Хлоропласта выделение из листьев

Выделение хлоропластов из листьев [c.38]

Ддя получения изолированных хлоропластов листья сначала измельчают растиранием в той или иной среде в зависимости от задачи исследования, а затем отделяют фракцию хлоропластов от компонентов клетки - цитоплазмы, ядер, крахмала, осколков клеток и других - ди еренциальным центрифугированием или центрифугированием в градиенте плотности или комбинацией обоих этих методов (Рабинович, 1951 Вечер, 1961 Осипова, 1%8 Методы выделения хлоропластов, 1970). [c.34]

Хлорофилл. Зеленый краситель листьев, называемый хлорофиллом (Пеллетье и Кавантур, 1819 г.), был впервые изучен Берцелиусом (1837 г.) в результате оптических исследований Стокс (1854 г.) установил, что он представляет собой смесь четырех веп] еств — двух хлорофиллов и двух каротиноидов. Выделение двух хлорофиллов было осуществлено М. Цветом (1906 г.) при помощи открытого им в связи с этим хроматографического метода. Оба хлорофилла а ж Ъ постоянно сопровождаются в хлоропластах зеленых листьев двумя каротиноидами — каротином и ксантофиллом (см. гл. Каротиноиды ). (5реди исследователей, внесших значительный вклад в эту область, приведем еще М. Ненки, Л. Мархлевского, Р. Вильштеттера и, наконец, Г. Фишера, [c.630]

Рис. 4. Содержание фенольных соединений в хлоропластах, выделенных из листьев ивы (май 1966 г.)

Полученный прессованием листьев клеточный сок служит основой для выделения белков, содержит растворимые белки клеток листьев, а также фрагменты хлоропластов. Компоненты этих двух типов находятся в концентратах белков зеленой массы, [c.233]

В 1937 г. Р. Хиллом была открыта и доказана суть реакции фотосинтеза если добавить в экстракт из листьев, содержащий хлоропласты, какой-нибудь небиологический акцептор водорода и осветить эту смесь, то можно будет пронаблюдать выделение кислорода, т.е. произойдет восстановление акцептора водорода согласно следующему уравнению [c.196]

Другое направление заключается в отходе от живой системы. В этом случае хлоропласты изолируются от зеленых листьев растений и стабилизируются совместно с гидрогеназой (например, на твердом субстрате), так что активность может поддерживаться в течение долгого времени вне биоэлемента. Гидрогеназа, энзим, который определяет выделение газообразного водорода, хотя и присутствует во многих водорослях, но может быть и прямо привязан к фотосинтетической аппаратуре, так как вне биоэлемента ферменты гидрогеназы сильно ингибированы кислородом, и напротив, фотосинтетический процесс, ответственный за выделение кислорода, выключается при восстановительных условиях. [c.345]

В хлоропластах весенних зеленых листьев, выделенных при центрифугировании (3000 g, 20 мин.), были обнаружены флавоноиды, а также следы неизвестного фенольного соединения (рис. 14). Характерно, что в хлоропластах присутствовал флавонол (пятно [c.74]

В опытах с листьями наземных растений в замкнутой системе (фиг. 38, Б) имеются еще более сложные источники ошибок. Здесь один и тот же воздух в течение продолжительного времени циркулирует, проходя последовательно через прибор для измерения концентрации и через листовую камеру. Поэтому фотосинтез происходит при непрерывно уменьшающейся концентрации СОа и скорость его в любой момент времени можно определить, исходя из известного объема системы и наклона кривой, описывающей изменение концентрации СО2 во времени. Этот наклон определяется не только скоростью поглощения и выделения СО2 (соответственно хлоропластами и митохондриями), но и наружной концентрацией СО2 в данный момент времени, предшествующими изменениями этой концентрации во времени и, наконец, всеми значениями внутреннего сопротивления движению СО2. При наличии,очень точного метода определения концентрации объем замкнутой системы можно сделать достаточно большим относительно поверхности листа для того, чтобы снижение концентрации происходило крайне медленно (и вместе с тем поддавалось измерению). В противном случае видимый фотосинтез следует измерять в открытой или, еще лучше, в полузамкнутой системе (см. ниже), так как в этих случаях можно поддерживать постоянную скорость фотосинтеза, пополняя запас СО2 в воздухе по мере его расходования. Следует указать, что те же самые рассуждения приложимы и к опытам с открытой и замкнутой системами, в которых измеряются изменения концентрации кислорода, поскольку выделение кислорода обычно считается эквивалентным поглощению СОг- Однако теоретичесю [c.85]

ДНК ядер и хлоропластов отличаются не только по нуклеотидному составу. Удалось зарегистрировать различия в плотности этих двух видов ДНК, используя центрифугирование нуклеиновых кислот в градиенте плотности хлористого цезия. Если центрифугировать ДНК, извлеченную из целых листьев, т. е. в основном ядерную, то основной пик плотности будет соответствовать 1,689 (фиг. 24). ДНК, выделенная из тщательно очищенных хлоропластов, имеет основной пик плотности 1,697. [c.65]

Действительно, в хлоропластах локализовано 30—40% каталазы от всего количества фермента, обнаруженного в листьях, но роль ее в процессе фотосинтеза оставалась неясной, так как до самого последнего времени об участии или неучастии каталазы в выделении [c.174]

В связи с этим уместно вспомнить и о наблюдавшихся Мейером [32,33] масляных капельках в хлоропластах некоторых листьев и водорослей (см. главу 1П). Как уже упоминалось, Мейер считает эти капельки продуктами ассимиляции (которые на самом деле, может быть, лишь гранулы , недавно признанные нормальными составными частями большинства хлоропластов). Он не определял химический состав этих продуктов , но сравнивал их свойства (воз-гоняемость с водяным паром, растворимость в эфире, нерастворимость в воде, способность вызывать потемнение ляписа в щелочном растворе, запах и т. д.) со свойствами соединений, выделенных Рейнке, Куртиусом и Франценом. На основании своих наблюдений он заключил, что эти продукты ближе всего к свойствам гексенового альдегида. Он высказал мнение, что гексеновый альдегид является Еомцонентом продуктов ассимиляции. Однако количества гексенового альдегида найденные Куртиусом и Франценом, слишком малы, чтобы объяснить всю массу ассимилятов. [c.263]

В фрагментах хлоропластов, выделенных из листьев шпината и некоторых водорослей, ксантофиллы с эпоксидной группой - виолаксантин и неоксантин - были обнаружены только в частицах,обогащенных фотосистемой II ( Ogawa et al., 1968). Это поддерживает представление об участии кислородсодержащих каротиноидов в реакциях,связанных с выделением кислорода. [c.190]

Рядом опытов с хлоропластами,-выделенными из листьев шпината и пшеницы, было показано, что если освещать их сильным светом в течение 15 сек в отсутствие необходимых для фосфорилирования компонентов - АдФ, Ф , то они приобретают спбсоб-ность, будучи помещены затем в темноту в присутствии указанных соединений, синтезировать молекулы АТФ. Образование АТФ в процессе фотосинтеза сопряжено, как известно, с некоторыми звеньями в индуцированно1й светом потоке электронов. Существу )т две гипотезы, две концепции, по-разному трактующие это сопряжение [c.224]

Накопление С в хлоропластах внутри листа измеряли при помощи иеводного фра.кцио-инрования как оказалось, процесс накопления С характеризуется такой же задержкой, как и выделения кислорода интакт-ной тканью (рис. 7.2). Р1ыдукция практически не зависит от интенсивности освещения, одиако на нее сильно влияет температура. Следовательно, индукция связана с биохимическими реакциями [скорость которых обычно удваивается при каледом увеличении температуры на 10°С (Рю=2)] более тесно, чем с истинно фотохимическими процессами, независимыми от температуры (рш = 1) (рис. 7.3). Индукционный период уменьшается, если. проводить повторное освещение после сравнительно небольшого периода пребывания в темноте (см. рис. 7.1 и 7.9). Очевидно, освещение позволяет снять какое-то ограничение, которое не сразу восстанавливается в темноте. [c.169]

Для оценки эффективности фотосинтеза в изолированных хлоропластах разумнее всего сравнить ее с эффективностью фотосинтеза в той ткани, откуда были выделены эти оргаиел-лы. Эти данные приобретут наибольший смысл, когда все измерения будут проведены на исходной ткани растения (определение обмена СОг при помощи инфракрасного газоанализатора) и на препарате хлоропластов, выделенных из той же самой ткани (определение фиксации СОг или измерение выделения Ог при помощи кислородного электрода), при одинаковых освещении, температуре и концентрации СОг. Совершенно непрактично делать такие сравнения при абсолютно строгом режиме или ежедневно. Для общей оценки эффективности работы изолированных хлоропластов можно воспользоваться усредненными значениями интенсивности фотосинтеза в ткани. листа различных растений (табл. А.1). [c.544]

Для многих целей до сих пор предпочитают использовать шпинат. Это связано, во-первых, с. тем, что в этом растении практически отсутствуют фенольные соединения, которые обычно загрязняют получаемые препараты, и, во-вторых, с тем, что исследованию хлоропластов именно этого растения посвяш,ено. громадное число работ. Еще совсем недавно шпинат был единственным растением (за исключением, пожалуй, молодых листьев гороха), из которого удавалось получать действительно интактные и активные хлоропласты. Для некоторых целей очень удобными оказались растеиия гороха, хотя с каждым годом становится все яснее, что хлоропласты, выделенные из молодых побегов гороха, отличаются по проницаемости от хлоропластов, полученных из взрослых растений шпината. Аврои и др. очеиь широко использовали в своих исследованиях салат ио главным образом для изучения транспорта электронов и фотофосфорилироваиия. Приемы получения протопластов (разд. А.5) позволили выделить хорошие хлоропласты и из миогих других растений. [c.546]

Два замечания, касающиеся (З-лектинов они образуют комплексы с некоторыми гомополисахаридами или гетерополисахаридами, а в пределах последних — с гликозилированными фла-вонолами [48] они скорее локализованы в цитоплазматических мембранах, тогда как оболочка и ламеллы хлоропластов, по-ви-димому, лишены гликопротеинов и, следовательно, лектинов [54]. Поэтому их реактивность несомненна, но такая субклеточная локализация определенно приводит к уменьшению их содержания в суммарных белковых препаратах, выделенных из листьев. [c.258]

Пластохиноны содержатся в хлоропластах листа и связаны с процессами фотосинтеза. 2,3-Диметил-б-тетрапренил-1,4-бензохинон, пластохинон-4 (л =4), имеет такую же боковую цепь, что и менахинон-4 (витамин К2(20))- Доказано строение и осуществлен синтез натурального 2,3-диметил-6-нонапренил-1,4-бензохинона, пластохинона-9 п = 9) (571, имеющего ту же соланезиль-ную боковую цепь, что и менахинон-9 (витамин К2(45>) выделен и идентифицирован пластохинон-10 [58—60 ] с частично насыщенной изопреноидной боковой цепью, аналогичной убихинону-10. [c.233]

Диссертационная работа М. С. Цвета, наряду с изложением результатов исследования хлоропластов, хлороглобина и хлорофилла и подробным обсуждением литературного материала, содержала немало интересных мыслей и рассуждений, характеризующих М. С. Цвета как ученого с материалистическим мировоззрением. В своей диссертации М. С. Цвет, подробно рассматривая различные методы выделения веществ, уделял внимание и адсорбции. В одном из разделов он отмечал ...Различно окрашенные пояса отчетливо наблюдались мною при фильтрации через шведскую бумагу петролейно-эфирной вытяжки листьев [12]. Эти слова свидетельствовали о внимании молодого исследователя к адсорбционным явлениям, а полученные результаты были первым его шагом на пути к открытию хроматограф ии. Именно поэтому впоследствии М. С. Цвет в предисловии к своему основному труду [13] с полным правом писал о том, что зачаток хроматографического метода находится в моем русском сочинении от 1901 года . [c.13]

Выделена специфическая фруктозо-1,6-дифосфатаза, которая требует присутствия магния и наиболее активна при pH 8,5 при pH 7,0 эта фосфатаза неактивна. Второй фермент, выделенный из листьев шпината, имеет наибольшую активность при pH 7,0, не требует магния и, по-видимому, связан с хлоропластами. Неочищенный препарат этого фермента отщепляет остаток фосфорной кислоты, присоединенной к 1-му атому углерода, как у фруктозо-1,6- дифосфата, так и у седогептулозо-1,7-дифосфата. [c.135]

Цитохромы 6б и f локализованы в хлоропластах они могут играть определенную роль в фотосинтезе. Цитохром не выделен в очищенном состоянии. Цитохром экстрагирован из листьев бузины Sambu as niger) и петрушки. Он получен в высокоочищенном виде и обладает свойствами, подобными свойствам цитохрома с. [c.217]

Хлорофилл и флавиыы способны катализировать окислительно-восстановительные реакции на свету. Известно, что в суспензии хлоропластов или в зеленых коллоидных растворах из листьев растений происходит восстановление -бензохиноиа с одновременным выделением молекулярного кислорода. Есть данные, подтвержденные и нами [11], что в препаратах, неспособных окислять гидрохинон в темноте, на свету совершается стехиометриче-ская реакция [c.142]

Мертвые или раздробленные клетки, теряя способность к полному фотосинтезу, сохраняют все же слабую способность к выделению кислорода на свету (без соответствующего поглощения двуокиси углерода). Это отметили Габерландт [2] и Юарт [3], наблюдавшие, что изолированные хлоропласты (полученные при растирании листьев с водой) выделяют небольшое количество кислорода на свету. Подобные же наблюдения с порошками из высушенных листьев произвел в 1904 г. Молиш [9]. Вопрос оставался в прежнем положении, пока Молиш [22] вновь не вернулся к нему через 20 лет — в 1925 г. Он подтвердил выделение кислорода листьями, высушивавшимися в течение трех или четырех дней при 30—35 и иногда по нескольку недель хранившимися в эксикаторе. Некоторые из листьев выделяли кислород после нагревания до 84° в течение 5 час. Для получения кислорода сухие листья измельчались в порошок под водой и полученная масса освещалась без фильтрования. Листья, убитые замораживанием, также выделяли кислород на свету. [c.66]

Все эмпирически известное по поводу энзимов в клетках растений не имеет непосредственного отношения к этим гипотетическим катализаторам. Данные, имеющиеся в нашем распоряжении, касаются хорошо известных энзимов, вроде каталазы, карбоангидразы, фос-форилазы, амилазы, мальтазы и инвертазы, которые или вообще не имеют отношения к синтезу углеводов, или участвуют лишь в его заключительных стадиях (образование и разлоягение сахарозы и крахмала). О наличии энзимов, превращающих углеводы в зеленых листьях, кратко говорилось в главе П1. Здесь мы добавим немногие данные по другим энзималг, найденным в выделенном веществе хлоропластов [97, 98, 105]. [c.381]

Нейш [98] измерял активность каталазы в выделенном веществе хлоропластов и сравнивал ее с активностью растертых листьев в целом. Оказалось, что вся каталаза зеленых листьев сосредоточивается в хлоропластах (табл. 54). О другой стороны. Кроссинг [105] нашел каталазу и в хлоропластах и в цитоплазме. [c.381]

Вильштеттер и Штоль [92] рассчитали для листьев различных растений, с какой частотой (на ярком свету) в среднем каждая молекула хлорофилла восстанавливает молекулу СО2. Оказалось, что это так называемое ассимиляционное время составляет 10—30 сек для нормальных листьев сходные величины позже были найдены для водорослей. Для бледно-зеленых листьев золотистых разновидвостей это время составляет лишь 1—3 сек. Максимальные скорости выделения О2, которые наблюдались для реакций хлоропластов (шпината), лежат в тех же границах 150 мкмоль О2 (или 600 мкэкв) выделяются на 1 мг (или мкмоль) хлорофилла в 1 час, что соответствует ассимиляционному времени 24 сек. [c.586]

Таблица 15 Содержание минеральных элементов в хлоропластах листьев фасоли, выделенных в водную и неюдную среды

Бромацил в основном проникает в растения через корни. Благодаря своей относительно хорошей растворимости в воде он может, подобно другим хорошо растворимым корневым гербицидам, вымываться уже сравнительно небольшими количествами воды в область корней растений. Он тормозит, не действуя селективно, ассимиляцию двуокиси углерода (см. табл. 145) и этим препятствует фотосинтезу растений и выделению кислорода [282, 685, 693, 758]. В табл. 119 приведены значения Ьо (в моль/л) (см. стр. 235), определенные на хлоропластах листьев Brassi a sp., как мера торможения реакции Хилла [c.333]

Смотреть страницы где упоминается термин Хлоропласта выделение из листьев: [c.259] [c.279] [c.193] [c.122] [c.123] [c.93] [c.93] [c.252] [c.173] [c.282] [c.176] [c.38] [c.66] [c.67] [c.369] [c.153] [c.155] [c.168] [c.36] [c.46] [c.13]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология