Декапитация

Быстрая декапитация. Этот способ является наиболее удобным для изучения изменений в нервной системе и внутренних органах, но при нем иногда во время агонии животных может возникать аспирация крови в легочную ткань, поэтому некоторые авторы рекомендуют перерезать лишь спинной мозг, не перерезая трахеи и крупных сосудов шеи. [c.121]

В запланированные сроки все животные были убиты декапитацией. Центральная нервная система и внутренние органы исследовались, мак-ро-и микроскопически с применением общих и специальных методов окраски. [c.566]

Серия А. После декапитации крысы печень быстро охлаждали и освобождали от крови перфузией охлажденным раствором фосфата по Кребс-Рингеру, после чего из нее приготовляли срезы. Инкубацию срезов производили в аэробных условиях в аппарате Варбурга. Каждый сосудик содержал по 5,0 мл фосфата Кребс-Рингера, pH 7,4, 50 мг глюкозы (или фруктозы) и 0,5 г срезов. Непосредственно перед началом инкубации в каждый сосудик добавляли 0,1 мл раствора 5 -метионина (25 000 имп/мин). Срезы инкубировали 3 часа при 37° газовая среда — воздух. По окончании инкубации определяли удельную активность белка срезов описанным выше способом. [c.192]

Животное убивают (крысу —декапитацией, кролика—воздушной эмболией), быстро извлекают печень, осушают фильтровальной бумагой после промывания дистиллированной водой, помещают в чашку Петри, наполненную льдом или снегом, тонким бритвенным лезвием приготовляют срезы толщиной 0,3— —0,5 мм, берут нужную навеску на торзионных весах и переносят срезы в газовый сосуд Кребса, в который перед этим были внесены 6 мл рингер-бикарбоната и 1 мл раствора хлористого аммония (4,28 мг). Затем пропускают через сосуд в течение 8— —10 минут кислород (из газометра), помещают в водяную ба- [c.545]

При промышленном выращивании табака проводят декапитацию основного стебля, чтобы получить листья с желаемыми физическими свойствами и химическим составом. К сожалению, этот прием снимает апикальную доминантность основного стебля, вызывая последующий рост боковых почек, или волчков, образование которых [c.60]

Много внимания привлекало исследование зависимости образования ацетилхолина от времени. Первое исследование в этом направлении, выполненное Льюисом и Фоулером [52] в 1956 г., показало, что у мясных мух, обработанных высокой дозой ДФФ, хотя и наблюдалось увеличение общего количества ацетилхолина в организме, но содержание его в голове отчетливо снижалось. Возможно, это было связано с переходом ацетилхолина из головы в грудь или брюшко, поскольку в этих частях тела его содержание резко возрастало. Этот вывод был подтвержден также и тем, что после декапитации мух в отделенных головах снижение уровня ацетилхолина составляло 20%, тогда как у интактных насекомых — 75%. [c.289]

После окончания срока затравки животные убивались декапитацией. Макро- и микроскопическая картина головного и спинного мозга, легких, миокарда, печени, селезенки, почек, желудка, тонкого и толстого кишечников изучалась с помощью общих и некоторых специальных методов окраски гематоксилин-эозином по Ннсслю, пикрофуксином, на жир Суданом (III), на железо по Перльсу, на эластические волокна по Харту. [c.687]

Из ранних приемов экспериментального получения полиплоидных форм наиболее эффективными были метод декапитации и воздействие высокими температурами. [c.75]

После того как животное заморожено, приступают к после- Довательному извлечению органов и тканей. Декапитацию н разделку тушки животного необходимо производить на столике со специальной защитой из плексигласа. Для извлечения голов- [c.15]

После декапитации замороженного животного, которому вводится радиоактивный углерод, из тушки извлекаются печень и бедренная мышца и растираются до порошка, из которого берутся навески для определения количественного содержания гликогена и параллельно для определения его удельной активности. [c.59]

Многолетние опыты Н. Г. Холодного, Ф. Вента, К. Тимана и других установили, что гормоны способны мигрировать из верхушки колеоптиля в другие участки этого органа, другие ткани и вообще в любой другой орган. Например, если на пути между срезанной верхушкой и основанием колеоптиля поместить агаровую пластинку, то гормоны мигрируют в последнюю, причем содержащие их агаровые пластинки способны замещать действие верхушек колеоптиля. Будучи приклеены к основанию колеоптиля со срезанной верхушкой, они возвращают ему способность к росту, которая утрачивается после декапитации. [c.558]

Ход определения. После декапитации животного быстро извлекают кусочек ткани, берут навеску 600 мг, замораживают в токе угольной кислоты и растирают с [c.103]

Если на проросток канареечной травы надеть- колпачок и подвергнуть его одностороннему действию света, изгиба ие произойдет. При декапитации — удалении верхушки колеоптиля у проростков и воздействии на них односторонним освещением изгиба также не будет. При фототропизме изгиб осевых органов у растений обусловливается тем, что рост одной стороны стебля или корня замедляется, а другой — ускоряется. [c.423]

В дальнейшем, если не оговаривается специально, крысу непосредственно перед опытом эвтаназируют мгновенной декапитацией. [c.28]

Подготовка животного. Крысе весом 200—250 г вводят внутри-эрюшинно адреналин (коммерческий) из расчета 0,4 мг на 1 кг веса кивотного. Через 2 ч из яремной вены берут шприцем кровь и выли- ают ее в пробирку с оксалатом (для предотвращения свертывания). Три отсутствии навыков взятия крови из яремной вены кровь соби-)ают в фарфоровую чашку с оксалатом в момент декапитации. [c.59]

Все операции следует проводить на холоде. Около 20 г ткани (печень, мозг, селезенка, см. сноску на с. 167), взятой после декапитации (с. 221), измельчают ножницами и гомогенизируют (или растирают) в 10-кратном объеме 0,14 М Na l (п. 2). Полученный гомогенат фильтруют через 1—2 слоя марли. К фильтрату добавляют равный объем фенола pH 6,0. Смесь интенсивно встряхивают в колбе с притертой пробкой или делительной воронке в течение 40 мин и центрифугируют на холоде (600 , 30 мин). Содержимое пробирки (стакана) разделяется на 3- слоя. Верхний (водный), содержащий депротеинизирован-ную РНК, осторожно отсасывают при помощи шприца в чистую колбу и сохраняют. Средний слой, непрозрачный, вязкий, содержащий дезоксирибонуклеопротеиды и нерастворимые в феноле белки, подвергают вторичной обработке фенолом. Третий — прозрачный фенольный слой, содержащий растворимые в феноле белки, отбрасывают. [c.168]

Возможность отра лейия через кожу и местное на нее действие исследовано на 39 мышах, хвосты которых на 2 ч погружались в испытуемые вещества, взятые в чистом виде. В последующие 15 дней животных ежедневно взвешивали и наблюдали за состоянием их хвостов. Гибели мышей, изменения общего состояния и местного действия веществ при этом не отмечалось. По истечении указанного срока животные были убиты декапитацией. При вскрытии всех животных, использованных в острых опытах, видимых изменений во внутренних органах не обнаружено. [c.702]

В наших исследованиях за методическую основу были взяты материалы, изложенные в известных работах [7, 8]. От каждого экспериментального животного с опухолью и контрольных здоровых животных, после декапитации, стерильно получались ткани опухолевой массы селезенки, печени, легких, сердпа, почек, мозга, скелетной мышцы (без метастаз), а также приготовлялись три фракции крови дефибринированная кровь, эритроциты и плазма. Ткани стригли ножницами, промывали холодным физиологическим раствором, лиофильно высушивали и приготовленные в соответствующих условиях образцы (30 мг) в запаянных ампулах помещали в резонатор спектрометра. Измерения проводили в унифицированных условиях на радиоспектрометре ЭПА-2, выполненном по схеме двойной магнитной модуляции с частотами 50 гц и 910 кгц при длин волны 2,8 см. Диапазон магнитной развертки — от О до 5000 эрстед. Чувствительность прибора при работе на самописце — 10 г-моля дифенил-пикрилгидразила. Образцы помещали в пучность магнитного ноля при помощи специального держателя или в сосуде Дюара. Спектры ЭПР снимали при температу11е жрщкого азота и при комнатной температуре -77 и 300° К. [c.146]

Морские свинки первой группы (контрольные) получали только диету второй группы—1 АК ежедневно с начала опыта третьей —1 мг АК и 10 мг катехинов четвертой — 1 АК и 10 л 0 кверцетина животных пятой—седьмой групп с начала опытного периода в течение 18—20 дней выдерживали на одной диете без витаминов С и Р и только после появления признаков цинги (падение веса, опухшие суставы) им назначали витамины С и Р свинкам пятой группы — 1 г АК, шестой — 1 ме АК и 10 жа катехинов, седьмой — 1 мг АК и 10 мг кверцетина ежеднев-в[0 в течение примерно четырех недель. Восьмая группа животных была оставлена на рационе вивария. По окончании опытного периода (45—50 дней) морских свинок забивали декапитацией и определяли способность их печени окислять добавленные в гомогенаты печени Ь-пролин или Ь-оксипролин. Интенсивность окисления пролина и оксипролина выражали в процентах окисленных субстратов по отношению к добавленным в пробу. [c.385]

Красивое ученое слово. Ничего не поделаешь, наука требует специальных терминов, ее понятия редко удается выразить общежитейским языком. Иногда, правда, слишком увлекаются необычной терминологией. Биологи грешат этим больше, чем физики. В одной биологической книге говорится о декапитации крыс в постна-тальном периоде. В переводе на русский язык это значит, что у крыс отрубали головы после их рождения. Крупные ученые не только не злоупотребляли сложными научными терминами, но обогащали свой родной язык новыми словами, органически связанными со всем его строем. Так поступали Галилей, Ломоносов. Обога щение языка происходит непрерывно и все время уско ряется, потому что наука развивается с ускорением Сколько слов вошло в русский язык за последнее де сятилетие спутник, лазер, космонавт и т. д. и т. п. [c.23]

Обхций белок сыворотки крови определяли рефрактометрически, белковые фракции — методом электрофореза на бумаге. Для изучения скорости обновления белков в печени крысам за 24 часа до декапитации вводили меченный по сере радиоактивный метионин в дозе 5000 ими./мин на 1 г веса тела внутрибрю-шинно. Обработку ткани печени для подсчета радиоактивности белка производили по описанному в литературе методу (И. И. Иванов и др., 1955). Для учета возможного изменения проницаемости ткани для изотопа определяли относительную активность белка печени по предложенной Д. Э. Гродзенским формуле относительная активность белка печени равна отношению радиоактивности белка в 1 г печени и 1 г цельной ткани печени. [c.387]

При исследовании контрольных крыс, умерщвленных путем быстрой декапитации, патологические изменения со стороны гистологических структур головного мозга обнаружены не были. В этом случае наблюдалась тонкая мягкая мозговая оболочка. сосуды ее были с неизмененными стенками, отдельные сосуды умеренно наполнены эритроцитами. Цитоархитектоническая структура мозга во всех его отделах отличалась четкостью. Нервные клетки имели сохраненный тигрбид и четкие ядра. Лишь в некоторых участках коры обнаруживались единичные гомогенно темно окрашенные нервные клетки. Астроциты был 1 небольшие, с тонкими отростками и крупными светлыми ядрами. Микроглии мало, клетки ее небольшие, отростки их тонкие, ветвящиеся. Очаговые скопления глии не отмечались. [c.418]

Радиоактивный фосфор вводился внутрибрюшинио на 2-ой день после последней затравки из расчета 20000 имп/г веса тела. Через 2 часа после введения радиоактивного фосфора под легким эфирным наркозом животные забивались, немедленно вырезывались мышцы и сразу же замораживались жидким кислородом (наркоз во время декапитации предотвра-ш,ает распад креатинфосфата). Голова животного попадала непосредственно в жидкий кислород, после чего извлекались большие полушария головного мозга, очищались от остатков крови и измельчались в жидком кислороде. [c.440]

Животных убивали декапитацией через час и 24 часа после введения изотопа, быстро извлекали желудочно-кишечный тракт, отпрепаровывали поджелудочную железу. Желудок и кишечник вскрывали и промывали водой. Желудок разделяли на отделы пищеводный, кардиальный, фундальный и пилорический. Выделяли двенадцатиперстную, тонкую и толстую кишки. Калсдый участок измельчали ножницами и растирали в 10% растворе трихлоруксусной кислоты. Осажденные белки промывали три раза 5% растворо.м трихлоруксусной кислоты, три раза спиртом, три раза спиртоэфирной смесью (1 1) и три раза эфироли Получе ные белковые препараты высушивали при температуре 60—65° и тонко растирали. Из каждого препарата готовили навеску на торзионных весах по 10 мг и переносили на мишень, приготовленную из фольги. Радиоактивность белковых препаратов определяли торцевым счетчиком в установке Б и выражали в импульсах в минуту в 10 мг сухого белка. [c.448]

С целью изучения действия упомянутого выше нового вида аморфной двуокиси кремния на органы дыхания нами прове-л.ег Ъ1 опыты иа 32 белых крысах. Пыль вводилась однократно интратрахеально в количестве 1 мл стерильной взвеси ее в физиологическом растворе. Взвесь пыли готовилась с таким расчетом, чтобы в 1 мл жидкости содержалось 50 мг исследуе,мой пыли. Крысы находились под наблюдением в течение И месяцев. За этот период в различные сроки погибли 6 крыс. Причиной гибели животных были пневмония, септикопиэмия, псевдотуберкулез. Остальные животные убивались путем декапитации через 2, 4, 12, 20, 30, 40 и 42 недели после введения пыли. [c.481]

Сущность метода декапитации сводится к возможности получения тетраплоидных побегов из регенерирующей ткани кал-люса после удаления верхушки растения. Этим методом были получены тетраплоидные формы томатов, капусты и некоторых других культур с хорошо выраженной способностью к регенерации. [c.75]

Искусственное получение полиплоидов давно привлекало внимание ученых, но в течение многих лет оно встречало большие трудности. Воздействие на растения во время мейоза высокими н низкими температурами, срезание верхушек молодых растений (метод декапитации, предложенный Г. Винклером и С. Йоргенсеном), использование различных наркотиков, центрифугирования и др. оказывались малоэффективными. Перелом в экспериментальной полиплоидии произошел в 1937 г., когда американские генетики А. Блексли и А. Айвери обнаружили, что колхицин вызывает удвоение числа хромосом в клетках. Колхицин (СггИгвОб) — алкалоид, сильный растительный яд. Содержится в семенах и клубне- [c.250]

Возможность ускорения аксотока была показана нами при исследовании восстановительного периода после серии ЭС при длительных сроках наблюдений (табл. 3). Установлено, что после серии ЭС (декапитация крыс спустя 64 часа после интрацеребрального введения изотопов и через 8 час. после последней серии ЭС) имело место некоторое снижение синтеза белка и РНК в цитоплазматической фракции ткани мозга при одновременном увеличении синтеза белка (и особенно РНК) в синаптических структурах. [c.45]

Рис. 16-41. Механизм создания пространственной структуры вследствие автокаталитического процесса. Вещество активатор в результате автокаталитического процесса накапливается до весьма высокого уровня в небольшом участке, расноложение которого ойределяется слабовыраженной исходной асимметрией системы высокая концентрация активатора в этом участке вызывает образование ингибитора, диффундирующего на значительные расстояния и подавляющего синтез активатора в других участках. Папример, при декапитации гидры оставшаяся ткань в норме регенерирует голову, но если на место ампутированной головы или на некотором расстоянии от него пересадить голову другой гидры, то новой донолнительной головы не образуется.

Садка у самцов лягушки. У лягушек спаривание происходит следующим образом. После периода ухаживания половозрелый самец покрывает рецептивную самку, располагаясь со стороны ее спины, благодаря чему тазовые области животных соприкасаются и становится возможным оплодотвррение. Такое положение называется амплексусом, или охватом (см. рис. 28.10А). Для переноса спермы требуется много часов, и за это время самца могут попытаться оттеснить другие самцы или же самка может попытаться избавиться от него ради более привлекательных партнеров. Для того чтобы удержать свою позицию, самец крепко охватывает самку передними конечностями этот удивительный рефлекс может поддерживаться до 30 ч его дуга замыкается в пределах спинного мозга, так как после декапитации он сохраняется в течение нескольких часов (это было впервые обнаружено еще в 18-м веке). Совсем недавно группа исследователей, возглавляемая Д. Келли (Принстонский университет) и С. Эрулкаром (Пенсильванский университет), изучила спинномозговые нейронные сети, лежащие в основе этого рефлекса, в самых различных аспектах. Были получены следующие результаты [c.261]

Аномальные митозы и мейозы можно вызывать с помощью различных механических воздействий, в том числе и декапита-ццей, т. е. удалением верхушек побега. Опыты Винклера (1916) по искусственному образованию полиплоидных форм методом прививок весьма интересны, поскольку на полученных им тет-раплоидах удалось показать, что различия в числе хромосом приводят к морфологическим изменениям. Причиной возникновения полиплоидов в опытах этого ученого были не прививки, а поранения растений, стимулирующие митотическое деление. Регенерация, т, е. восстановление утраченных или поврежденных органов и тканей, а также восстановление целого организма из отдельных тканей, происходящая за счет каллюса рубцевания, иногда приводит к образованию некоторого числа тетра-плондных побегов именно поэтому декапитацию широко применяют у растений, способных к регенерации. Этот метод особенно эффективен для некоторых пасленовых, например, томатов. [c.148]

Эксперименты с декапитацией Е. fus us указывают на значительно большее содержание магнитного материала в туловище по сравнению с головой. Сама по себе декапитация снижает суммарную намагниченность головы и туловища примерно наполовину относительно интактной тушки. Сумма магнитных моментов головы и туловища после намагничивания приблизительно соответствовала исходному магнитному моменту для каждой тушки (табл. 23.2). [c.273]

Второе условие успешной работы со срезами — минимальная травмированность ткани. Обеспечение его начинается с декапи-тации животного. Применение анестетиков нежелательно вследствие их влияния на нервную ткань. Оглушение животного приводит к травматизации мозга. Мак-Ильвейн (M llwain, 1963) рекомендует проводить декапитацию со стороны горла с помощью опасной бритвы — это практически неудобно. Хорошо использовать гильотину, но она мало пригодна при серийном отборе материала. Для мелких грызунов наиболее практична декапитация с помощью больших ножниц движение должно быть резким и быстрым — при промедлении происходит сдавление подкожных вен и артериальные кровоизлияния, которые травмируют ткань мозга. Важнейшим условием минимальной травмы при непосредственном приготовлении среза является употребление специального технического устройства. [c.6]

Со времен Мак-Ильвейна (M llwain, 1963) при серийной работе рекомендуется накапливать группу срезов, сохраняя их на холоду. Этот прием, по нашему мнению, неудачен. На холоду сильно замедляется окисление и активный транспорт ионов и наблюдается сильное внутриклеточное набухание. При хранении на холоду у последовательно приготовленных срезов интервал между декапитацией и началом инкубации различен. Поэтому мы рекомендуем не хранить срезы, а с минимальным постоянным интервалом от начала декапитации помещать их сразу в преинкубационные со- [c.16]

Киыс-самцов (200—250 г) забивали декапитацией. Вскрь вали брюшную и грудную полости и в нижнюю полую вену через сердце вводили канюлю. Печень промывали холодным 1,15% раствором КС1 или 0,25 М раствором сахарозы (pH 7,4) до светло-желтого цвета. 1 с-пользование КС1 позволяет получить мнкросомную фракцию с минимальным содержанием балластного сор-, бированного белка. Сахарозу применяли в тех случаях, когда препараты микроорм подвергали дальнейшему фракционированию. Печень удаляли, отжимали на марлевой салфетке, взвешивали и измельчали ножницами. Все процедуры проводили в холодной комнате при О— [c.51]

В опытах применяют импульсную аминокислотную метку. С-аминокислоты ( 250 мкКи/кг массы тела) вводят либо внутрибрюшинно (на 5—10 мин), либо в воротную вену (на 1—2 мин). Животных забивают декапитацией, органы и опухоль извлекают, взвешивают, промывают ледяной водой, затем буфером А и гомогенизируют в этом буфере (в 3 объемах) в гомогенизаторе с тефлоновым пестиком. Полирибосомы выделяют по методу В. Л. Лейтина и М. И. Лермана (1969), измеряют их удельную радиоактивность и сравнивают с удельной радиоактивностью полирибосом из аналогичных тканей контрольных животных. Для измерения радиоактивности тотальных белков клеток берут пробы гомогената. [c.289]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология