относятся к мало- и умереннотоксичным соединениям (3—4 класс). [c.50]

В однократных опытах определяют степень токсичности, диапазон токсического действия, видовую и половую чувствительность лабораторных животных к действию веществ. По результатам этих опытов рассчитывают ориенгировоч-ные уровни доз (концентраций) для проведения подострого санитарно-токсикологического эксперимента. [c.121]

После приема I мкг/кг ЛСД концентрация неизмененного Л Д в моче через 22 ч составила 0,15 нг/мл, я через 48 ч — всего 0,1 нг/ мл (табл. 2). По данным, полученным при изучении действия ЛСД на лабораторных животных[1в (макаки-резус), 24—39% дозь выводится с мочой за 48 ч и 15—19% — с калом. При этом на каждый метаболит приходится не более 1—3% дозы. Интервал концентрации ЛСД в клинических пробах мочи (31 пр<йа) 0,21-0 96 иг/мл [9]. В 23 пробах присутствует ИЗО-ЛСД в количестве от 0,01 до 5,43 нг/мл. Содержание ЛСД в моче при приеме галлюциногенных доз 100 мкг 1 20 нг/мл в период до 24 ч после введения [17 . [c.149]

На основе эстрона осуществлены синтезы ряда других веществ аналогичного биодействия. Следует отметить, что ведутся работы по замене стероидных противозачаточных средств на агенты нестероидного типа в связи с тем. что появляются данные по проявлению тромбозов у женщин, а также случаи генерации опухолей у лабораторных животных под действием стероидных антиовуляторов. [c.52]

Мало экспериментов проведено на крупных лабораторных животных чаще всего использовались крысы и мыши. Это затрудняет перенос экспериментальных данных на человека, хотя его основы и оптимизация уже разработаны [Владимиров, Джаракян, 1982]. [c.40]

На основании приведенных данных, как указывают Владимиров и Джаракян (1982), стало очевидно, что как у человека, так и у лабораторных животных после введения небольших доз цистамина в моче преобладают сульфаты. С повышением дозы протектора увеличивается экскреция таурина, обнаруживается и неизмененный цистамин или МЭА. В основном полученные данные говорят о приблизительно одинаковом метаболизме цистеамина или цистамина в организме животных и человека. [c.50]

Реакция сердечно-сосудистой системы на введение АЭТ не одинакова у всех лабораторных животных. После кратковременного снижения кровяного давления у мышей наступает длительная гипертензия [Di Stefano et al., 1962]. Такой же характер изменений давления наблюдали Wang и соавт. (1971) у крыс после внутрибрюшинной инъекции АЭТ в дозе 175 мг/кг. После дозы 100 мг/кг величина кро- [c.80]

На основании анализа (на мышах) двухкомпонентной радиозащитной комбинации цистамина и мексамина методом изобол Dostal (1971а) рекомендовал проверить данную комбинацию на разных лабораторных животных при внутримышечном ее введении в соотношении 6 1. Одновременно с этой задачей мы в своей лаборатории изучали гемодинамические эффекты исследованных защитных комбинаций. [c.98]

Наиболее важные острые побочные эффекты цистамина у всех лабораторных животных относятся к сердечно-сосудистой системе, у крупных лабораторных животных его применение ограничивается раздражением рвотного центра. Токсические дозы вызывают у всех подопытных животных судороги скелетной мускулатуры. Угнетение гемодинамики под влиянием цистамина не вызывает у крыс столь выраженного снил<ения в насыщении тканей кислородом [Кипа, Vodi ka, 1973], чтобы можно было соотнести интенсивность защитного действия цистамина с его кардиоваскулярными эффектами. Другие фармакологические эффекты цистамина также нельзя связать с его механизмами защиты. Мы приняли рабочую гипотезу об обоснованности попыток с помощью других лекарственных средств уменьшить или устранить побочные для защитного действия несущественные фармакологические эффекты с тем, чтобы снизить риск введения эффективной радиозащитной дозы цистамина. [c.100]

Хотя действие цистамина у мышей нельзя связать с активизацией холинергической системы, данные литературы о его холиномиметических эффектах у крыс и кроликов и наши собственные полученные ранее данные о гемо-динамических изменениях, вызванных введением цистамина тем же видам животных, позволили нам оценить роль активизации системы блуждающего нерва в действии цистамина на крыс. Мы исходили из предположения, что повышенный циетамином с помощью центрального механизма тонус парасимпатической системы может быть в той или иной мере устранен его периферическим холинолити-ческим влиянием. Взаимоотношения между центральным и периферическим действием цистамина у разных видов лабораторных животных могут различаться. Например, реакции кровяного давления на МЭА и цистамин носят про- [c.105]

К клиническому применению цистамина у больных, подвергающихся лучевой терапии, следует подходить индивидуально с учетом их переносимости самой терапии. В наших экснериментах на крупных лабораторных животных комбинация цистамина с метоклопрамидом [ eru al, ГДР] оказалась пригодной для устранения нослецистами-. новой рвоты. Эту комбинацию можно рекомендовать и больным для приема внутрь. По нашим и иностранным экспериментальным данным, гаммафос — более перепек тивный радиопротектор, чем цистамин. Вопрос об адекватности применения доступного радиопротектора цистамина у больных, подвергающихся лучевой терапии,— решит практика. Если для нее окажется полезной данная работа, то поставленную перед собой цель мы будем считать достигнутой. [c.170]

Пожалуй, наиболее просто оценивать всасывание вещества через кожу с помощью третьей группы методов — по уменьшению количества вещества, нанесенного на кожу. Е. Burgi (1942) предложил метод, согласно которому к коже прикрепляется стеклянный колпак, содержащий раствор изучаемого вещества определенной концентрации. Уменьшение концентрации раствора, по мнению автора, свидетельствует о всасывании вещества через кожу. В этом случае такх<е удобной оказывается методика с погружением хвоста мелких лабораторных животных в раствор вещества. [c.27]

По таким методикам можно изучать всасывание веществ через кожу не только лабораторных животных, но и человека, в этом их преимущество. Лоскут кожи человека можно получить либо во время хирургических операций, либо после смерти (не позднее чем через 10—12 ч). Следует вместе с тем напомнить, что результаты исследований in vitro не могут быть полностью перенесены на целостный орга- Рис. 7. Схема установки для из-jjjjojy учения всасывания веществ через [c.39]

Автор подробно описал клиническую картину отравления этими соединениями после накожного их применения у кошек, кроликов, собак и других лабораторных животных. Он отметил, что наиболее токсичен зарин, его ЛДзо при накожной апплика- [c.64]

Повышение частоты хромосомных абераций соматических клеток отмечено в опытах на культуре лимфоцитов цельной крови человека и при введении препаратов лабораторным животным (М. А. Пилинская, 1971, и др.). [c.84]

Токсичность меркаптофоса при внутривенном введении была более чем в 10 раз выше, чем метилмеркаптофоса. Примерно такое же соотношение в токсичности между этими препаратами отмечено Ю. С. Каганом (1963), Н. К. Стацек (1960) при пероральном введении белым крысам и лабораторным животным других видов. При аппликации на кожу меркаптофос токсичнее своего метилового аналога почти в 20 раз. [c.97]

Кожа большинства лабораторных животных лишена потовых желез. В условиях in vitro кожа человека мало чем отличается от кожи лабораторных животных, во всяком случае трансгляи-дулярный путь всасывания веществ практически исключен. Поэтому необходимо с известной осторожностью относиться к данным о влиянии, в частности, высокой температуры на всасывание веществ через кожу, полученным с использованием изолированных лоскутов. [c.106]

Действие ФОС в условиях хронического опыта изучалось в основном при введении их различным лабораторным животным в желудок, главным образом при скармливании веществ с пищей. J. Barnes, F. Denz (1954) отметили явление привыкания крыс к меркаптофосу, который скармливали им в течение длительного времени. Н. Malla h (1956), на основании результа тов анализа полученных данных, делает заключение, что возмож ность привыкания к ФОС не исключает возникновения хрони ческих интоксикаций. [c.117]

Т. Fredriksson (1961в, 1962) установил скорость всасывания тиофоса и параоксана. В опытах на лабораторных животных (кошки, крысы) она соответственно была равна 5 нмоль/(мин см ) и 0,47 — 0,95 нмоль/(мин см ). Автор оценивает эти величины как сравнительно низкие. [c.178]

Как было показано ранее, исходными величинами для оценки опасности смертельного исхода при воздействии ядов на высоких уровнях доз и концентраций являются параметры распределения индивидуальной чувствительности животных. Чем меньше индивидуальные различия, тем яд (при прочих равных условиях) опаснее, ибо возможности систем компенсации в данном конкретном случае значительно сужены. Смертельные дозы при введении в желудок лабораторных животных установлены только для H I3 и I4 и представлены в табл. 58. [c.162]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология