Электрофорез в растворах

Непрерывный электрофорез можно осуществлять и в растворе, но для этого необходимы специальные многокамерные ячейки с полупроницаемыми стенками из ионообменных мембран. Например, для достаточно чистого разделения бинарных смесей требуется 5-камерная ячейка. По сравнению с другими методиками электрофорез в растворе является самым производительным, но практически применим только к несложным смесям, таким как N(1 — ТЬ [731] или 5г - У "> [1026]. [c.149]

Электрофорез в растворе пока имеет весьма ограниченное применение, поскольку разделяемые по ходу электрофореза зоны, во-первых, подвергаются диффузионному размыванию, а во-вторых, что более существенно, размываются конвекционными токами, возникающими в результате незначительных неоднородностей температуры в системе, при ничтожных механических воздействиях и т.п. В настоящее время, по-видимому, начинается второе рождение этого метода в связи с возможностью проведения электрофореза в условиях невесомости на орбитальных космических станциях. [c.241]

Электрофорез применяют для разделения заряженных частиц. В основе метода лежат различия в скорости перемещения разделяемых компонентов в электрическом поле. Различают электрофорез в растворе и на носителях (например, на бумаге). Ионофорез как разновидность электрофореза предназначен для разделения неорганических ионов малого размера. [c.81]

Реологические характеристики слоев глобулярных белков сывороточного альбумина и лизоцима, вычисленные по измерениям деформаций во времени, приведены в табл. 20 и на рис. 54. При повышении температуры от 20 до 60 С происходит нарастание всех характеристик структуры слоя. С помощью седимента-ционного анализа и электрофореза в растворах ЧСА, подвергнутых нагреванию, обнаружено было три компонента — нативные молекулы, денатурированные молекулы и агрегаты последних. При нагревании в течение некоторого времени устанавливается равновесие между этими компонентами, зависящее от температуры [165]. Образование межфазного слоя ЧСА на границе раздела жидких фаз при повышенных температурах (30—40° С) приводило к усилению твердообразных свойств слоя, о чем свидетельствуют значения модулей эластических деформаций, вязкость эластичности и периоды упругого последействия. [c.232]

С помощью описанного выше метода электрофореза в растворе полностью разделить компоненты смеси не удается. Более эффективен в этом отношении зонный электрофорез, для которого используются твердые среды (бумага, крахмал или целлю- [c.219]

Здесь будут рассмотрены только те варианты электрофореза, которые пригодны для разделения существенных количеств белковых смесей с выделением отдельных фракций. Применение для этой цели свободного электрофореза в растворе без каких-либо опорных сред затруднено теми же обстоятельствами, что и препаративное ультрацентрифугирование. При попытке выделить ту зону раствора, где расположена та или иная фракция, легко возникают токи жидкости, размывающие границы и перемешивающие содержимое различных зон. Предлагалось немало методических приемов для преодоления этого препятствия. Так, например, на определенной стадии процесса часть кюветы отсекали вдвигающейся стеклянной пластинкой. Применялись также пористые перегородки, не препятствующие движению белковых частиц, но предотвращающие смешивание при отборе части содержимого кюветы. Эти и другие аналогичные приемы не получили широкого распространения. Причина этого прежде всего в том, что они позволяют получать в чистом виде только фракции, занимающие в кювете крайние положения. Кроме того, производительность этих методов относительно невелика, а необходимое оборудование довольно дорого и сложно в эксплуатации. [c.30]

Количественное определение лития обычно проводят пламенно-фотометрическим методом после отделения от других металлов электрофорезом в растворе, полученном путем обработки соответствующего отрезка фильтровальной бумаги отмеренным количеством воды. О методе, в котором используется удерживание зонами щелочных металлов после их разделения всасываемого раствора роданида железа, см. [1238]. [c.77]

Факторы разделения ионов бумажной хроматографией и электрофорезом в растворе 0,1 М H l [c.159]

Для разделения гликопротеинов используется также метод электрофореза. Электрофорез в растворах, так называемый свободный электрофорез, проводится в ячейке Тизелиуса. Признаком гомогенности служит наличие одиночного пика при двух или трех достаточно дале-тх значениях pH. На подвижность вещества при электрофорезе влияют два независимых фактора заряд вещества и гидродинамическое сопротивление. При взаимной компенсации этих факторов два различных вещества могут иметь одинаковую подвижность, но это не может повторяться при различных pH. [c.74]

Аналогичны процессы разделения в условиях электрофореза. В растворе NH4 I комплекс [Со(ЫНз)б] + за 6 ч продвинулся в конкретных условиях одного из таких экспериментов к катоду на 12,95 см, комплекс [Со(ЫНз)5С1] +— на 9,30 см, а комплекс тpaи -[ o(NHз)4(N02)2]+— на 4,55 см. [c.417]

Для разделения лантаноидов возможно применение бумажной хроматографии и электрофореза на бумаге. Электрофорез ведется из растворов органических кислот. Подвижность ионов лантаноидов падает с ростом порядкового номера элемента и ростом концентрации кислоты. Быстрое разделение достигается при применении этилендиаминтетрауксусной и нитрилуксусной кислот. Методом непрерывного электрофореза в растворах 0,7 М винной и а-оксиизомасляной кислот при pH = 2,2 можно отделить малые количества прометия от больших количеств других редкоземельных элементов. [c.287]

Наилучшие результаты при фокусирующем электрофорезе осколочных РЗЭ получаются при использовании 0,1 М лимонной кислоты в качестве комплексообразующего вещества и 0,01 М НС1 в качестве декомплексообразующего. Разделение проводилось на фильтровальной бумаге Тоуо Roshi № 50 при напряжении 1000 в на 30 см и продолжительности 30 мин. Попытка разделить смесь Се , Рш и методом фокусирующего электрофореза в растворах нитрилотриуксусной и соляной кислот при падении потенциала 16 в см за 20 мин. не привела к отделению Рт от Nd удалось отделить только Се [362]. [c.168]

Более практичным и эф- Поп проницаеыые мембраны фективным оказался, однако, электрофорез с применением тех или иных опорных сред, так называемый зональный электрофорез, т. е. электрофорез в растворах, которыми пропитывается какой-либо твердый пористый или порошкообразный носитель — фильтровальная бумага, крахмал, целлюлоза, стеклянный порошок и др. Еще более эффективным, хотя и менее удобным для препаративных целей, оказалось электрофоретическое разделение в гелях — агар-агаровом, крахмальном, полиакриламидном. [c.31]

Наряду с ионообменной хроматографией для разделения белков широко применяют зонный электрофорез, основанный на различной подвижности заряженных белковых молекул в поле постоянного тока. Обычно деление происходит при прохождепии тока через буферный раствор, содержащий смесь белков, причем используется как электрофорез в растворе так и электрофорез на носителях. Для быстрого предварительного анализа белковой смеси удобен бумажный электрофорез В препаративных целях используют электрофорез в блоке В качестве носителя в этом случае можно применять крахмал, стеклянный и целлюлозный порошки, поливинилхлорид. Наибольшей разрешающей способностью для белков обладает электрофорез в геле По-видимому, здесь играет роль не только заряд частиц, но и их величина, т. е. гель действует и как опорная среда, и как молекулярное сито. Наряду с крахмальным используют агар-агаровый и полиакриламидный гели. [c.20]

Для белков разработан метод электрофореза на колонках с градиентом плотности раствора который сочетает прехгмущества электрофореза в растворе с высокой разрешающей способностью электрофореза в опорных средах. [c.21]

Если не произвести мечение или окраску ДНК, полосы в агарозных или полиакриламидных гелях останутся невидимыми. Один из самых эффективных методов окраски ДНК состоит в выдерживании геля после электрофореза в растворе красителя бромистого этиОия, который флуоресцирует под ультрафиолетовым светом после связывания с ДНК (рис. 4-64, Б и В). Еще более чувствительный метод детекции основан на [c.233]

Если не произвести мечение или окраску ДНК, полосы в агарозных или полиакриламидных гелях останутся невидимыми. Один из самых эффективных методов окраски ДНК состоит в выдерживании геля после электрофореза в растворе красителя бромистого этидия, который флуоресцирует под ультрафиолетовым светом после связывания с ДНК (рис. 4-64, Б и В). Еще более чувствительный метод детекции основан на включении радиоизотопов в молекулы ДНК до электрофореза для этого обычно используют который включается в фосфаты ДНК и испускает Р-частицу достаточно высокой энергии, чтобы её можно было выявить с помощью метода радиоавтофафии (рис. 4-64, А). [c.233]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология