Нуклеозиддифосфаты

Моносахариды. На основе 0-фруктозо-6-фосфата и других первичных продуктов фотосинтеза (см. рис. 11.7) в растениях образуются различные моносахариды и их производные (фосфаты, нуклеозиддифосфаты, гликозиды и др.). Моносахариды, образовавшиеся в процессе фотосинтеза, могут превращаться в другие моносахариды. Важную роль в этих взаимопревращениях играют их эфиры - фосфаты и нуклеозиддифосфаты. [c.330]

Оба полимера — крахмал и целлюлоза — образуются из о-глюкозы, переносчиками которой в зависимости от вида растений при синтезе целлюлозы являются АДФ, ГДФ или ЦДФ при синтезе крахмала переносчиком гликозильных остатков чаще всего является АДФ. В целлюлозе мономерные звенья соединены р(1 4)-гликозидными связями, а в главных цепях крахмала (амилоза) — а(1 4)-гликозидными связями. Акцепторами гликозильных остатков, переносимых нуклеозиддифосфатами, являются затравочные олигосахариды, состоящие из четырех и более мономерных единиц. Схематически процессы биосинтеза крахмала и целлюлозы из фосфорилированной глюкозы представлены ниже [c.221]

Нуклеозиддифосфат-киназа. Фермент, катализирующий перенос концевого фосфата с нуклеозид-5 -трифосфата на нуклеозид-5 -дифосфат. [c.1015]

Аналогичные закономерности наблюдаются при катализированном ферментами синтезе (биосинтезе) полимеров. Мономеры в этом случае являются бифункциональными соединениями, ио вследствие высокой специфичности катализатора оказывается возможным взаимодействие лишь одной из функциональных групп мономера с определенным концом растущей полимерной цепи. Например, фермент полинуклеотид-фосфорилаза, с помощью которого происходит биосинтез полирибо-нуклео1идов из нуклеозиддифосфатов, катализирует взаимодействие концевой З -ОН группы растущей полинуклеотидной цепи с пиро-фосфатной связью в мономере [c.365]

После окончания разделения в первом направлении пластинку высушивали, вымачивали в метаноле, снова подсушивали и начинали элюцию во втором направлении (тоже с удлинительным фитилем). Элюцию начинали водой до старта, а затем 0,3 М водным раствором сульфата аммония вплоть до продвижения фронта элюента на 4—5 см по фитилю. Пятна локализовали авторадиографией, затем вырезали и просчитывали радиоактивность методом регистрации черепковского излучения [Остерман, 1983]. На рис. 166 представлено окончательное расположение хроматографических пятен. Несколько неожиданным является сильно сдвинутое вправо положение пятна рТр. По-видимому, 0,3 М сульфат аммония легко вытесняет все нуклеозиддифосфаты из ионной связи с PEI, и решающую роль в определении скорости миграции начинает играть сорбция оснований на целлюлозе. Метильная группа тимина препятствует сорбции. В пользу такой трактовки говорит и соотношение положений пятен рСр и рт Ср. рТр обгоняет рт Ср вероятно, по той причине, что рТр уже движется вслед за фронтом элюции во втором направлении, когда этот фронт еще только достигает пятна рт Ср и начинается растворение находящегося в нем материала. [c.492]

В аналогичной работе [Pirtle et al., 1980] электрофорез в геле велп на длине 90 см, а полосы вырезали, элюировали порознь, переваривали РНКазами Т1 и Т2 в растворе, а затем наносили в той же последовательности на старт пластинки PEI-целлюлозы для идентификации 5 -концевых нуклеозиддифосфатов. [c.509]

Биологическая роль. Ф-ции углеводов в живых организмах чрезвычайно многообразны. В растениях моносахариды являются первичными продуктами фотосинтеза и служат исходными соед. для биосинтеза гликозидов и полисахаридов, а также др. классов в-в (аминокислот, жирных к-т, фенолов и др.). Эти превращения осуществляются ферментами, субстратами для к-рых служат, как правило, богатые энергией фос-форилир. производные сахаров, гл. обр. нуклеозиддифосфат-сахара. [c.23]

Характерная особенность биосинтеза липидов заслуживает того, чтобы прокомментировать ее здесь. Холин и этаноламин активируются аналогично тому, как это имеет место в случае сахаров [уравнение (11-26). Например, холин может быть фосфорилирован с использованием АТР [уравнение (11-26), стадия а], а образующийся фосфорилхолин может далее превращаться в цитидиндифосфатхолин [уравнение (11-26), стадия б]. В результате переноса фосфорилхолина из последнего соединения на подходящий акцептор образуется конечный продукт [уравнение (11-26), стадия в]. Следует отметить отличие этих реакций полимеризации от синтеза полисахаридов, которое состоит в том, что вступление в реакцию сахаронуклеотида сопровождается отщеплением целого нуклеозиддифосфата, тогда как в реакциях DP-холина и DP-этанолами-на отщепляется СМР, а одна фосфатная группа остается в конечном продукте. То же самое имеет место в случае синтеза бактериальных тейхоевых кислот (гл. 5, разд. Г, 2). Сначала образуется DP-глицерин или DP-рибит, а после этого происходит полимеризация с отщеплением СМР и образованием чередующегося сахарофосфат-алкогольного полимера [28а]. [c.494]

Нуклеозидфосфоморфолиды обладают преимуществами с точки зрения их реакционной способности и растворимости в органических растворителях н являются наилучшими реагентами для синтеза несимметричных пирофосфатов, таких как NAD+, FAD, кофермент А и нуклеозиддифосфаты сахаров [51]. Они интенсивно применялись также для синтеза нуклеозидди- и -трифосфатов, содержащих природные или нетипичные основания, например для синтеза 5-хлорцитидиндифосфата [74]. [c.165]

Синтез РНК из нуклеозиддифосфатов. М. Грюнберг-Манаго и С. Очоа в 1955 г. в клетках Е. соИ открыли особый фермент—полинуклеотид-фос-форгшазу. Этот фермент наделен способностью синтезировать in vitro полимерную молекулу РНК из однотипных или разных рибонуклеозид-дифосфатов (НДФ). Реакция, являющаяся обратимой, протекает по уравнению [c.495]

Рибонуклеозидтрифосфаты и дезоксирибонуклеозидтрифосфаты не являются субстратами фермента. Фермент не нуждается в матрице, однако для синтеза необходима затравочная цепь РНК (НМФ) со свободной З -гидроксильной группой, к которой присоединяются остатки мононуклеотидов. Образовавшаяся полимерная молекула РНК не имеет заданной специфггческой последовательности мононуклеотидов, но содержит 3 —>5 фосфодиэфирные связи, легко разрываемые рибонуклеазой. Относительно биолопгческой роли этого фермента у бактерий предполагают, что он катализирует, скорее всего, обратную реакцию —расщепление мРНК с образованием нуклеозиддифосфатов. [c.495]

В синтезе флавинаденпндпнуклеотида (ФАД), являющегося несимметричным Р ,Р -диэфиром пирофосфорной кислоты, пирофосфатная связь создается двумя основны.ми путялт 1) конденсацией двух различных нуклеозидмонофосфатов — аденозин-5 -фосфата и рибофлавин-5 -фосфата 2) конденсацией нуклеозиддифосфата с нефосфорилированным нуклеози-дом — аденозин-5 -дифосфата и рибофлавина или рибофлавин-5 -дифосфата и аденозина. [c.554]

Гидролиз любой из двух связей между ортофосфатными остатками при pH 7 и стандартных концентрациях компонентов сопровождается уменьшением свободной энергии приблизительно на 30 кДж/моль. При гидролизе связи, соединяющей а- и /З-фосфатные остатки в молекуле АТФ, образуются пирофосфат и аденозинмонофосфат (АМФ). Гидролиз ангидридной связи между р- и 7-фосфатами типичен как для АТФ, так и для ГТФ и приводит к образованию ортофосфата и соответствующего нуклеозиддифосфата АДФ или ГДФ. [c.22]

Нетрудно убедиться, что в расчете на одну образовавшуюся гликозидную связь расходуется одна пирофосфатная связь в молекуле АТФ. Действительно, после прохождения реакции гликозилирования нуклеотидный остаток освобождается в виде нуклеозиддифосфата. Для его превращения в нуклеозидтрифосфат с целью повторного использования в реакции (IX.13) пеоб.чодим перенос на него одного фосфата по реакции [c.375]

Биосинтез олиго- и полисахаридов относится к эндергоническим реакциям и для замыкания одной гликозидной связи требуется около 20 кДж энергии, а для сахарозы — даже около 30 кДж. Поэтому, как и в животных тканях, в реакцию синтеза вступают не свободные моносахариды, а их производные фосфорные эфиры сахаров, обладающие достаточно высокой свободной энергией эфирной связи ( 15—20 кДж/моль). Донорами гликозильных остатков для синтеза полисахаридов являются нуклеозиддифосфаты УДФ-глюкоза, АДФ-глюкоза, ГДФ-глюкоза и др. Свободная энергия связи между глико-зил ьными остатками и нуклеозидцифосфатами относительно высокая ( 30 кДж/моль), и, следовательно, реакции синтеза полисахаридов носят характер замещения, переноса, а не присоединения молекул. [c.220]

Полагают, что in vivo фермент катализирует распад клеточных РНК до нуклеозиддифосфатов, участвуя тем самым в регуляции концентрации клеточного неорганического фосфата. [c.424]

РНК-лигазу широко используют для введения метки в З -кон-цевые звенья РНК. В качестве доноров служат 5 - P-мeчeныe 3, 5 -нуклеозиддифосфаты. Фермент находит применение в химикоферментативном синтезе полирнбонуклеотидов. Добавление его к ДНК-лнгазе значительно ускоряет реакцию сшивания двухцепочечных молекул ДНК. [c.353]

Рандерат и Струк [70] рекомендуют для фракционирования нуклеозид-монофосфатов, нуклеозиддифосфатов и нуклеозидтрифосфатов на бумаге или слое целлюлозы смесь и-бутанол — ацетон — ледяная уксусная кислота — 5%-пый аммиак — вода (9 + 3 + 2 + 2 + 4) (табл. 114). Если зти же компоненты смешать в соотношении 7 + 5 + 3 + 3 + 2, то получится растворитель, даюш,ий хорошее разделение на слое целлюлозы (табл. 114) и пригодный также для фракционирования нуклеотидов на слое силикагеля Г [71]. Для достижения сравнимых результатов с этой системой в случае слоя целлюлозы достаточно 90 мин, в то время как в случае силикагеля Г необходимо 150 мин. Щелочные растворители, конечно, не могут быть непосредственно использованы на силикагеле Г для разделения сильнокислых нуклеотидов. Рандерат [69] указывает, что добавка 15 г этилендиаминте-трауксусной кислоты на 200 мл растворителя улучшает разделение. [c.443]

Нуклеозиддифосфаты и нуклеозидтрифосфаты превращаются друг в друга под действием нуклеозиддифосфаткиназы в отличие от монофосфаткиназ, например, ИДФ 4- АДФ —> ИТФ + АДФ, отсюда общее уравнение для синтеза рибо- и дезоксирибонуклеотидов ХДФ + УТФ —> ХТФ + УДФ, где X и у - любые рибо- и дезоксирибо-нуклеотиды. [c.431]

Опубликованы данные, что листья шпината содержат полину-клеотидфосфорилазу, которая катализирует полимеризацию рибо-нуклеозиддифосфатов в соответствии со следующей реакцией [c.479]

Первые успехи в этой области относились еще к синтезу полирибонуклео-тидов (гомополимеров) с помощью фермента полинуклеотидфосфорилазы (Очоа и Гринберг-Манаго). Мономерами служили нуклеозиддифосфаты, поликонденсация шла с выделением ортофосфата. [c.197]

Отдача энергии нуклеотидом сопряжена с отщеплением фосфатных групп, вследствие чего нуклеозидтрифосфаты превращаются в нуклеозиддифосфаты или нуклеозидмоно-фосфаты. [c.8]

Фермент обнаружен также в тканях растений и животных. Действие фермента неспецифично. Состав затравки также не оказывает влияния на состав синтезируемого продукта. В качестве за яравки можно взять любую РНК или любой полинуклеотид. Состав образующейся под действием фермента РНК зависит только от количества и соотношения нуклеозиддифосфа-тов в реакционной среде. Если в реакционной среде будут все четыре нуклеозиддифосфата в равных соотношениях, то и в синтезированной РНК получается такое же соотношение между нуклеотидами если в среде будет преобладать какой-либо нуклеозиддифосфат, то он же преобладает и в составе РНК. Можно внести в среду только один нуклеозиддифосфат, например АДФ или УДФ, и в этом случае под действием фермента синтезируются соответственно полимеры адениловой или уридиловой кислот. Однако связи, возникающие между отдельными нуклеотидами в цепи, всегда аналогичны связям между отдельными нуклеотидами в РНК- [c.278]

Смотреть страницы где упоминается термин Нуклеозиддифосфаты: [c.161] [c.492] [c.493] [c.508] [c.561] [c.659] [c.493] [c.109] [c.150] [c.166] [c.475] [c.500] [c.529] [c.84] [c.456] [c.456] [c.424] [c.562] [c.607] [c.425] [c.468] [c.51] [c.671]

Биологическая химия Изд.3 (1998) -- [ c.103 ]

Биохимия (2004) -- [ c.175 ]

Молекулярная биология клетки Том5 (1987) -- [ c.0 ]

Неорганическая биохимия Т 1 _2 (1978) -- [ c.100 , c.673 , c.683 ]

Химия биологически активных природных соединений (1970) -- [ c.0 ]

Биохимия Издание 2 (1962) -- [ c.455 , c.456 , c.458 ]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология