Оптимальные условия культивирования

Совершенно очевидно, что один из наиболее перспективных методов крупномасштабного преобразования солнечной энергии основан на использовании биосистем. Широкое применение биосистем для получения энергии способно обеспечить свыше 15 % производства энергии для экономически развитых стран. В последние 10—15 лет намечены новые пути биотрансформации солнечной энергии при фотосинтезе. Установлено, что некоторые микробиологические системы характеризуются высокой эффективностью фотосинтеза. Так, фоторазложение воды, осуществляемое суспензией хлореллы с образованием кислорода, в оптимальных условиях культивирования дает 130—140 л газа с 1 м освещаемой поверхности в сутки. Известно, что одна из особенностей процесса фотосинтеза — уменьшение эффективности преобразования солнечной энергии при высоких значениях интенсивности света. Новые технологии позволяют повысить эффективность фотосинтеза при высокой интенсивности света. Разрабатываются системы, эффективно поглощающие световой поток и обогащенные реакционными центрами по отношению к пигменту. Световые кривые фотосинтеза улучшаются также с увеличением скорости лимитирующей стадии электронного транспорта. Например, проведение процесса при повышенных температурах в системах термофильных микроорганизмов увеличивает эффективность преобразования солнечной энергии при высокой интенсивности света. [c.26]

ОПТИМАЛЬНЫЕ УСЛОВИЯ КУЛЬТИВИРОВАНИЯ [c.52]

Максимов В. Н., Федоров В. Д. Применение методов математического планирования эксперимента при отыскании оптимальных условий культивирования микроорганизмов. М., Изд-во Моск. ун-та. 1969. [c.72]

Практическое обеспечение пропорциональности между выходом биомассы и концентрацией субстрата в такой ситуации связано с возможностью восстановления оптимальных условий культивирования. А это уже в основном техническая задача. При изменении же экономического коэффициента встает целый ряд вопросов чисто биологического характера. [c.159]

Различные подходы к проблеме поддержания оптимальных условий культивирования можно проиллюстрировать на материалах, полученных при суспензионном культивировании животных клеток. По ряду соображений, связанны) с механическими свойствами этих объектов, величину к за счет интенсификации процесса перемешивания можно менять в пределах 1—40 ч . Равновесную концентрацию растворенного кислорода можно изменять от О (атмосфера азота) до 9,5-10— моль/л (атмосфера чистого кислорода) для воздуха при 37° С С =2-10- моль/л. [c.285]

Ферментатор с внешними циркуляционными потоками. Данный аппарат (рис. 26) имеет внутреннюю циркуляционную трубу, в нижней части которой расположена пропеллерная мешалка, обеспечивающая циркуляцию культуральной жидкости внутри ферментатора. Трубопроводы с внешней стороны ферментатора, расположенные на разных уровнях по высоте, служат для порционной подачи питательной среды и отвода культуральной жидкости. Для поддержания оптимальных условий культивирования в каждом трубопроводе обеспечены теплообмен, перемешивание среды и введение воздуха. Каждый внешний циркуляционный контур отбирает порцию культуральной жидкости из кольцевого пространства аппарата между циркуляционной трубой и внешними стенками и передает ее во внутреннее пространство циркуляционной трубы. Системы трубопрово- [c.103]

Математическое планирование необходимо начинать с выбора факторов, действующих на изучаемый процесс (Хь Х2, Хз,... и т. д.), их предельных значений (верхний и нижний уровни) и схемы эксперимента (матрицы). После чего отбирают экспланты, используемые в эксперименте. При этом необходимо учитывать неоднородность исходного растительного материала и гетерогенность культивируемых тканей. Поэтому растительный материал необходимо равномерно распределять между разными вариантами эксперимента. Оптимальные условия культивирования должны обеспечить удовлетворительный рост всех эксплантов. [c.122]

Таким образом, оптимальным условием культивирования клеток вне организма и воспроизведения зеркального ЦПЭ было вращение камер в барабане со скоростью 24—25 об/ч. При такой скорости вращения клетки в колбах равномерно смываются средой без гидродинамического воздействия, не подсыхают, на достаточное время соприкасаются с газовой фазой среды культивации, своевременно смываются с поверхности монослоя продукты метаболизма, тормозящие рост и деление клеток. Все эти моменты отражены в известных руководствах по культивированию клеток вне организма. [c.27]

Для получения продукции в максимальных количествах активный штамм-продуцент выращивают на оптимальной питательной среде в оптимальных условиях культивирования (посевная доза, температура, pH, окислительно-восстановительный потенциал, аэрация, массообменные характеристики, питательные и ростовые добавки, сроки культивирования). Выращивание проводят в ферментаторах (культиваторах), вместимость которых может варьировать от 2 л до 100—400 м в зависимости от потребности в продукте. Для получения культур животных клеток объем ферментаторов пока не превышает 3 м В настоящее время биотехнологическая промышленность оснащена ферментаторами, позволяющими вести процесс в автоматическом режиме с программным управлением. Процесс культивирования ведется в асептических условиях, чтобы получить чистые культуры целевых микроорганизмов или культуры клеток. [c.96]

Бласттрансформация 5-лимфоцитов происходит при их стимуляции 5-клеточными митогенами, такими, как туберкулин, лаконос и др. При оптимальных условиях культивирования показатель бластной трансформации может достигать 80 %. Подсчет бластов проводят под микроскопом, с использованием специальных [c.90]

Питательные среды для массового производства сапрофитных бактерий и грибов должны содержать, помимо основных питательных веществ (аминокислот или пептидов, сахара или других углеводов), стимуляторы роста и минеральные соли (включая микроэлементы). При этом следует создавать оптимальные условия культивирования с учетом возможностей производства. В основном массовое размножение саирофитов осуществляется двумя способами поверхностная культура (т. е. на полужидкой среде в чащках Петри) и глубинная культура (в жидкой питательной среде, например в культуральных флаконах или ферментерах). [c.152]

В оптимальных условиях культивирования проявляется цито-патическое действие. [c.124]

II э т а п — собственно микроразмножение. На этом этапе необходимо добиться получения максимального количества мериклонов, учитывая при этом, что с увеличением субкультивирований увеличивается число растений-регенерантов с ненормальной морфологией и возможно образование растений-мутантов. Как и на первом этапе, используют питательную среду по рецепту Мурасига и Скуга, содержащую различные биологически активные вещества, а также регуляторы роста. Основную роль при подборе оптимальных условий культивирования эксплантов играют соотношение и концентрация внесенных в питательную среду цитокининов и ауксинов. Из цитокининов наиболее часто используют БАП в концентрациях от I до 10 мг/л, а из ауксинов — ИУК и НУК в концентрациях до 0,5 мг/л. При долгом культивировании растительных тканей на питательных средах с повышенным содержанием цитокининов (5—10 мг/л) происходит постепенное накопление их в тканях выше необходимого физиологического уровня, что приводит к появлению токсического действия и формированию растений с измененной морфологией. Вместе с тем возможно наблюдать такие нежелательные для клонального микроразмножения эффекты, как подавление пролиферации пазушных меристем, образование витрифицированных (оводненных) побегов и уменьшение способности растений к укоренению. Отрицательное действие цитокининов возможно преодолеть, по данным Н.В. Катавой и Р.Г. Бутенко, используя питательные среды с минимальной концентрацией цитокининов, обеспечивающих стабильный коэффициент микроразмножения, или чередованием циклов культивирования на средах с низким и высоким уровнем фитогормонов. [c.119]

Во-первых, все типы тканей и органов у взрослых растений эндогенно заражены грибами и бактериями, что значительно затрудняет получение асептической культуры. Во-вторых, почки или другие органы одного и того же взрослого дерева различаются между собой по поведению в условиях in vitro гораздо больше, чем имеет место у травянистых растений. Это приводит к проведению специальных экспериментов, по подбору оптимальных условий культивирования, обеспечивающих нормальный рост и развитие вновь введенных эксплантов в культуру. [c.126]

Оптимальность условий культивирования клеток проверялась по интактной ткани в аналогичных камерах без обработки, кроме попарного монтирования. Такой контроль на выявление споптанпой дегенерации клеток культуры ткани ностоянно сопровождал все оныты. Спонтанная дегенерация не наблюдалась. [c.31]

Однако не только наличие индуктора способно увеличить выход фермента не менее важно подыскание оптимального для биосинтеза фермента состава питательной среды и оптимальных условий культивирования. Значение этих факторов можно проиллюстрировать на примере разработки процесса биосинтеза а-амилазы культурой Asp. oryzae с индуктором — крахмалом. Ниже показано влияние состава питательной среды иа биосинтез а-амилазы [c.109]

Информация о связи физических функций с условиями внешней среды используется для создания оптимальных условий культивирования растений. С этой целью разрабатываются методы и создаются приборы для получения информации о процессах лсизнедеятельности растений и условиях их существования. Химическое и электронное взаимодействие между клетками, тканями и органами в процессе развития растительного организма может осуществляться при участии различных веществ-регуляторов ферментов, витаминов, гормонов, ингибиторов, минеральных соединений. Среди них особое значение приобретают вещества, которые специально предназначены для выполнения регуляторных функций в организме. [c.440]

После криоконсервирования и хранения в жидком азоте клетки перевиваемых культур особенно нуждаются в оптимальных условиях культивирования, так как восстановление нелетальных повреждений, возникающих при замораживании—оттаивании, возможно только при благоприятных условиях. Установлено, что процессам восстановления способствует инкубирование клеток в среде, содержащей уабаин, или в среде с пониженным содержанием кислорода а также в кондиционированной среде [25—27]. Стимулирующее действие на пролиферацию клеток перевиваемых культур после криоконсервирования оказывает инсулин [14]. [c.66]

Итак, для получения протеаз облигатного термофила M.aibonyoee 355 оптимальными условиями культивирования являются температура 42°С и время ферментации 60 ч, а для факультативного термофильного гриба А. fumigatue 28 - 37°С И 72-84 Ч, [c.67]

Из изученных плазмид лишь pUBllO и ее гибридные производные характеризуются достаточно высокой стабильностью в клетках бацилл. При культивировании плазмидосодержащих щтаммов на питательных средах без антибиотиков заметная потеря клетками плазмид наблюдается только в постэкспоненциальной и стационарной фазах роста культуры, что обычно мало сказывается на продуктивности штаммов по целевому белку Большое значение для стабильного поддержания гибридных плазмид в клетках бацилл имеет состав питательной среды и условия культивирования. Поэтому при создании технологических процессов на основе штаммов-продуцентов, конструируемых методами генетической инженерии, необходимо уделять пристальное внимание выбору оптимальных условий культивирования. [c.268]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология