Движение хлоропластов

Рис. 9. Движение хлоропластов у Funaria hygrometrie а а — положение хлоропластов при слабой освещенности (около 50 лк) б — их положение при сильной освещенности (около 1000 лк)

Среднее пропускание и отражение листьев и водорослей в белом свете. Приспособление к интенсивности света и движение хлоропластов [c.86]

Влияние концентрации раствора сахарозы на движение хлоропластов у элодеи [c.81]

О возможности проявления пассивных и активных движений хлоропластов мы уже говорили. И в тех и в других движениях, вероятно, участвуют белковые фибриллы типа актомиозина. При пассивных перемещениях сократительные белки находятся между экто- и эндоплазмой. Таким образом, цито- [c.37]

Сине-зеленые водоросли относятся к царству бактерий (у них есть даже другое название — цианобактерии). А могут ли организмы, принадлежащие к высшим царствам живой природы, двигаться за счет протонного потенциала Чтобы ответить на этот вопрос, мы занялись движением хлоропластов. [c.160]

Рис. 20-55. Схема, иллюстрирующая движения хлоропласта в клетке зеленой водоросли Mougeotia. Цилиндрические клетки этой водоросли содержат один-единственный хлоропласт плоской формы, который поворачивается в соответствии с условиями освещения, регулируя тем самым количество поглощаемого света (А). Часть хлоропласта, на которую падает очень яркий свет, способна изменить свою ориентацию независимо от

Скорость движения хлоропластов повышается при введении в клетки АТФ, и это заставляет считать (помимо имеющихся косвенных данных), что источником энергии для движения является реакция гидролиза АТФ. Камия (1962) предполагает, что на по верхности хлоропластов имеются удлиненные молекулы сократительных белков, расположенные параллельно направлению движения. Благодаря происходящему в определенной последовательности перемещению связей этих молекул с прилегающими участками протоплазмы в сочетании с зависимым от АТФ сокращением и расслаблением моле кул, они могут ползти по этим участкам, осуществляя независимое от протоплазмы движение хлоропластов. [c.81]

Богачева (1969) обнаружила, что в клетках палисадной паренхимы, листьев фасоли и подсолнечника днем хлоропласты концентрируются на боковых стенках, а ночью — на дне клеток и, в меньшей степени, на передней стенке (таблица 6). Наиболее интенсивное движение хлоропластов ко дну наблюдаетоя в первые темные часы суток, а к боковым стейкам — в первые светлые. [c.80]

Повышение скорости движения хлоропластов при освещении было обнаружено еще Зенном (1908) и изучалось затем в ряде лабораторий. Особенно интересные результаты получены Зужицким с сотрудниками (1950— [c.80]

Порядок работы. На предметное стекло в каплю воды помещают лист элодеи, взятый вблизи верхушечной почки с растения, находящегося на рассеянном свету. Накрывают лист покровным стеклом и рассматривают под микроскопом сначала при малом, а затем при среднем увеличении. Окуляр долл ен быть снабжен окуляром-микрометром. Наблюдают движение хлоропластов в летках, расположенных рядом со средней л<илкой. [c.14]

Скорость движения хлоропластов через 6 мин. после их помещения в раствор сахарозы, мк1сек. [c.81]

Определение скорости движения хлоропластов [c.15]

К внешним факторам, оказывающим влияние на движение, относятся прежде всего свет, химические вещества, сила тяжести и ранение. Механика движений ядер, по-видимому, подобна таковой движений хлоропластов. Предполагают, что к поверхности ядра тоже прикреплены сократительные фибриллы. Движения бесцветных ядер обнаружить под микроскопом труднее, чем перемещения зеленых хлоропластов. [c.39]

В раствор был добавлен яд, отравляющий протонную АТФ-синтетазу, чтобы блокировать взаимопревращение энергии между протонным потенциалом и АТФ. В таких условиях вращения не обнаруживалось. Включение белой подсветки- заводило вращение. Движение хлоропласта исчезало вновь спустя примерно минуту после выключения подсветки. [c.162]

Многочисленные примеры фототаксиса были обнаружены у водорослей, динофлагеллят, грибов и бактерий описано также зависимое от света движение хлоропластов в клетках водорослей. Предполагают, что у разных организмов в фотореакциях принимают участие сразу несколько пигментов или групп пигментов, действие которых обусловлено их спектрами действия. В число таких пигментов входят хлорофилл, бактериохлорофилл, каротиноиды, билипротеины, фитохром и рибофлавин. К сожалению, более подробная их идентификация пока не проводилась. [c.374]

Движение хлоропластов, как и движение цитоплазмы, связано с реакциями, освобождающими энергию. Как можно заключить исходя из результатов опытов сЬетпа иMougeotia, АТФ в первую очередь образуется при процессах дыхания, соответственно окислительного фосфорилирования. Происходящее во время фотосинтеза фотофосфори-лирование также может быть причастно к освобождению энергии. [c.38]

В связи с этим остановимся кратко на электрохимических свойствах протоплазмы. Интересен, прежде всего, вопрос об электрическом заряде последней. Согласно Л. В. Гейльбрунну, ускоренное движение хлоропластов, наблюдающееся при пропускании электрического тока через листочки элодеи, направлено как к аноду, так и к катоду. Однако такая картина имела место лишь в опытах при, сильном освещении, т. е. в условиях, когда в клетках элодеи шел фотосинтез. При исключении же фотосинтеза хлоропласты направлялись к катоду. Гейльбрунн считает, что знак протоплазменных частиц зависит, при прочих равных условиях, от содержания в клетке СОг. У убитой клетки, где отсутствует дыхание и, следовательно, не происходит выделение СОг, снижающей pH, отрицательный заряд возрастает. Это же имеет место и при освещении зеленых клеток, когда выделяющаяся при дыхании СОг потребляется на фотосинтез. [c.87]

Условия окружающей среды часто оказывают гораздо более выраженное воздействие на развитие растений, чем на развитие животных. У растений в ходе эволюции сформировались специальные механизмы для восприятия силы тяжести, температуры, интенсивности и продолжительности освещения. Ответы на эти сигналы часто оказываются весьма сложными и могут быть либо быстрыми и кратковременными (как при движении хлоропластов, индуцированном светом, см. разд. 20.4.10), либо медленными и продолжительными (как в случае длинного светового дня, который необходим для индукции цветения некоторых растений или длительного периода охлаждения, необходимого для нрорастания многих семян). [c.435]

Как уже говорилось в гл. 9, синий свет, поглощаемый, повидимому, флавопротеидом, может вызывать фототропический изгиб цилиндрических органов растения путем индукции латерального переноса ауксина, который приводит к неравномерному росту органа с двух сторон. Синий свет влияет также на множество других процессов и параметров, таких как открывание устьиц и сложенных листьев, движение цитоплазмы в клетках колеоптиля овса, вязкость цитоплазмы в клетках листьев водяного растения ЕШеа, движение хлоропластов у ряски (Ьетпа) и плоскость деления клеток в молодых спорофитах папоротника (рис. 11.20). Во всех этих реакциях соблюдается закон реципрокности, т. е. эффект зависит от общей энергии и произведение интенсивности света на время (14=К) является величиной постоянной. Таким образом, облучение при относительной интенсивности света 100, 10 и 1 даст одинаковый эффект при длительности соответственно 0,01, 0,1 и 1 с. Так как спектры действия для всех этих процессов удивительно сходны, мы можем заключить, что один и тот же пигмент образует один и тот же фотопродукт, способный регулировать различные физиологические процессы. Природа зтого фотопродукта еще не известна, хотя в различных растениях после фотоактивациифла-вина синим светом было обнаружено химическое восстановление определенного цитохрома. В этом процессе могли бы участвовать и промежуточные формы фитохрома. [c.355]

Для того чтобы начали осуществляться изменения положений органов, обусловленные фототропизмом, необходимо, как и при ориентировочных движениях хлоропластов и при проявлении фототаксиса, восприятие раздражения светом. При этом воспринимается не направленность световых лучей, а различие в освещенности обращенной к источнику света и затененной сторон. Это обнаруживается как при освещении лишь половины одной из сторон органа, так и при одностороннем освещении пустых колеоптилей изнутри. Колеоптиль изгибается вовсе не навстречу свету, а в направлении, определяемом различием в освещенности (рис. 19). Часто различие в освещенности возникает в результате поглощения света и его рассеивания внутри освещенного органа. У прозрачных объектов различие в освещенности может быть вызвано наличием затеняющих пигментов или изменением хода лучей (как в линзе). Затеняющие пигменты мы находим, в частности, у спорангиеносцев Pilobolus. А спорангиеносцы Phy omy es действуют как линзы. При нормальных условиях такая клетка. [c.78]

Как уже упоминалось при рассмотрении движений хлоропластов, находящийся в эктоплазме фитохром расположен очень упорядоченно , молекулы неактивного фитохрома 660 лежат параллельно поверхности объекта, а молекулы активного фитохрома 730 — перпендикулярно ей. О локализации и расположении в клетке каротиноидов и флавинов известно значительно меньще. Для Pilobolus, например, характерно наличие содержащего каротиноиды утолщения в основании несущего спорангий пузыревидного расщирения спорангиеносца (рис. 22). Как показывает этот рисунок, лучи света, попадающие на черный спорангий, дальше не проходят. Если направление светового потока меняется, то спорангиеносец изгибается до тех пор, пока содержащее каротиноиды утолщение снова не станет рав- [c.81]

Схема механизма, обеспечивающего движение хлоропластов в клетках харовых водорослей (по Williamson, 1975). [c.392]

Такие крупные органоиды растительной клетки, как хлоропласты, не только пассивно переносятся с током цитоплазмы, но обладают и автономными движениями. Эту способность можно наблюдать в каплях цитоплазмы, изолированной из клеток нителлы. В каплях нет тока цитоплазмы (из-за отсутствия эктоплазмы), но сохраняется быстрое вращательное движение хлоропластов (1 об/с). Хлоропласты связаны с пучками цитоплазматических микрофиламентов через миозин, головки молекул которого взаимодействуют с филаментами актина. Движение хлоропласта с использованием АТР возникает при взаимодействии актина и миозина благодаря изменению угла наклона молекул миозина по отношению к актину (рис. 13.1), [c.392]

Подобный механизм, видимо, лежит в основе вращательного движения хлоропластов харовых водорослей. Вращение хлоропластов быле открыто в 1838 г. французом Донне, который изучал капли протоплазмы, выдавленной из клетки водоросли hara. Это явление впоследствии было забыто и переоткрыто несколько раз. Недавно Е. X. Моценок в группе автора повторила эксперимент Донне, чтобы выяснить источник энергии для вращения хлоропластов. В опытах использовали нителлу из оз. Байкал. Оказалось, что хлоропласты могут часами вращаться в капле протоплазмы. Скорость вращения колебалась в пределах один оборот за 2—3 с. Иногда направление вращения менялось на противоположное. Период времени, в течение которого направление вращения оставалось неизменным, в отдельных случаях достигал 1 ч. Вращение хлоропластов удалось наблюдать также и в интактных клетках водоросли. В некоторых случаях один или несколько хлоропластов отрывались от неподвижного мультислоя хлоропластов, расположенного под цитоплазматической мембраной водоросли. Уносимые током цитозоля, они медленно вращались с той же скоростью, что и в выделенных каплях протоплазмы. [c.176]

Прорастание спор Движение хлоропласта Рост и дпффереицпровка протонемы [c.306]

Важпьв[ свойством хлоропластов является их способность к движению. Хлоропласты передвигаются не только вместе с цитоплазмой, но способны и самопроизвольно изменять свое положение в клетке. Скорость движения хлоропластов составляет около 0,12 мкм/с. [c.104]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология