Черенки корневые

Эффективное влияние фитогормонов на рост и развитие растений явилось предпосылкой для интенсивного их использования в растениеводстве и сельском хозяйстве. Наиболее активно используются синтетические ауксины, гиббереллины и этилен. Ауксины способны стимулировать образование корневой системы у черенков. Это их свойство широко используется в практических целях. Обычно применяют не ИУК, а ее производные, например нафтилуксусную кислоту (ИУК). Это вещество используют при пересадках плодовых деревьев, для восстановления поврежденной корневой системы. НУК находит применение также для удаления избыточных завязей у яблонь и других плодовых деревьев. Химически модифицированные ауксины широко используются для уничтожения сорняков, сопутствующих росту зерновых культур. [c.142]

Природные фенольные ингибиторы были способны инактивировать ИУК, поступившую в черенки, превраш,ая ее в физиологически неактивный продукт. Этот процесс инактивации наряду с другими аналогичными процессами приводил к тому, что свободная ИУК исчезала из черенка через сутки после начала укоренения. На вторые сутки черенок переставал активно реагировать на вводимую извне ИУК. В это же время отмечается начало активных клеточных делений, приводящих в конечном итоге к формированию корневых зачатков (третьи-четвертые сутки). [c.134]

Проверка этого заключения была осуществлена на двух моделях на растущих корнях люцерны и на черенках фасоли, у которых ростовые процессы протекали с неодинаковой скоростью. Так, на примере роста главного корня люцерны было показано, что ему присущ своеобразный ритм (рис. 44). В частности, максимумы приростов наблюдаются на 4, 8 и 12-й день роста корня. Эти пики соответствуют активации процессов клеточного деления (Смирнов, 1970). У черенков фасоли активация клеточного деления наблюдается на 2—3-й день, что соответствует началу формирования корневых зачатков (Кефели и др., 1970). Если учесть, что эти критические периоды в росте указанных объектов сопровождаются активацией клеточного деления, то необходимость выяснения чувствительности изолированных корней и черенков к ингибиторам в периоды активного роста этих объектов окажется очевидной. [c.180]

Таким образом, анализ чувствительности разнообразных объектов к ингибиторам показал, что если в растущем органе происходит активное клеточное деление, то он реагирует наиболее интенсивно на обработку метаболическими ингибиторами (корни люцерны, корневые зачатки на черенках фасоли). При усилении процессов клеточного деления чувствительность объекта к метаболическому ингибитору возрастает. Если же рост осуществляется преимущественно за счет растяжения клеток (отрезки колеоптилей, отрезки стеблей), то в этом случае чувствительность к метаболическим ингибиторам резко падает. [c.181]

Препарат ядовит для пчел и полезных насекомых. Во избежание повреждений посадочного материала пол фумигационной камеры, а также черенки и саженцы перед началом обработки обильно опрыскивают водой. Одновременно увлажняют и земляной ком у саженцев или рассады, чтобы не повредить корневую систему. [c.20]

В первом опыте в качестве переносчика фосфата изучался красный клевер. С этой целью по методике, разработанной П. И. Лисицыным (1947), из черенков клевера выращивались растения с прекрасно развитой корневой системой. Эти растения размещались на стенке внутреннего сосуда, так что половина их корней находилась во внутреннем сосуде, а другая половина — во внешнем. Кроме этих растений, которые должны были переносить меченый фосфат из внутреннего сосуда в наружный, производилась посадка клевера в наружный сосуд, а также посев в наружный сосуд овса и тимофеевки. Эти растения должны были использовать тот меченый фосфат, который будет перенесен в наружный сосуд клевером, посаженным на стенках внутренних сосудов. Таким образом, клевер, корни которого находились и во внутреннем и во внешнем сосудах, являлся переносчиком-транспортером меченого фосфора, а растения, посаженные только в наружный сосуд, — клевер, овес и тимофеевка — акцепторами меченого фосфата, выделяющегося из корней растения-транспортера. [c.16]

Пикировка будет первой операцией по переносу сеянца, укоренившегося черенка или вновь приобретенного растения в горшок. По мере роста растение пересаживают в горшок большего размера. Перевал (повторная пересадка) заключается в переносе растения в новый горшок того же размера с целью обновления почвенной смеси вокруг корневой системы. [c.106]

В теплице в основном используют два способа размножения растений — выращивание из семени и укоренение стеблевых черенков. Менее распространено размножение воздушными отводками, отпрысками, луковичками, корневыми и листовыми черенками. [c.110]

Размножение черенками — самый распространенный способ вегетативного размножения. Черенки представляют собой отрезанную часть побега, листа или корня, которые при благоприятных условиях способны образовать целое растение. При этом вновь выращенное растение подобно материнскому и зачастую цветет и плодоносит раньше растений, выращенных из семян. Чтобы у отделенной от материнского растения части образование корневой системы, стебля и дальнейшее формирование нового растения происходили быстро и безболезненно, необходимо поддерживать оптимальные условия окружающей среды. [c.114]

Для образования корней и начала роста стеблевым черенкам требуется от 10 дней до нескольких недель в зависимости от вида, сорта и возраста материнского растения. Чем моложе родительское растение, тем быстрее черенок образует корневую систему. Это один из основных принципов, которыми руководствуются при подборе материала для черенкования. В период укоренения следует поддерживать оптимальные условия микроклимата. Чтобы снизить потерю воды, все черенки хранят в закрытых емкостях или камерах для размножения. [c.114]

Многолетние травянистые растения в теплицах обычно размножают путем деления куста. Этот метод в основном применим к взрослым растениям, достигшим значительных размеров и имеющим мочковатую корневую систему, одревесневшие стебли в центральной части кроны и новые побеги по краям. Георгины и клубневые бегонии лучше размножать черенками или семенами. [c.126]

Корневой черенок — отрезок корня, используемый для размножения растений. Корнеотпрысковое растение — молодой побег, возникший на корнях взрослого растения и формирующий позднее собственную корневую систему. [c.191]

Корнесобственную розу розовую и красную можно размножать корневыми черенками. Их заготавливают поздно осенью на ликвидируемых плантациях. Корни толщиной более 1 см разрезают на черенки длиной 12—15 см. В питомник их высаживают так же, как и стеблевые черенки. [c.166]

Побеги, изолированные от взрослого материнского растения (черенки), способны вновь образовывать корни и превращаться в самостоятельное растение, причем интенсивность корнеобразования у таких черенков зависит от ряда внешних и внутренних факторов, и в частности от баланса природных регуляторов роста (Турецкая, 1961 Турецкая, Кефели, Коф, 1966 Kefeli, 1968). Ризогенез стеблевых черенков представляет собой удобную модель для изучения индукционных процессов — образования новых тканей и целых органов. Формирование корневых зачатков из тканей стебля можно рассматривать как смену программ развития, которые определяются индукторными веществами, вызывающими появление заранее запрограммированных последовательных процессов (Боннер, 1968). Клетки тканей стебля под действием эндогенных фитогормонов как бы перестраивают направление своего метаболизма, и в них начинается биосинтез новых продуктов, ведущих к заложению корневых зачатков. Дифференциаш я новых органов не ограничивается действием одних фитогормонов. Она тесно связана и с процессом синтеза белков, специфических для разных этапов онтогенеза (Бутенко, 1964 Бутенко, Володарский, 1967). [c.127]

Весь процесс корнеобразования можно было условно разбить на три этапа первый этап — период от постановки опыта до начала первых клеточных делений в стебле черенка (О—2-й день) второй этап— от первых клеточных делений до формирования визуально обнаруживаемого корневого зачатка (3—4-й день). Третий этап — от корневого зачатка до образования корешка (5—6-й день). Эти основные этапы ризогенеза у черенков фасоли наиболее ярко прослеживаются после их предварительной обработки раствором ИУК (рис. 28, б). [c.128]

Микроскопический контроль за этапами ризогенеза показал, что клеточные деления у основания стебля черенка обнаруживаются в зоне перицикла через два дня после начала укоренения. Затем этот процесс интенсивного деления распространяется и в камбиальную зону. ИУК резко активирует процесс заложения корневых зачатков. [c.128]

Поведение ауксина как фитогормона-индуктора в этом случае представляется особенно важным. В свое время нами, а позднее и другими авторами было показано, что формирование корневых зачатков у черенка фасоли сопровождается снижением количества природных ингибиторов роста в стебле и появлением ауксинов (Турецкая, Кефели, Коф, 1966 Mi hniewiez, Kriesel, 1970). Введение в черенок дополнительных порций ауксина (ИУК) резко активирует начавшийся процесс корнеобразования. При этом возникают следующие вопросы что происходит с самой ИУК, введенной в черенок связаны ли изменения, происходящие с введенной в черенок ИУК, с ростовыми процессами, в нем протекающими всегда ли одинаково реагирует укореняющийся черенок на вводимую в него ИУК [c.128]

Следовательно, окисление ИУК в ткани, так же как и разрушение ИУК in vivo, непосредственно с активацией ризогенеза не связано. По данным Фелленберга (Fellenberg, 1970, 1971), ИУК при поступлении в черенок связывается ядер ными белками (гистонами). Если соединить ИУК с гистонами до введения в черенок и затем ввести этот комплекс через место среза, то отмечается стимуляция корнеобразования. Таким образом, устанавливается следующая очередность процессов введение ИУК в черенок, разрушение ИУК (первые сутки), начало клеточного деления (вторые сутки), формирование корневого зачатка (четвертые сутки), рост корешка (пятые сутки). [c.130]

Ризогенез — образование корней на черенках — представляет собой процесс формирования нового органа из клеток материнского растения (Турецкая, 1961). Ризогенез — в сущности удобная модель для изучения морфогенетических процессов образования новых тканей и целых органов. Формирование корневых зачатков из тканей стебля можно рассматривать как смену программ развития, которые определяются индукторными веществами, вызывающими появление заранее запрограммированных последовательных превращений (Боннер, 1968). Клетки тканей стебля под действием эндогенных фитогормонов как бы перестраивают направление своего метаболизма, и в них открываются биосинтезы новых продуктов, ведущих к заложению корневых зачатков. Дифференциация новых органов не ограничивается действием одних фитогормонов, она тесно связана и с процессом синтеза белков, специфических для разных этапов онтогенеза (Бутенко, 1964 Бутенко, Володарский, [c.177]

Процесс формирования меристематических очагов наиболее активно протекает у укореняющихся черенков. Однако чувствительность этого объекта к метаболическим ингибиторам осложнена тремя следующими обстоятельствами 1) наличием листьев, способных опосредованно влиять на чувствительность формирующихся корней к метаболическим ингибиторам 2) существованием транспирационного тока, способного быстро распространять ингибитор по всему черенку 3) процессомдифференцировки клеток стебля, осложняющим картину формирования корневого зачатка. Несмотря на эти сложности и на то обстоятельство, что характер обработки черенков ингибиторами отличался от характера обработки других объектов, укореняющиеся черенки реагировали на примененные ингибиторы примерно так же, как и корни люцерны, т. е. они обладали повыщенной чувствительностью ко всем метаболическим ингибиторам, кроме 2,4-ДНФ. Таким образом, анализ данных позволяет прийти к заключению, что чувствительность растущих объектов к метаболическим ингибиторам увеличивается в том случае, если в этих объектах протекают процессы клеточного деления. [c.180]

Оказалось, что если хлорам( )еникол и 8-азагуанин вводить в черенки и в культуру изолированных корней не с начала постановки опыта, а на 2, 3, 4, 5-й день, и т. д., то процессы образования корней у черенков фасоли будут сильнее всего подавлены в том случае, если ингибитор вводить в период формирования корневых зачатков (на 3—4-й день), у изолированных корней это ингибирование будет оптимальным на 3—4-й день, т. е. в период первого максимального прироста главного корня (рис. 45). Эти данные еще раз подтверждают связь между активацией клеточного деления и повышением чувствительности растущей системы к метаболическим ингиби торам. [c.181]

Химизм гормональной регуляции остается пока совершенно неизученным. Однако факт существования такой системы мы наблюдали в процессе ризогенеза у черенков фасоли. ИУК, активирующая процесс образования корней, исчезала из тканей черенка через сутки. Фенольные соединения стимулировали этот процесс. Еще через сутки падала чувствительность к вводимым извне ингибиторам синтеза нуклеиновых кислот и белка. Начинался активный процесс клеточного деления, завершавшийся формированием корневого зачатка. После образования корневого зачатка чувствительность черенка к метаболическим ингибиторам резко падала. Цепь описанных процессов демонстрирует роль ИУК в индукции ризогенеза, ее пусковую функцию на начальных этапах процесса. [c.213]

Использовали саженцы парадизки краснолвстной, полученные от прививки стеблевых черенков на отрезки корней сеянцев Антоновки в зимний период. Черенки с этиолированным осншанием очень быстро укоренились. Первые корни появились уже через несколько дней после посадки. К осени (в начале сентября) эти черенки превращались в молодые растения с мощной корневой системой — число корней первого порядка на одном черенке достигало 100 штук, прирост побегов составлял 20—25 см. Этиолированные черенки укоренились на 80%, тогда как зеленые черенки, тоже взятые с нижних частей саженцев, почти не укоренились [c.262]

Против корневой гнили гвоздики, азалии и Х ризантем (Rhizo tonia sp., Pythium sp.) черенки или рассаду этих растений перед посадкой замачивают в 0,5%-ной суспен- [c.74]

Выпускается в виде 70%-ного вр. к. и 50%-ного пор. Рекомендован для борьбы с болезнями, вызьтаемыхш фикомицетами. Обладает системным защитным действием, проникает в растение через корневую систему и перемещается в акропетальном направлении. Частично сорбируется листьями. В основном предназначен для борьбы с болезнями декоративных растений, эффективен в борьбе с болезнями картофеля, огурцов, земляники, салата, а также против черной ножки свеклы, хлопчатника, кукурузы, риса, капусты, табака и арахиса путем обработки семян. На декоративных растениях препарат используют в концентрации 0,15% путем погружения в него корней рассады или черенков перед посадкой, а также сразу после нее путем полива. Затем обработки повторяют через 3 — 6 недель. Используют его и для обеззараживания почвы под декоративные культуры, на 1 м3 расходуют 200 смЗ препарата в 10 л воды. [c.145]

Во избежание повреждения посадочного материала пол камеры перед фумигацией поливают водой, а черенки и саженцы обильнс опрыскивают водой. Земляной ком у саженцев или рассады такж увлажняют, чтобы не повредить корневую систему. [c.220]

Корневые гнили. Грибные болезни, поражающие корни, основания стеблей, реже нижние листья, обычно на тяжелых сырых почвах. Ткани в местах поражения разрушаются. Наиболее сильно болеют растения, ослабленные в результате глубокой посадки и имеющие механические повреждения. Часто заболевают укореняющиеся черенки. Из корневых гнилей встречаются ризокто- [c.282]

Для внесения в почву даконил используется на капусте против черной ножки при норме расхода 50 кг/га путем внесения в почву парников и рассадников за 3 дня до посева семян или пикировки всходов в той же норме, но против корневых гнилей применяется на астре путем внесения в 1ючву в день посева семян и гербере путем полива укоренившихся черенков 0,2% суспензией (20 мл под одно растение дважды с интервалом в 15—30 дней) за 30 дней до среза растений. [c.72]

Одна из наиболее старых областей применения ре -у-ляторов роста растений — индукция и (или) ускорение с их помощью укоренения черенков [9]. Индолилмасля-ная кислота (ИМК), по-видимому, наилучшее и наиболее широко используемое для этой цели соединение, которое сравнительно медленно разлагается в растении ферментными системами, разрушающими ауксины. Так как это соединение еще и очень медленно передвигается по растению, большая часть его локализуется вблизи места нанесения. Другой высокоактивный ауксин, часто используемый для стимуляции корнеобразования,— нафтилуксусная кислота (НУК). Это соединение более токсично, чем ИМК, поэтому опасность повреждения растений при обработке НУК выше, чем при использовании ИМК. Амиды обоих соединений также эффективны в качестве веществ, стимулирующих корнеобразование, причем амид НУК менее токсичен, чем сама кислота. Многие феноксисоединения, включая 2,4-дихлорфе-ноксиуксусную (2,4-Д) и 2,4,5-трихлорфеноксиуксусную кислоты (2,4,5-Т), в низких концентрациях стимулируют образование корней. Поскольку токсичные и оптимальные для корнеобразования концентрации этих веществ очень близки, диапазон их эффективных дозировок довольно узок. Тип образуемых корневых систем различен и зависит от применяемого регулятора роста. Фенокси-кислоты обычно способствуют формированию сильно разветвленной, утолщенной корневой системы, характеризующейся низкой скоростью роста, в то время как ИМК вызывает образование мощной мочковатой корневой системы. .. [c.16]

Благодаря химии появилась возможность управлять ростом растений. Применяя специальные химические вещества, можно задерживать прорастание картофеля во время его хранения, усиливать рост корней при размножении ягодников и винограда, уменьшать предуборочное опадение плодов у фруктовых деревьев, ускорять созревание плодов, томатов и приживание черенков, прореживать цветки яблонь при слишком обильном цветении, удлинять срок цветения роз и других цветов. Стимуляторы роста применяют для получения бессемянных плодов помидоров, яблок, груш и некоторых других культур, а также при пересадке деревьев для более быстрого их укоренения и образования мощной корневой системы. В хлопководстве для удаления листьев хлопчатника перед уборкой применяют химические вещества — дефолианты. [c.11]

Хвойные теневыносливы, но лучше растут при умеренном ос-веш,ении. Земельная смесь для посадки составляется из глинистодерновой земли, листовой, и песка (3 1 1). Можно добавить одну часть перегнойной земли. Важно соблюдать умеренный режим полива, не допуская избыточного увлажнения и пересушки почвы. Размножают хвойные семенами и черенками в июле, августе, используя активно растущие побеги из верхней части кроны растения. Место среза черенка на полсантиметра ниже границы, отделяющей зеленую, растущую зону побега, от коричневой, начинающей одревесневать. Срез обрабатывается порошком со стимулятором. Укореняются хвойные долго. В течение зимы их можно держать в разведочном парнике при умеренной температуре. Если весной обеспечить черенкам почвенный подогрев, они быстро развивают хорошую корневую систему. [c.72]

Burret — вечнозеленый кустарник или дерево до 6 м высотой из семейства миртовых (Myrta eae). Растет в Уругвае, Парагвае, Бразилии. В советских субтропиках культивируется как плодовое растение. Листья супротивные, кожистые, светло-зеленые и глянцевитые с верхней стороны, опушенные, серебрнстч)-серого цвета — с нижней. Цветки одиночные или в щитковидных соцветиях, правильные, белые, тычинки многочисленные с красными нитями, очень эффектны. Цветет в июне и в начале июля. Плод — ягода, напоминающая по форме сливу, от 4 до 7 см длиной, съедобна. Легко поддается стрижке и формовке. Земельная смесь дерновая, перегнойная, торфяная, песок (1 1 2 1). Светолюбиво, выдерживает низкие температуры. Размножают семенами, черенками, отводками, корневыми отпрысками, прививкой. Свежие семена всходят через 25—30 дней. Черенки укореняются через 20—25 дней. На черенки берут верхние и средние части полуодревесневших побегов. Для получения плодов в оранжерейной и комнатной культуре необходимо искусственное опыление. [c.89]

Интересно также отметить, что 3,6-эндоксогексагидрофталевая кислота и ее производные, образующиеся при полном гидрировании аддуктов фуранов, обладают интересными фитогормональными свойствами. В низких концентрациях препараты, полученные на основе 3,6-эндоксогексагидрофта-левой кислоты и ее производных, стимулируют рост и развитие корневой системы некоторых растений (например, черенков герани) [61—65] в средних концентрациях — вызывают дефолиацию хлопчатника, сои и других растений в высоких концентрациях — действуют как гербициды и могут использоваться для борьбы с широколистными сорняками. В связи с этим вещества группы 3,6-эндоксогексагидрофталевой кислоты привлекли серьезное внимание. [c.542]

Значительное стимулирование корнеобразования дает предварительная обработка маточных растений ретардантами. Этот эффект показан на многих культурах землянике, картофеле, яблоне, вишне, смородине, крыжовнике и др. Во всех случаях обработка маточных растений перед срезкой черенков или выделением меристем приводила к лучшему формированию корневой системы растения. Объяснение этого факта может быть связано с рядом причин, наиболее вероятной из которых является антагонизм между ауксином и гиббереллином в их влиянии на процесс корнеобразования. Ретарданты, являющиеся антигиббереллинами, изменяют соотношение гормонов в пользу ауксинов, стимулируя тем самым процесс ризогенеза. [c.349]

Использование камеры с туманообразующим устройством при размножении разнообразных по особенностям своего развития растений обеспечит большую приживаемость корневой системы, доставит садоводу огромный интерес и удовлетворение результатами своей работы. Для реализации данного технологического приема требуется подводка к теплще электроэнергии и центрального водоснабжения. В камере поверхность листьев растений поддержтается во влажном состоянии за счет мельчайшего, туманоподобного распыления воды. Тем самым отпадает необходимость в уменьшающих световой поток покрытиях из пленки или стекла. В свою очередь солнечный свет и тепло попадают на черенки только через остекленную крышу теплицы. В результате процессы фотосинтеза и укоренение черенков в камере с туманообразу- [c.62]

Гнили стеблей и корневой шейки Черная ножка (возбудитель — различные патогенные организмы) поражает укореняемые черенки, а иногда и взрослые растения пеларгонии. Основание стебля размягчается, чернеет и загнивает, растение полегает и гибнет. Для профилактики необходимо использовать стерильные почвенные смеси и горшки, соблюдать санитарные меры по уходу, включая применение чистой воды. Пораженные черенки уничтожают. От особо ценных больных экземпляров черенки можно брать только с верхушек. Церкоспореллез, пелликуляриоз и корневую гниль вызывает черная корневая гниль и другие грибы. Гниющая ткань основания стебля, корневой шейки и корней становится бурой или черной. Верхушечный рост при этом прекращается, растение увядает. Для профилактики используют стерилизованные почвенные смеси и горшки, чистую воду для полива. Растения аккуратно пересаживают в горшки, тщательно расправляя корневую систему. Для борьбы с гнилью растения поливают раствором каптана или цинеба, рассыпают у основания сухой бордоский порошок (или известь. — Ред.). Если растение [c.74]

Рассаду или черенки, выращиваемые на подносах или в горшках, предварительно поливают. Затем их осторожно освобождают из сосуда, постукивая по его сторонам. Сеянцы аккуратно вьшимают, поддерживая за семядольные листочки, а не за стебель. Корневой ком желательно сохранить по возможности большего размера. Пикировку проводят с помощью сажального кольпнка. Сеянец помещают в центр горшочка и подсыпают почвенную смесь вокруг стебля. Нельзя заглублять растение основание [c.106]

Во всех случаях для развития корневой системы необходимы условия достаточной влажности и аэрации. Для окоренения черенков пригодны почвенная смесь Джон Иннес для семян, торфяные смеси для семян и черенков, смесь, состоящая из равных количеств песка и мохового торфа (см. с. 84). Черенки трудно окореняющихся растений высаживают в грубый, хорошо отмытый песок. В песке, как и в торфе, практически отсутствуют питательные вещества. Поэтому на протяжении всего периода окоренения до пересадки в горшки необходимо при каждом поливе подкармливать черенки жидкими удобрениями. В горшки пересаживают уже хорошо окоренившиеся черенки. [c.114]

Введение цианобактерий в растения. Искусственные азотфиксирующие ассоциации. Введение цианобактерий в побеги табака. Все попытки вводить цианобактерии непосредственно в побеги размножаемых черенками растений табака были неудачны. 1. При высаживании черенков в жидкую или агаризованную среду МС с азотфиксирующей А. variabilis цианобактерии не проникали в растение ни через поверхности среза, ни через вновь формирующуюся корневую систему. 2. Они не приживались на поверхности побегов и не проникали в ткани в местах поранения. [c.76]

В синтезе аЛкалондов важную роль играет корневая система, Методом прививок доказано, что синтез никотина происходит в корнях. Исследованиями А, А, Шмука и Г, С, Ильина установлено, что черенки растеннй, содержащих алкалоиды (табак, белладонна, дурман), привитые на корни растеиий, не содержащих алкалоидов (томат, паслен), неспособны синтезировать собственные алкалоиды. При обратных прививках в листьях томата и паслена накапливалось значительное количество алкалоидов, свойственных подвою. [c.388]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология