Справочник химика 21

Химия и химическая технология

Статьи Рисунки Таблицы О сайте English

Хромосомные белки

    Хромосомные белки Часть структуры хромосом Гистоны [c.259]

    Банк PIR содержит 7 негистоновых хромосомных белков. [c.258]

    Мутагенное действие различного рода излучений и химических веществ на организмы связано в первую очередь с изменением ДНК. Так, было установлено, что спектр мутагенного действия ультрафиолетовых лучей соответствует спектру их поглощения ДНК и не соответствует спектру поглощения хромосомных белков. Белки поглощают ультрафиолетовые лучи в диапазоне 180 нм, а ДНК — 260 нм (в том диапазоне, в котором эти излучения вызывают больше всего наследственных изменений). При действии лучей Рентгена на чистые препараты ДНК ее молекулы разрушались. Горчичный газ (иприт) и некоторые другие химические мутагены оказывают на ДНК значительно большее химическое действие, че м на белок и другие вещества клетки. [c.130]


    В хромосоме нормальной клетки существует значительно больше ДНК, чем когда-либо используется для транскрипции. Это, вероятно, обусловлено двумя уровнями контроля. Надо полагать, что хромосомные белки разрешают транскрипцию некоторого количества ДНК, но не всего запаса. Эта ситуация будет, вероятно, неизменной для всех клеток данного вида. С другой стороны, в клетках, выполняющих разные функции внутри вида, а также внутри той же самой клетки, но на разных стадиях ее жизненного цикла или в соответствии с изменениями в окружающей ее среде, используются различные гены. Этот процесс рассматривается как генная регуляция и, возможно, он осуществляется в результате контроля за доступом РНК-полимеразы к хромосомной ДНК. [c.203]

    Радиоавтографические опыты, в принципе аналогичные изображенному на фиг. 243, были впоследствии проведены с быстро делящимися клетками китайского хомячка в этих опытах было исследовано включение метки не только в ДНК, но и в хромосомные белки в ходе последова- гельных клеточных делений. Оказалось, что включение метки в ДНК происходит согласно полуконсервативной схеме, ранее доказанной Тэйлором для корней фасоли вместе с тем включение метки в хромосомные белки происходило совершенно иначе. В первой метафазе после обработки Н-ами-нокислотами белок обеих сестринских хромосом содержал одинаковые количества метки однако спустя три и более циклов деления в отсутствие меченых аминокислот метка практически полностью исчезала из белка метафазных хромосом. Следовательно, можно заключить, что белки, и в частности гистоны, являются лишь временными компонентами хромосомы, материальная и информационная непрерывность которой обеспечивается исключительно молекулой ДНК- [c.501]

    Репликация ДПК представляет собой процесс, который может протекать с довольно высокой скоростью и который в большинстве клеток регулируется сложной системой, обеспечивающей такой механизм возникновения репликационных вилок, при котором различные части генома реплицируются в совершенно разное время. Возможно, время репликации влияет на структуру хроматина. Например, согласно одной из гипотез, хроматин, реплицирующийся рано, собирается из специального запаса хромосомных белков, синтезированных в течение 01-фазы, кото- [c.141]

    Двойная спираль упакована в компактную структуру, образованную за счет взаимодействий с целым рядом белков (главным образом основного характера), называемых гистонами. Такая компактизация может выполнять регуляторные функции и имеет также определенный практический смысл . Дело в том, что ДНК ядра клетки при полном расплетании достигает длины 1 м. Хромосомные белки упаковывают гигантскую молекулу в ядро объемом всего лишь в несколько кубических микрон. [c.36]


    Негистоновые хромосомные белки [c.295]

    М. гистоны негистоновые хромосомные белки хроматин Н. нуклеосомные Н1 О. сверхчувствительные к нуклеазе сайты П. хроматин диаметром 30 нм [c.383]

    Перед каждым делением клетка должна синтезировать копии всех своих хромосом. Таким образом, делению клетки предшествует ее переход из состояния интерфазы (фазы 01) в фазу синтеза ДНК (8-фаза). В типичной клетке высших эукариот 8-фаза длится 8 часов. После ее окончания каждая хромосома представлена двумя копиями, которые продолжают оставаться соединенными в области центромер до наступления М-фазы. (см. рис. 9-35). Для удвоения хромосомы необходима репликация ее ДНК и последующая сборка на этой молекуле хромосомных белков, образующих хроматин. В гл. 5 мы обсуждали ферменты, участвующие в репликации ДНК, и строение репликационной вилки, обеспечивающей синтез (см. рис. 5-39). Переход клетки в 8-фазу будет рассмотрен в гл. 13 как часть более общей проблемы контроля клеточного цикла. В данном разделе мы изложим принципы механизма репликации эукариотической хромосомы, укажем время, необходимое для этого, и, кроме того, проанализируем взаимосвязь процесса репликации и структуры хромосомы. [c.133]

    До сих пор мы рассматривали ДНК как структуру совершенно изолированную. В действительности она связана с белками, которые могут оказывать значительное влияние на возможность перехода из В-формы в 2-фор-му. Например, ДНК, связанная с гистонами (основные хромосомные белки эукариотического ядра), не переходит из одной формы в другую в тех условиях, когда это наблюдают у свободной ДНК. Таким образом, одним из условий, необходимых для образования 2-ДНК in vivo. [c.31]

    Из Е. oli было выделено несколько ДНК-связываю-щих белков, которые при поверхностном взгляде напоминают хромосомные белки эукариот. Свойства этих белков суммированы в табл. 28.2. [c.348]

    После прохождения репликационной вилки структура хроматина переформируется путем добавления новых гистонов и других хромосомных белков к старым гистонам, унаследованным дочерней молекулой ДНК. Для предотвращения второго цикла репликации, следующего непосредственно за первым (т.е. до того, как хромосома вступит в митоз), в клетке предусмотрена блокировка. Она необходима для того, чтобы в каждой 8-фазе любая область ДНК реплицировалась только один раз. [c.143]

    Сначала клетки обрабатывают колцемидом, чтобы заблокировать образование веретена зто приводит к накоплению метафазных клеток в культуре. Такие клетки имеют более округлую форму и слабее прикреплены к пластику, чем другие клетки популяции, поэтому при встряхивании флакона они легко отделяются от субстрата. Метафазные клетки затем обрабатывают гипотоническим раствором (что приводит к их набуханию), после чего фиксируют в смеси метанол — уксусная кислота. Когда суспензию таких клеток по каплям наносят на предметное стекло, клетки лопаются и хромосомы расправляются на стекле по мере высыхания раствора. Реактивы для этой процедуры приведены в табл. 8.12, а сам метод описан в табл. 8.13. На следующем этапе хромосомы обрабатывают РНКазой, чтобы исключить гибридизацию зонда с хромосомной РНК, и затем уксусным ангидридом, который ацетилирует хромосомные белки и тем самым еще более уменьшает неспецифическое связывание зонда. Хромосомную ДНК денатурируют нагреванием и гибридизуют с зондом, предварительно меченным I- TP. Избыток меченого зонда удаляют серией промывок в низкосолевом буферном растворе и покрывают препарат фотоэмульсией. После необходимой экспозиции выявляют участки образования зерен серебра, соответствующие сайтам амплификации гена. Необходимые реагенты приведены в табл. 8.14, а сама процедура описана в табл. 8.15. [c.266]

    Представление о том, что связывание гормон-рецепторного комплекса со специфическими участками хроматина регулирует транскрипцию определенных генов, получило всеобщее признание, однако прямо идентифицировать эти специфические участки невероятно трудно. Главный источник затруднений-неспецифическое связывание рецепторов с ДНК. Далее, для регуляции 50 генов может быть достаточно связьгаания лишь малой доли тех 10000 гормон-рецепторных комплексов, которые содержатся в клетке. А между тем даже 10000 рецепторов составляют по весу всего только 1/50000 часть общего клеточного белка поэтому в высокоочищенном виде рецепторный белок удалось получить лишь в очень малом количестве. В связи со всем этим трудно было выяснить, чем определяется специфичность действия рецепторов для стероидов-узнаванием определенных последовательностей ДНК, особых хромосомных белков или и тем и другим одновременно. Однако недавно с помощью методов генной инженерии удалось клонировать один ген, регулируемый кортизолом, и таким образом получить в большом количестве соответствующую ДНК. Было показано, что очищенный рецептор кор- [c.258]

    Биохимический состав хромосом. Для изучения химического состава хромосом пользуются различными способами. Наиболее распространенными из них являются окраска специфическими красителями, исследование спектров поглощения в ультрафиолетовых лучах, авторадиография (включение меченых изотопов в состав хромосом), а также биохимические анализы ядер, и выделенных из них компонентов. Согласно биохимическим исследованиям Хромосомы состоят преимущественно из ДНК (около 40%) и гистонов (40%)—белков основного характера с высоким содержанием аргинина и лизина. Второй компонент, часто называемый нуклеогистоном является наиболее постоянной частью химического состава хромосом. Кроме того, в их состав входят РНК и негистоновые (остаточные) белки (20%). Негистоновые хромосомные белки — это главным образом кислые белки. Существует больше ста, вероятно несколько сотен, таких белков. К ним относятся белки ответственные за движение хромосом (актин, миозин, тубулин), ферменты синтеза РНК и ДНК (полимеразы), а также, вероятно, белки, регулирующие активность отдельных генов. Комплексы РНК и негистоновых белков лабильны, тогда как содержание ДНК в хромосомах в пределах вида— относительно постоянная величина. [c.83]


    Способность гетерохроматина вызывать инактивацию близлежащих эухроматиновых генов, нестабильно наследуемую в клеточных поколениях (эффекты положения мозаичного типа), известна давно. Накоплен обширный материал, описывающий хромосомные белки и их комплексы, вовлеченные в инактивацию генов при эффекте положения (Eissenberg, Elgin, [c.22]

    Существует несколько объяснений устойчиво наследуемой картины экспрессии генов. Одно из них основано на том, что с определенным участком хроматина кооперативно связывается множество копий регуляторного белка. Если этот белковый кластер остается соединенным с ДНК во время репликации, то часть его получает в наследство каждая из дочерних молекул ДНЗС. Поскольку связывание данного белка с ДНК носит кооперативный характер, унаследованная часть белкового кластера будет инициировать присоединение дополнительных белковых субьединиц, что в результате обеспечит реконструкцию всего кластера. Таким образом, данный функциональный статус гена наследуется прямо и непосредственно с помощью прочно связанных с ДНК хромосомных белков (рис. 10-35). В принципе подобные непосредственно наследуемые белковые кластеры могут поддерживать индивидуальные гены в постоянно включенном или постоянно выключенном состоянии. [c.207]

Рис. 15-29. Модель, демонстрирующая, каким образом вслед за воздействием прогестерона фактор инициации М-фазы (ФИМ) может индуцировать переход яйца лягушки из профазы 1 в метафазу По предложенной гипотезе, прогестерон косвенно вызывает образование соответствующего фермента, который активирует небольшие количества ФИМ. Это приводит к активации не только больших количеств ФИМ (многократно усиленный отклик), но и протеинкиназ, фосфорилирующих ядерные мембраны и хромосомные белки. В результате целостность ядерной оболочки нарушается, хромосомы конденсируются и, таким образом, клетка вступает в метафазу. Последующая инактивация ФИМ приводит к тому, что воссоздается ядерная оболочка, хромосомы деконденсирукггся и, таким образом, клетка может вступить во второе деление мейоза (на рисунке не показано). Возможно, аналогичный механизм лежит в основе процесса созревания ооцитов маекопитающих. Один из компонентов ФИМ идентифицирован это протеинкиназа. Она гомологична протеинкиназе дрожжей, кодируемой геном с4с2/28 и играющей ключевую роль в регуляции клеточного цикла дрожжевых клеток. Рис. 15-29. Модель, демонстрирующая, каким образом вслед за воздействием прогестерона <a href="/info/100015">фактор инициации</a> М-фазы (ФИМ) может <a href="/info/102270">индуцировать переход</a> <a href="/info/1413491">яйца лягушки</a> из профазы 1 в метафазу По предложенной гипотезе, прогестерон косвенно вызывает образование <a href="/info/1321604">соответствующего фермента</a>, который активирует <a href="/info/748834">небольшие количества</a> ФИМ. Это приводит к активации не только <a href="/info/472531">больших количеств</a> ФИМ (многократно усиленный отклик), но и протеинкиназ, фосфорилирующих <a href="/info/152940">ядерные мембраны</a> и хромосомные белки. В результате целостность <a href="/info/106062">ядерной оболочки</a> нарушается, хромосомы конденсируются и, <a href="/info/461013">таким образом</a>, клетка вступает в метафазу. Последующая инактивация ФИМ приводит к тому, что воссоздается <a href="/info/106062">ядерная оболочка</a>, хромосомы деконденсирукггся и, <a href="/info/461013">таким образом</a>, клетка может вступить во <a href="/info/1355105">второе деление мейоза</a> (на рисунке не показано). Возможно, <a href="/info/169329">аналогичный механизм</a> лежит в <a href="/info/25608">основе процесса</a> созревания ооцитов маекопитающих. Один из компонентов ФИМ идентифицирован это протеинкиназа. Она гомологична протеинкиназе дрожжей, кодируемой геном с4с2/28 и играющей ключевую роль в <a href="/info/1047145">регуляции клеточного цикла</a> дрожжевых клеток.
    Эта работа - памятная веха в истории биохимии. До 1944 г. считалось, что генетическую информацию несут хромосомные белки, а ДНК играет вторичную роль. Такая преобладающая точка зрения была ре-щительно опровергнута открытием строго доказанного факта, что очищенная ДНК обладает генетической специфичностью. В 1943 г. Эйвери (Avery) живым языком описал это исследование и его последствия [c.8]


Смотреть страницы где упоминается термин Хромосомные белки: [c.51]    [c.80]    [c.72]    [c.87]    [c.96]    [c.130]    [c.131]    [c.207]    [c.34]    [c.163]    [c.137]    [c.96]    [c.130]    [c.131]   
Электрофорез в разделении биологических макромолекул (1982) -- [ c.306 ]




ПОИСК







© 2025 chem21.info Реклама на сайте