Двумерная хроматография на бумаге

Как одномерная, так и двумерная хроматография на бумаге могут быть осуществлены нисходящим или восходящим способом. В первом случае бумагу подвешивают (рис. 422, а), укрепляя верхний конец в кювете (лодочке) с растворителем. Во втором случае лист бумаги помещают в растворитель нижним концом (рис. 422, б). [c.457]

Первый способ разделения (рис. 487) главным образом находит применение при анализе сложных смесей в микромасштабе и сходен с двумерной хроматографией на бумаге (см. стр. 457). [c.541]

Методом двумерной хроматографии на бумаге отделяли натрий от щелочных и щелочноземельных элементов [482]. В качестве первого растворителя использовали смесь (87 13) абсолютного этанола и воды, в качестве второго — фенол, насыщенный водой. Разделяемые ионы имеют следующие величины 7 / (при 19° С) 0,17 Ка 0,14 К 0,19 ВЬ 0,26 Сб 0,40 КЩ 0,25 Mg 0,09 Са 0,08 8г 0,80 Ва 0,07. [c.49]

КАЧЕСТВЕННЫЙ АНАЛИЗ СЛОЖНОЙ СМЕСИ КАТИОНОВ МЕТОДОМ ДВУМЕРНОЙ ХРОМАТОГРАФИИ НА БУМАГЕ [9] Приборы и реактивы [c.268]

Дальнейшим усовершенствованием является метод двумерной хроматографии на бумаге. Преимущество этого метода основано на том, что вещества имеют различные значения в разных растворителях. Смесь наносят сначала в угол листа фильтровальной бумаги квадратной формы, и производят хроматографирование в одном направлении. Полученные при этом пятна подвергают хроматографическому разделению в другом растворителе, повернув лист бумаги на 90° (т. е. чтобы фронт двигался в направлении, перпендикулярном движению фронта при первом хроматографировании). Для более быстрого разделения применяют метод круговой хроматографии на бумаге анализируемую смесь помещают в центр круглого листа фильтровальной бумаги, вырезают тонкую полосу по радиусу и погружают ее в растворитель. При этом полоска работает как фитиль. Вещества разделяются в виде концентрических кругов. Количество вещества, которое может быть подвергнуто разделению на круглом листе обычной фильтровальной бумаги (ватман № 1), составляет 1—50 мкг, причем скорость перемещения фронта растворителя может быть повышена центрифугированием. При работе с большими количествами веществ, бумага перегружается и образуются шлейфы и хвосты . Меньшие же количества веществ трудно обнаружить. В количествах до 1 мг вещества можно разделять, нанося смесь в виде полос параллельно краю куска бумаги при этом вместо пятен получаются полосы. Для препаративного разделения можно использовать также толстую бумагу (например, ватман № 3). [c.22]

ДНФ-аминокислоты идентифицируют с помощью одно- или двумерной хроматографии на бумаге и определяют их количество соответствующими методами [11]. [c.268]

Размер листа фильтровальной бумаги. Размер и форма листа фильтровальной бумаги, так же как и место нанесения образца при двумерной хроматографии на бумаге, показаны на фиг. 57. [c.268]

Наличие флавоноидов определяли во всех органах исследуемых растений при помощи качественных реакций (с солями железа, со щелочью, с магнием), а также одно- и двумерной хроматографии на бумаге в различных системах растворителей. [c.104]

Двумерная хроматография на бумаге с успехом применяется для разделения аминокислот [И, 12], на геле — для разделения белков [13]. [c.237]

Для анализа стандартных смесей олигонуклеотидов, образующихся в результате действия эндонуклеаз на РНК или ДНК, в последнее время широко применяются двумерная хроматография на бумаге или комбинация электрофореза и хроматографии на бумаге [35] (рис. И). Первичную хроматографию, или электро- [c.330]

Разделение и идентификация очень малых количеств радиоактивных органических соединений, образующихся при фотосинтезе в атмосфере с С Оз, составляли сложную аналитическую проблему, которую удалось успешно решить благодаря использованию двумерной хроматографии на бумаге [10]. Согласно этому методу, растения после фотосинтеза в атмосфере С Ог фиксируют, после чего из их тканей экстрагируют соединения, растворимые в таких растворителях, как спирт и вода. Избыток растворителя затем удаляют путем упаривания в вакууме концентрированный экстракт наносят па большой лист фильтровальной бумаги вблизи от его угла и высушивают. После этого конец листа помещают в специально подобранные смеси органических растворителей с водой эти смеси движутся по бумаге за счет капиллярно- [c.538]

III. ДВУМЕРНАЯ ХРОМАТОГРАФИЯ НА БУМАГЕ [c.17]

При двумерной хроматографии на бумаге образец наносят на один из углов квадратного листа бумаги и проводят разделение в одной системе растворителей. Затем лист вынимают, высушивают, поворачивают его на 90° и хроматографируют в другом растворителе (рис. 3.11). [c.30]

Рис. 5.14. Разделение смеси аминокислот с помощью двумерной хроматографии на бумаге. В первом направлении использована смесь растворителей к-бутанол — уксусная кислота — вода (250 60 250 по объему), а во втором направлении — смесь фенол — вода — аммиак (120 20 0,3%). Яр фронта растворителей в обоих направлениях принято равным 1. Сокращения названий аминокислот см. табл. 4.1.

Двумерная хроматография на бумаге. [c.184]

Нередко весьма эффективен вариант, известный как двумерная хроматография на бумаге. Метод заключается в том, что после проведения хроматографии в одном направлении бумагу высушивают и затем повторно хроматографируют под прямым углом к направлению первоначального движения растворителя с использованием другого растворителя (рис. 8-8). При этом часто происходит разделение веществ, которые не разделяются в первом растворителе. [c.184]

Более совершенным является метод двумерной хроматографии на бумаге. Смесь наносят в угол квадратного листа фильтровальной бумаги и производят хроматографнроваине в одном направлении. Полученные пятна подвергают хроматографированию в другом растворителе, повернув лист на 90°. Поскольку вещества имеют разные в различных растворителях, то происходит их дальнейшее разделение. [c.42]

Были проведены широкие систематические исследования состава флавоноидов в высших растениях различных видов и сортов. Для получения фингерпринтов, позволяющих быстро определять состав флавоноидов у того или иного вида растения, использовали двумерную хроматографию на бумаге. Было показано, что состав флавоноидов является чрезвычайно важным таксономическим признаком как при установлении родства между видами, принадлежащими к одному семейству, так и при выявлении различий между близкородственными видами. В этом отношении может быть очень характерным присутствие флавоноидов тех или иных классов и распределение заместителей у индивидуальных соединений. [c.137]

С целью установления состава катехинов в живой растительной клетке, мы исследовали свежие листья чая. Собранные с полновозрастных чайных растений Азербайджанской ССР, Грузинской ССР и Краснодарского края трехлистные нормальные флеши делили на почку, первый лист, второй лист, третий лист и стебель. Материал быстро замораживали сухим льдом. С этих же растений собирали четвертый лист побега и старые листья. Замороженные образцы растирали в охлажденном до —25° ацетоне. Ацетоновые вытяжки объединяли и упаривали продуванием холодного воздуха. Сгущенные экстракты подвергали двумерной хроматографии на бумаге. [c.197]

Найт [1081 писал При разделении ряда близких веществ... обычно при помощи общепринятого метода двумерной хроматографии на бумаге добиваются разделения, при котором большая часть пятен собирается на одной половине бумаги, разделенной по диагонали, так как очень часто относительные значения Rf для многих веществ оказываются одинаковыми в целом ряде различных органических растворителей . Затем он отметил, что этого мржно избежать, если использовать ионообменную бумагу и если подобрать проявители так, чтобы ионогенные группы ионизовались только в одном из них. Например, он разделил мe [c.321]

Состав полученной смеси катехинов может быть опре-. делен двумерной хроматографией на бумаге. Для этого приготавливают два листа хроматографической быстро-фильтрующей бумаги размером 30x30 см и наносят по капле спиртовой раствор танина в левый нижний угол. Листы бумаги погружают нижним концом в 2%-ный раствор уксусной кислоты, налитой на дно квадратного сосуда, и хроматографируют по восходящему способу. Один из листов после высушивания опрыскивают 1 %-ным раствором железоаммонийных квасцов и определяют для отдельных катехинов. Другой лист бумаги поворачивают на 90° и хроматографируют в системе растворителей н-бутанол — уксусная кислота — вода (40 12 29). После проявления обе хроматограммы сравнивают и определяют [c.250]

Фиг 5. Разделение динуклеотидов типа д-ХфУф с помощью двумерной хроматографии на бумаге Ватман 3 ММ [35]. [c.19]

Если белок подвергать расщеплению в стандартных условиях с использованием различных протеиназ (ферменты, разрываю-1цие пептидные связи), в качестве продуктов образуются небольшие пептиды. Число и типы получающихся пептидов зависят от строения данного белка и вида использованной протеиназы (например, конкретная протеиназа может осуществлять разрыв пептидных связей только после определенной аминокислоты или класса аминокислот). Пептиды можно затем разделить с помощью двумерной хроматографии на бумаге, получая при этом распределение пятен, которое практически никогда не совпадает для различных белков. Такая пептидная карта называется отпечатками пальцев (рис. 8-10). [c.185]

Опыты по изучению пути фиксации СОг при фотосинтезе удалось провести благодаря использованию долгоживущего изотопа углерода С, появивщегося в лабораториях с 1945 г., и применению двумерной хроматографии на бумаге, разработанной несколькими годами ранее. Фиксацию СОг изучали у одноклеточных зеленых водорослей hlorella и S enedesmus. Выбор объекта объясняется тем, что, с одной стороны, эти организмы по своим биохимическим свойствам очень похожи на высщие зеленые растения и с другой — их можно выращивать в одинаковых, стандартных условиях, а при проведении опытов с кратковременной фиксацией углекислоты клетки можно очень быстро убивать. [c.84]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология