Дезоксирибонуклеопротеид

Дезоксирибонуклеопротеиды содержатся преимущественно в ядрах клеток, в то время как рибонуклеопротеиды преобладают в цитоплазме. Дезоксирибонуклеопротеиды хорошо [c.48]

Нуклеазы (дезоксирибонуклеаза, рибонуклеаза) способны разжижать гнойные массы вследствие деполимеризации дезоксирибонуклеи-но-вых кислот и дезоксирибонуклеопротеидов, которые входят в их состав. [c.182]

Выделение дезоксирибонуклеопротеида из ткани селезенки или зобной железы и открытие дезоксирибонуклеиновой кислоты [c.48]

В составе хроматина эукариот, наряду с ДНК, имеются основные белки-гистоны, участвующие, как полагают, в репрессии матричной активности и структуризации дезоксирибонуклеопротеида [c.47]

Во всех трех случаях первая затравка для синтеза —) цепи образуется на совершенно определенном участке фагового генома, разном у разных фагов. Соответствующий участок, очевидно, содержит сигналы в виде последовательности нуклеотидов и элементов вторичной структуры, которые специфически узнаются соответственно РНК-полимеразой (в ДНК фага М13), праймазой (у G4) и полипептидом п (у срХ174). Подчеркнем, что в разобранных случаях матрицей для образования затравки является не голая ДНК, а дезоксирибонуклеопротеид, образованный в результате взаимодействия ДНК с ДНК-связывающим белком Е. oli. [c.263]

Элонгация (удлинение) цепи ДНК осуществляется ДНК-зависи-мыми ДНК-полимеразами. В этой реакции участвуют также и вспомогательные белки, наборы которых могут различаться в разных системах и на разных этапах репликации одного и тогд же генома. В частности, различны эти наборы при синтезе ДНК на однонитевой матрице (или, как говорят, при репарационном синтезе) и на двухнитевой матрице (при синтезе с вытеснением цепи). В первом случае важным вспомогательным участником реакции являются ДНК-связывающие белки, которые превращают матрицу в дезоксирибонуклеопротеид. При этом исчезают многие из элементов вторичной структуры матрицы, она как бы выпрямляется , что облегчает поступательное и процессивное движение ДНК-полимеразы. Сходную роль — помощь ДНК-полимеразе в преодолении препятствий , в частности шпилечных структур на матрице,— могут играть и другие дополнительные (в том числе и вирус-специфические) репликационные белки. [c.266]

Все операции следует проводить на холоде. Около 20 г ткани (печень, мозг, селезенка, см. сноску на с. 167), взятой после декапитации (с. 221), измельчают ножницами и гомогенизируют (или растирают) в 10-кратном объеме 0,14 М Na l (п. 2). Полученный гомогенат фильтруют через 1—2 слоя марли. К фильтрату добавляют равный объем фенола pH 6,0. Смесь интенсивно встряхивают в колбе с притертой пробкой или делительной воронке в течение 40 мин и центрифугируют на холоде (600 , 30 мин). Содержимое пробирки (стакана) разделяется на 3- слоя. Верхний (водный), содержащий депротеинизирован-ную РНК, осторожно отсасывают при помощи шприца в чистую колбу и сохраняют. Средний слой, непрозрачный, вязкий, содержащий дезоксирибонуклеопротеиды и нерастворимые в феноле белки, подвергают вторичной обработке фенолом. Третий — прозрачный фенольный слой, содержащий растворимые в феноле белки, отбрасывают. [c.168]

Выделение дезоксирибонуклеопротеида и определение дезоксирибо нуклеиновой кислоты. Дезоксирибонуклеопротеид с дифениламином при нагревании дает синее окрашивание в результате гидролиза и освобождения дезоксирибозы, которая и реагирует с дифениламином. Рибоза с дифениламином образует продукты реакции, окрашенные е зеленый цвет. [c.60]

Методика опыта. 1 г печени растирают в течение 10—15 мин в фарфоровой ступке со 100 г промытого песка или с битым стеклом, постепенно подливая небольшими порциями 15 мл 5%-ного раствора Na l. Затем растертую массу центрифугируют в течение 10—15 мин. Центрифугат переносят в стакан емкостью 100—150 мл и медленно, при помешивании стеклянной палочкой, добавляют 80—90 мл дистиллированной воды. Нерастворимый в воде дезоксирибонуклеопротеид выпадает в осадок и при помешивании стеклянной палочкой наматывается на нее в виде нитей. Палочку вместе с нитями осторожно вынимают и переносят в чистую пробирку, в которой дезоксирибонуклеопротеид растворяют в 1—2 мл 0,4%-ного раствора NaOH. К 5—10 каплям раствора дезоксирибонуклеопротеида добавляют равный объем дифениламинового реактива, перемешивают и помещают в кипящую водяную баню на 5 —10 мин. Смесь постепенно становится синей. [c.60]

Дезоксирибонуклеопротеиды являются главной составной частью клеточных ядер и могут быть названы также ядерными нуклеопротеидами. Получить дезоксирибонуклеопротеид легче всего из тканей, богатых клеточными ядрами (лейкоциты, сперматозоиды, вилочковая железа, селезенка). Характерным свойством ядерных нуклеопротеидов является их способность образовывать очень вязкие растворы в крепких растворах солей (например, в молярном растворе хлористого натрия) и нерастворимость в разведенных солевых растворах. [c.44]

Измерения вязкости проводили почти исключительно с целью изучения действия облучения на водные растворы дезомсирибо-нуклеиновой кислоты. Действие облучения на вязкость было очень значительным, особенно, если измерения проводили при низкой скорости сдвига, Тиксотропный гелеобразный характер растворов этой кислоты значительно уменьшается даже при таких малых дозах, как 5600 р[124]. При высоких скоростях сдвига действие облучения уменьшается, но еще легко измеримо. Гель дезоксирибонуклеопротеида также очень чувствителен к облучению даже такие небольшие дозы, как 250 р, вызывают значительное снижение структурной вязкости [125, 126], Если гель дезоксирибонуклеопротеида приготовлен на 0,1 М растворе хлористого натрия, белок и дезоксирибонуклеиновая кислота диссоциируют в это же самое время ионное отталкивание вдоль цепочки нуклеопротеида уменьшается вследствие увеличения ионной силы, В результате спираль кислоты сокращается в размерах, межмолекулярное взаимодействие уменьшается и вязкость резко падает, стремясь к обычной характеристической вязкости. Рентгеновские лучи в дозах, которые резко снижают структурную вязкость, обладают крайне незначительным действием на характеристическую вязкость [126], [c.253]

Если раствор дезоксирибонуклеопротеида в 1 М хлористом натрии разбавить в несколько раз водой, то дезоксирибонуклео-протеид выпадает в виде характерных нитей. Когда эти нити нуклеопротеида, суспендированные в 0,9%-ном растворе хлористого натрия, облучали электронами с энергией 800 кв, то дезоксирибонуклеиновая кислота отделялась от белка и была обнаружена в надосадочной жидкости после осаждения нитей нуклеопротеида центрифугированием. Ожидали, что белок должен также отщепляться, но этого не наблюдалось. Несмотря на гетерогенность системы, описанный эффект обусловлен главным образом косвенным действием он не имеет места в замороженной суспензии. [c.253]

Кузин А. М., Будилова Е. В., О дезагрегирующем действии ионизирующей радиации на нити дезоксирибонуклеопротеида. Биофизика, 2, № 4, 476—479 (1957). [c.277]

Нуклеопротеиды Дезоксирибонуклеопротеиды, входящие в [c.37]

Дезоксирибонуклеопротеиды (ДНП) — белки клеточных ядер, состоящие из дезоксирибонуклеиновой кислоты (ДНК) и белковой части. Чем больше на единицу веса ткани приходится ядер, тем богаче она ДНК.Особенно много ДНП в тканях селезенки и тимуса. По методу Мирского и Полисте-ра дезоксинуклеопротеиды можно экстрагировать из ядер крепкими (1—2 М) растворами солей и осадить, добавляя дистиллированную воду. [c.71]

Ход работы. 0,5 г ткани зобной железы или селезенки растирают в фарфоровой ступке со 100 мг стеклянного порошка, постепенно подливая небольшими порциями 15 мл 5% раствора хлористого натрия. Растирание продолжают в течение 10—15 минут. Содержимое ступки переносят в центрифужные пробирки, уравновешивают их на центрифужных весах (рис. 8) и центрифугируют 10—15 минут. В стакан емкостью 100—150 мл наливают 80—90 мл дистиллированной воды и медленно, при помешивании стеклянной палочкой вливают в воду волученный центрифугат. Нерастворимый в воде дезоксирибонуклеопротеид выпадает в осадок и наматывается в виде нитей на стеклянную палочку. Нити дезоксирибонуклеопротеида осторожно вынимают вместе с палочкой переносят в чистую пробирку и растворяют в 1—2 мл 0,4% раствора едкого натра. К 5—10 каплям раствора дезоксирибонуклеопротеида добавляют равный объем дифенил-аминового реактива, перемешивают и ставят в кипящую водяную баню на 5—10 минут. Жидкость постепенно приобретает синее окрашивание. [c.48]

Исследованиями А. В. Палладина установлено, что нейростромин является рибонуклеопротеидом, а нейроглобулин — дезоксирибонуклеопротеидом. По мере развития организма количество этих белков в ткани мозга увеличивается. Таким образом, с изменением функциональной деятельности мозга изменяется и его химический состав. [c.242]

При осаждении из солевых растворов ядерные нуклеопротеиды выпадают в виде нитей. Фосфористые белки , описанные еще в прошлом веке А. Я. Данилевским, являются в основном дезоксирибонуклеопротеидами. Ядерные нуклеопротеиды составляют также главную часть так называемых струк урных белков различных тканей. [c.44]

Работа 52. Выделение дезоксирибонуклеопротеида из [c.71]

Гидролиз препарата перед обработкой фуксинсернистой кислотой можно проводить не в 1 и. НС1, а в ТХУ. При этом удаляется только РНК, а гистоны остаются. Их можно обнаружить и фотометрировать, проведя дополнительное окрашивание препарата прочным зеленым в щелочной среде [13]. Основные белки не мешают реакции Фельгена, если она проводится при pH в пределах 1,3—1,8. В этих условиях дезоксирибонуклеопротеиды диссоциируют. При более высоком pH реакцией Фельгена не выявляется часть ДНК, связанная с сильно основными белками типа протаминов и -аргининовых гистонов. [c.141]

По способности извлечения ДНК слабыми солевыми растворами. Лабильная ДНК, представляющая собой обедненный или ненасыщенный гистонами дезоксирибонуклеопротеид диспергированной части хроматина, способна растворяться и извлекаться из ядра 0,14—0,2 М Na l. Остальная часть ДНК находится в составе нуклеогистона, упакованного дополнительными белками (лизиновыми гистонами, негистоновыми белками и т. д.) в более или менее компактный хроматин. Она извлекается из ядра в виде нуклеогистона лишь после обработки 1—2 М Na l в результате диссоциации комплекса на молекулярную форму дезоксирибонуклеопротеида и связывающий его белок. [c.176]

Для другой области клинических исследований представляет интерес сообщение Зальцера и Балиса [62] об аминокислотах, которые входят в состав дезоксирибонуклеопротеидов (ДНП) опухолей. Установлено, что ДНП опухолей содержат меньше основных аминокислот, чем ДНП нормальных тканей, и что в некоторых небольших опухолях присутствует также вещество, хроматографически подобное ароматическим аминокислотам. [c.10]

Компоненты нуклеиновых кислот. Как уже было сказано, сложные белки — нуклеопротеиды состоят из белка и нуклеиновых кислот. В зависимости от природы нуклеиновой кислоты нуклеопротеиды делятся на рибонуклеопротеиды, содержащие рибонуклеиновую кислоту (РНК), и дезоксирибонуклеопротеиды, содержащие дезоксирибонуклеиновую кислоту (ДНК). [c.60]

Определение ИУК, связанной с нуклеопротеидами. В растущих вегетативных органах растений ИУК главным образом связывается с протеидами — рибо- и дезоксирибонуклеопротеидами. При количественном определении связанной ИУК с нуклеопротеидами в начале необходимо получить препараты рибонуклеопротеидов и дезок-сирибонуклеопротеидов. [c.36]

Отделение дезоксирибонуклеиновой кислоты от белковой части нуклеопротеида проводят таким же способом, как и отделение рибонуклеиновой кислоты, только с той разницей, что препарат дезоксирибонуклеопротеида гидролизуют не при нулевой температуре, а в кипящей бане. После гидролиза дезоксирибонуклеино- [c.36]

Действие N-нитpoзo-N-мeтилмoчeвины на свойства дезоксирибонуклеопротеида бычьих сперматозоидов. Е. К. С у р о д е е в а. Н. В. Ч е л я п о в. В сб. -Эффек-тивность химических мутагенов в селекции . М., Наука , 1976 г., стр. 324—326 [c.352]

Хотя нуклеопротеиды в основном являются нуклеогистонами, хромосомы млекопитающих содержат также небольшие количества дезоксирибонуклеопротеидов, состоящих из белков, отличающихся от гистонов. Эти комплексы имеют, по-видимому, ковалентные связи между компонентами, так как утверждается, что ферментативный распад дает олигодезоксинуклеотидные фрагменты, связанные с короткими пептидами [525]. [c.449]

Ионы металлов дюгут играть существенную роль в связывании и структурных взаимоотношениях белка и нуклеиновой кислоты в дезоксирибонуклеопротеидах. Представляет интерес освобождение ДНК из нуклеопротеида в результате одновременного воздействия комплексообразующего агента и взaи юдeй твия с белком [546]. [c.451]

Белковые (пептидные) сшивки имеют, по-видимому, вообще большое значение для структурирования ДНК и дезоксирибонуклеопротеидов. Пептиды обнаружены в препаратах ДНК, выделенных из самых различных источников. Они связаны с полинуклеотидными цепями ковалентными связями. Пептидные мостики придают жестким двухтяжным молекулам ДНК необходимую гибкость, которая позволяет им укладываться в небольшом объеме.— Прим. перев. [c.559]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология