Рибонуклеотиды

Задача 0-78. При обработке продуктов гидролиза 3,63 г рибонуклеотида, содержащего 19,28% азота по массе, избытком известковой воды выпало 1,55 г осадка. Установите структурную формулу рибонуклеотида и назовите его. [c.140]

Оказывается, новосинтезированные цепи ДНК всегда содержат на 5 -конце несколько рибонуклеотидов. Иными словами, сннтеэ ДНК начинается с синтеза РНК- РНК-затравку для синтеза ДНК образует специальный фермент, называемый ДНК-праймазой (от англ. праймер — затравка). Праймаза может быть отдельны. 1 ферментом, как у бактерий, илн входить в качестве субъединицы в ДНК-полимеразу (как у ДНК-полимеразы а животных). В любом случае праймаза — это фермент, отличный от РНК-полимераз, синтезирующих разнообразные клеточные РНК и тоже способных инициировать синтез новых полинуклеотидных цепей (см. гл. VII). Почему же в таком случае для инициации цепей ДНК используются рибонуклеотиды Возможное объяснение состоит в том, что в ходе эволюции прай.чазы произошли из РНК-полимераз. Но есть и другое, функциональное, объяснение. Поскольку требования инициа- [c.51]

Таким образом, нуклеиновые кислоты можно рассматривать как продукты конденсации монофосфорных эфиров нуклеозидов, называемых соответственно рибонуклеотидами или дезоксирибонуклеотидами (табл. 20). Поэтому нуклеиновые кислоты объединяют под общим названием .полинуклеотиды . [c.358]

Структуру повторяющегося фрагмента цепи можно определить по строению нуклеотидов, которые, как установлено, содержат сахар в форме фуранозного цикла (разд. 17.2). Так, структура рибонуклеотидов, производных аденина и цитозина, выглядит следующим образом [c.317]

Задача 0-78. При гидролизе любого рибонуклеотида образуется азотистое основание (цитозин, урацил, аденин или гуанин), Р-рибоза и фосфорная кислота [c.307]

РНКаза поджелудочной железы гидролизует фосфодиэфирные связи внутри молекулы одноцепочечной высокополимерной РНК. В результате образуется смесь олиго-, ди- и мононуклеотидов, которые могут быть отделены от фермента и субстрата — высокополимерной РНК — гель-хроматографией на колонке. Разделение рибонуклеотидов, различающихся по числу нуклеотидных звеньев, может быть проведено методом ионообменной хроматографии. [c.176]

Первые семь соединений — рибонуклеотиды, а последние четыре — дезоксирибонуклеотиды. Все соединения, образующие 3 -фосфаты, дают также 5 -фосфат, дифосфат и трифосфат (как это видно, например, из структурной формулы аденина, приведенной в тексте). Все 5 -монофосфаты способны к образованию дифосфатов и трифосфатов. [c.474]

Поскольку При гидролизе мононуклеотидов кислотами можно выделить гетероциклическое основание и фосфат моносахарида, ясно, что в нуклеотиде остаток фосфорной кислоты связан с углеводной частью молекулы. Таким образом, для природных рибонуклеотидов возможно существование трех изомеров 2 -фосфата (I), З -фосфата (П) и 5 -фосфата (HI). [c.215]

Аналогичный быстрый метод синтеза возможен также и для рибонуклеотидов, как показано на примере образования уридилил-(3 ->5 )-уридина. В этом случае как трихлорэтильная, так и силильная защитные группы могут быть одновременно удалены при растворении триэфира в растворе фторида тетрабутиламмония в тетрагидрофуране. [c.180]

Наконец, можно задать вопрос почему рибоза — единственный сахар, присутствующий в полинуклеотидах Нп один другой сахар не способен к столь эффективной реакции конденсации соответствующих нуклеотидов, а З -дезокси-нуклеотиды не полимеризуются. Видимо, и 2 -0Н, и З -ОН необходимы для протекания полимеризации. Причина этого заключается в образовании водородной связи между обеими группами, которые только в рибонуклеотидах находятся в ijti -положеиии, чю приводит к повышению кислотности R0—ОН-группы в 2 -положенпи. Еще один важный факт состоит в том, что конденсация полинуклеотидов очень специфична для 1уклеотидов, рибозные остатки которых имеют D-конфигурацию. Оргел показал это эксперимен-O Og тально. Если смесь L- и D-рибояуклеотидов добавить [c.188]

Рибонуклеотиды, в состав которых входит рибоза. Полимерные рпбонуклеотпды — это рибонуклеиновые кислоты (сокращенно РНК). В состав РНК входят следующие иуклео пды [c.349]

Таким образом, в состав нуклеотида входит остаток гуанина этот рибонуклеотид называется гуа-нозинфосфатом. Его структура [c.308]

Гидролизат РНК (с. 176) или фракцию рибонуклеотидов, полученную в результате гель-фильтрации (с. 176), разбавляют так, чтобы концентрация солей в нем была менее 0,02 М, доводят pH до 7,8 и осторожно наносят на колонку. Устанавливают скорость тока жидкости 0,2—0,5 мл/мин на 1 см поверхности геля. Колонку трижды промывают 2 мл 0,02 М забуференного раствора Na l, не содержащего мочевину. Затем вносят 5 мл стартового буфера и присоединяют колонку к системе для градиентной элюции (см. с. 104). В сосуд 2 наливают 250 мл стартового буфера, в сосуд 1 — 250 мл 0,3 М Na l. Собирают фракции по 5 мл и определяют в них оптическую плотность при 260 нм. Строят профиль элюции. [c.177]

Полагают, что этот же рибонуклеотид служит предшественником пиримидинового кольца тиамина, но конкретный путь биосинтеза неясен 1155а]. [c.170]

Близкую по функцион. назначению группу составляют интенсификаторы вкуса и запаха и вкусовые в-ва соли L-глутаминовой к-ты (усиливают мясной вкус в овощных блюдах и супах), 5 -рибонуклеотиды-соли гуаниловой и инозиновой к-т, в неск. раз эффективнее глутаматов. При добавлении их в бульон в кол-ве 50-200 мг/кг создается иллюзия вязкости и сытости. Получают хим. и микробиол. путем. [c.549]

При наличии субстратов РНК-полимераза в открытом комплексе осуществляет иншдиацию. Первый нуклеотид (обычно это аденозин- или гуанозинтрифосфат) входит в состав цепи целиком, а последующие присоединяются к группе З -ОН предыдущего нуклеотида с образованием фосфодиэфирной связи и освобождением пирофосфата (см. Нуклеиновые кис.юты). На стадии инициации образующаяся РНК связана с матрицей и ферментом непрочно и может отделиться от комплекса. В этом случае РНК-полимераза, не покидая промотора, снова инициирует РНК (такой синтез коротких рибонуклеотидов наз. абортивным). Стадия ини- [c.619]

Цепь РНК растет в направлении 5 - 3 по мере продвижения РНК-полимеразы по цепи ДНК в направленш от З -конца к 5 -кош . Средняя скорость роста цени РНК у бактерии Es heri hia oli (Е. oli) составляет 40-45 рибонуклеотидов в секунду. В процессе удлинения цепи РНК фермент движется по ДНК с непостоянной скоростью. В иек-рых участках матрицы происходят длительные задержки в его продвижении, т. наз. паузы (нек-рые стадии Т. показаны на рис.). [c.619]

Рибонуклеотидредуктазы 2/970 4/519 Рибонуклеотиды 1/1153 2/970 3/600, 601, 1090 4/1229, 1242. Си. также Аденозинфосфорные кислоты Рибосомные рибонуклеиновые кислоты 4/522, 519-521, 523 3/173, 175. Сн. также Рибосомы Рибосомы 4/519, 520-523, 1195, 1231-1236 1/472, 482, 559, 661, 1009 2/1322-1324 3/173, 175, 211, 588, [c.701]

Как было указано ранее, нуклеиновые кислоты делятся на дезоксирибонуклеиновые (ДНК), являюцщеся полимерами (а точнее продуктами поликонденсации) дезоксирибонуклеотидов, и рибонуклеиновые (РНК) — полимеры рибонуклеотидов. Строение, а также физико-химическая характеристика и биологическая функция ДНК и РНК различны, и поэтому эти вопросы будут рассматриваться отдельно для каждого вида полимера. [c.246]

В ряду рибонуклеотидов с целью полимеризации 2 - и З -фос-фаты нуклеозида были превращены в циклические фосфаты взаимодействием с 1 молем дифенилхлорфосфата. Второй моль 1ифенил-хлорфосфага вызывает полимеризацию в соответствии со схемой [c.114]

Интересные результаты дало использование пористых полимерных сорбентов (порапаков Q, R, порапака R, обработанного FFAP, хромосорба 101, полисорба-1) для разделения и идентификации изомерных нитрилов — С5 [200], а-аминокислот [201] в форме нитрильных производных, для определения ацетальдегида в ледяной уксусной кислоте [202], для изучения летучих продуктов пиролиза рибонуклеозидов, рибонуклеотидов и динуклеотидов [203], для определения газообразных и летучих продуктов пиролиза и термолиза целлюлозы и других углеводов [204], для изучения продуктов пиролиза циклопентадиеновых смол [205], продуктов лазерного пиролиза нефтей [2061, [c.137]

Химический энциклопедический словарь (1983) -- [ c.394 , c.395 ]

Молекулярная биология (1990) -- [ c.51 , c.163 ]

Химия углеводов (1967) -- [ c.395 ]

Биохимия (2004) -- [ c.174 ]

Теоретические основы биотехнологии (2003) -- [ c.0 ]

Большой энциклопедический словарь Химия изд.2 (1998) -- [ c.394 , c.395 ]

Биохимия растений (1966) -- [ c.48 , c.463 , c.468 , c.475 , c.478 , c.478 , c.481 ]

Основы биохимии Т 1,2,3 (1985) -- [ c.670 ]

Биохимия нуклеиновых кислот (1968) -- [ c.23 ]

Органическая химия 1974 (1974) -- [ c.368 ]

Органическая химия (1972) -- [ c.433 ]

Химия высокомолекулярных соединений Издание 2 (1966) -- [ c.444 ]

Биохимический справочник (1979) -- [ c.62 , c.76 ]

Органическая химия (1972) -- [ c.433 ]

Органическая химия Издание 2 (1976) -- [ c.432 ]

Органическая химия Издание 3 (1980) -- [ c.394 ]

Химия биологически активных природных соединений (1970) -- [ c.362 ]

Основы биохимии (1999) -- [ c.196 ]

Биологическая химия (2004) -- [ c.103 ]

Биохимия Т.3 Изд.2 (1985) -- [ c.34 , c.255 ]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология