Нуклеогистоны

Гистоны. Гистоны являются основными белками (менее щелочными, чем протамины), входящими в состав соматических клеток. У высших организмов нуклеогистоны составляют основной компонент хромосом. Существует несколько типов гистонов. Их молекулярный вес лежит в пределах от 10 000 до 20 000. По-видимому, гистон имеет свою собственную вторичную структуру. Поскольку ДНК в комплексе с гистоном не может служить затравкой при синтезе РНК, было высказано предположение, 1то гистоны каким-то образом регулируют активность гена. Изучение протаминов и гистонов находится еще в самой начальной стадии. [c.358]

А. Ф. Половянюк и В. Г. Конарев показали, что максимум поглощения фельгеновской реакции для нуклеогистона относительно максимума для свободной ДНК сдвинут от 560 к 540 ммк. В присутствии гистонов усиливается поглощение комплекса ДНК-фуксинсернистая кислота в сине-фиолетовой области спектра (рис. 18). [c.143]

Спектрополяриметрия позволила получить интересные сведения о состоянии нуклеиновых кислот в рибосомах [155, 157], вирусах [157], нуклеогистонах [158] и т. д. [c.320]

Проведенные нами электронномикроскопические исследования показали, что основу структурной организации хроматина составляет упорядоченная укладка нитей нуклеогистона в виде спиралей первого, второго и третьего порядков [1], [13]. [c.17]

Оставшиеся части НК (ДНК в составе нуклеогистонов и прочно связанная в структурах РНК) находятся во втором и четвертом слоях кислого фенольного центрифугата. Указанные слои объединяют и обрабатывают новой порцией фенола pH 6 с равным объемом 0,14 М Na l — 0,01 М Mg b. [c.68]

Если pH фенола ниже 6,2, то ДНК нуклеогистона не переходит в водный слой. В этом случае ДНК распределяется между вторым и четвертым слоями (третий — фенольный — слой не содержит ДНК и РНК). При pH фенола 4,7—4,9 ДНК обнаруживают в осадке четвертого слоя, а при использовании фенола с pH 6,0 почти вся ДНК, за исключением лабильной фракции, оказывается- во втором слое. В распределении РНК pH фенола такого значения не имеет. [c.70]

Фельгена. В этом проявляется стабилизирующее действие белка на ДНК. В то же время при максимальном проявлении реакции Фельгена для свободной ДНК интенсивнее, чем для нуклеогистона (5-минутный гидролиз при 60°). Здесь сказывается блокирующее действие гистона на ДНК. [c.144]

По способности извлечения ДНК слабыми солевыми растворами. Лабильная ДНК, представляющая собой обедненный или ненасыщенный гистонами дезоксирибонуклеопротеид диспергированной части хроматина, способна растворяться и извлекаться из ядра 0,14—0,2 М Na l. Остальная часть ДНК находится в составе нуклеогистона, упакованного дополнительными белками (лизиновыми гистонами, негистоновыми белками и т. д.) в более или менее компактный хроматин. Она извлекается из ядра в виде нуклеогистона лишь после обработки 1—2 М Na l в результате диссоциации комплекса на молекулярную форму дезоксирибонуклеопротеида и связывающий его белок. [c.176]

Если полученные таким образом хромосомы лимфоцитов поместить в нейтральный 1 М раствор хлористого натрия, то они диспергируют с образованием очень вязкой взвеси. Центрифугирование последней в течение 1—2 час со скоростью 18 ООО— 19 ООО об1мин приводит к появлению плотного осадка и слегка опалесцирующей, очень вязкой надосадочной жидкости. В надосадочной жидкости содержится большое количество нуклеогис-тона, составляюш,его 90—92% хромосомной массы [208]. Нуклеиновая кислота в нуклеогистоне представлена почти целиком ДНК. При вливании вязкого раствора нуклеогистона в шестикратное но объему количество воды образуется волокнистый осадок, содержащий 45% ДНК и 55% гистона. [c.143]

В то время как исходные хромосомы дают интенсивную реакцию Фёльгена, остаточные хромосомы окрашиваются лишь слегка, поскольку большая часть дезоксирибонуклеиновой кислоты перешла в раствор в виде нуклеогистона. Исходные хромосомы окрашиваются смесью пиронина и метилового зеленого в нурпу-рово-синий цвет, а остаточные хромосомы — в красный, что соответствует относительному содер канию в этих образованиях нуклеиновой кислоты. [c.143]

Относительное содержание в хромосомах различных компонентов варьирует в зависимости от источника их получения. Так, в эритроцитах рыбы остаточные хромосомы составляют лишь 5% всех хромосом, а в клетках печени — 40—50%. В хромосомах печепи содержится всего 45% нуклеогистона, тогда как хромосомы лимфоцитов на 90% состоят из него. Относительное содержание нуклеиновой кислоты, представленной РНК, составляет 12% в хромосомах печени, 3% в хромосомах зобной железы и 0,15% в хромосомах спермы форели [208]. [c.144]

Передача энергии от протеина к ДНК иллюстрируется, в частности, следующими данными, относящимися к облученному нуклеогистону. При соблюдении правила аддитивности для этого нуклеотида G (R) должен быть равен 1,7 G (R) для гистона и ДНК составляет соответственно 2,7 и 0,5], экспериментальная величина равна 0,9 [231]. [c.315]

Нуклеиновые кислоты 3—591 1—58 Нуклеогистоны 3 — 605 Нуклеозидазы 3—(iOl [c.572]

СОСТАВ ОЧИЩЕННОГО ХРОМАТИНА ИЗ ЗАРОДЫШЕЙ ГОРОХА И ПОЛУЧЕННОГО ИЗ НЕГО НУКЛЕОГИСТОНА [8] [c.35]

Компонент Содержание в хроматине, % от общей массы Содержание в нуклеогистоне, % от общей массы [c.35]

ДНК, входящая в нуклеогистон, более устойчива к плавлению (фиг. 15). Нативный комплекс нуклеогистона, на котором проведены эти исследования, получен из хроматина гидродинамическим разрывом последнего с последующим отделением солюбилизированного нуклеогисто- [c.36]

Фиг. 16. Схема опыта по получению растворимого нативного нуклеогистона из хроматина. Хроматин подвергают гидродинамическому разрыву при этом полужесткие палочки ДНК, полностью связанные с гистоном, отщепляются от хромосомной структуры. Остаточный хроматин удаляют центрифугированием растворенный нативный нуклеогистон остается в надосадочной жидкости.

Около 20% ДНК плавится при температуре, характерной для ДНК гороха (69,5°), и примерно 80% — при температуре, характерной для ДНК, связанной в нуклеогистон (84°) [8]. [c.36]

В хроматине, как явствует из табл. 7, это отношение равно примерно 1. По-видимому, отсюда следует, что только часть ДНК хроматина входит в состав нуклеогистона. Это заключение подтверждается тем фактом, что плавление хроматина протекает в два этапа (фиг. 17) на [c.36]

Как упоминалось выше, дезоксирибонуклеиновые кислоты часто получаются расщеплением соответствующего комплекса нуклеиновая кислота — белок. Белковая часть имеет обычно сильно основные свойства и сравнительно низкий молекулярный вес. Нуклеопрота-мины [499] содержатся в зрелых сперматозоидах многих видов рыб, а нуклеогистоны [500, 501] выделены из клеточных ядер млекопитающих. Было отмечено поразительное сходство нуклеогисто- [c.447]

И аминогрупп, которые при повторном воссоединении образуют неспсцифичные поперечные связи между цепями ДНК и гистона (или с добавленным белком или нуклеиновой кислотой), давая комплексы переменного состава и неопределенной структуры [5051. Агрегация может также происходить в результате объединения гистонов из различных нуклеопротеидных частиц, что приводит к образованию геля [507]. Изучение метахроматизма, возникающего в окраске толуидинового голубого под действием нуклеогистона из зобной железы теленка, имеющего общий отрицательный заряд, равный приблизительно 7 заряда ДНК, показало, что в цепи полимера встречаются несвязанные фосфатные группы [504], по-вндимому из-за отсутствия в линейной частице целой субъединицы гистона. [c.449]

Хотя нуклеопротеиды в основном являются нуклеогистонами, хромосомы млекопитающих содержат также небольшие количества дезоксирибонуклеопротеидов, состоящих из белков, отличающихся от гистонов. Эти комплексы имеют, по-видимому, ковалентные связи между компонентами, так как утверждается, что ферментативный распад дает олигодезоксинуклеотидные фрагменты, связанные с короткими пептидами [525]. [c.449]

Еще слишком мало достоверных данных получено относительно макромолекулярной организации нуклеиновых кислот и белков в нуклеопротеидах. В дезоксинуклеогистонах и родственных им комплексах основной белок в большей или меньшей степени закручен вокруг ДНК, которая в нуклеопротеиде имеет ту же конформацию, что и в изолированном состоянии [360, 361, 408, 4091. Связывание фосфатных ионизированных групп с основными группами белка осуществляется, по-видимому, главным образом за счет солеобразных связей, так как при растворении в 1 М. растворе хлористого натрия нуклеопротеиды в значительной степени диссоциируют [362[. Спектрофотометрическое титрование нуклеогистона из зобной железы теленка фактически идентично титрованию свободной нативной ДНК при тех же значениях ионной силы [363]. По-видимому, большое значение имеют стереохимические факторы, которые определяют укладку белковых субъединиц в большой жело- [c.628]

Рентгенограммы под большими углами порошка вируса мозаики желтого турнепса (содержащего 40% РНК) и белков оболочки этого вируса показывают, что кривая рассеяния вируса не является простой суммой рассеяния, обусловленного белком и свободной вирусной РНК. Возможно, что вторичная структура РНК в этом вирусе (на которую, по-видимому, влияет белок) отличается от вторичной структуры изолированной вирусной нуклеиновой кислоты [364]. Однако рентгенографический анализ рибонуклеонротеидных частиц из Е. соИ [365], дрожжей и печени крысы [366] указывает на то, что структура РНК в этих частицах сходна со структурой свободных РНК [365, 366]. Изменение характера рентгенограмм этих частиц с изменением влажности напоминает результаты, полученные для нуклеогистонов, которые показывают, что структура нуклеиновой кислоты и структура белка в известной степени независимы друг от друга. [c.629]

Нуклеопротамины были получены из спермы рыб, нуклеогистоны — из зобной железы и других тканей млекопитающих. Содержание нуклеиновых кислот в этих нуклеопротеидах колеблется от 31 до 66% [245]. Нуклеопротеиды, выделенные из растений или из бактерий, не содержат ии протаминов, ни гисто-иов в их состав входят только истинные белки [285]. Такие же истинные нуклеопротеиды были найдены в тканях животных (см. гл. XVII). [c.264]

На наш взгляд, задержку митоза, так же как и торможение синтеза ДНК, можно объяснить конфигурационными изменениями ее вторичной и третичной структур, которые происходят в результате повреждений в ее первичной структуре. Конфигурационный переход ДНК может создавать препятствие в таком биологическом процессе, как формирование хромосом в Ог-пе-риод. Действие молекулярного усилителя первичных повреждений ДНК в этом важном процессе можно представить следующим образом. Для образования хромосомной субъединицы — нуклеогистона — требуется стерическое соответствие между спиралью ДНК и аргининовым и лизиновым гистонами. Аргинино-вый гистон находится в частично спирализованной а-форме, в точности соответствующей параметрам большого желоба спирали ДНК в В-форме, в котором он и укладывается. Переход спирали ДНК из В-формы в А-форму нарушает это соответствие. Поэтому процесс протеинизации ДНК может выключиться. Косвенным указанием на возможность этого механизма может служить факт ухода гистона из ядра клетки сразу после облучения. [c.41]

Глобиновые фракции гемоглобина и миоглобина лошади имеют основной характер (см. табл. 9 и 17), хотя их основность не так явно выражена, как у истинных нуклеогистонов. [c.233]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология