Мезофилл хлоропласты

Ходж, Мак-Лин и Мерсер [170] на основании исследования тонких срезов хлоропластов кукурузы пришли к иным выводам. Они показали, что существуют два типа хлоропластов кукурузы в клетках мезофилла хлоропласты содержат многочисленные, [c.14]

Функциональные изменения в клетках мезофилла. Хлоропласты большинства растений способны перемещаться в клетке в зависимости от интенсивности и направления осве- [c.101]

КЛЕТКА МЕЗОФИЛЛА ХЛОРОПЛАСТ [c.354]

Влияние уровня азотного питания растений сахарной свеклы на размеры клеток мезофилла листьев и число хлоропластов в этих клетках [c.79]

Организация хлоропласта в сильной степени зависит от условий освещения - интенсивности, спектрального состава света.Так, в опытах с листьями кукурузы, выросшей при полном естественном освещении, хлоропласты мезофилла имели типичную гранулярную [c.110]

У С4-растений листья имеют характерную особенность строения вокруг каждого проводящего пучка у них расположены два ряда клеток. У клеток внутреннего кольца — обкладки проводящего пучка — хлоропласты по своей форме отличаются от хлоропластов клеток мезофилла [c.275]

Итогом С4-ПУТИ является транспорт диоксида углерода и водорода из клеток мезофилла в хлоропласты клеток обкладки проводящего пучка с использованием двух высокоэнергетических фосфатных связей АТФ. Поскольку для обеспечения транспорта требуется энергия АТФ, работу данного механизма вполне можно сравнить с механизмом работы насоса. [c.277]

Хлоропласты клеток мезофилла и клеток обкладки проводящего пучка [c.277]

Таблица 7.5. Различия между хлоропластами клеток мезофилла и клеток обкладки проводящего пучка у С4-растений

Хлоропласты клеток мезофилла [c.278]

Хлоропласты клеток мезофилла участвуют в световых реакциях, хлоропласты клеток обкладки проводящих пучков — в темновых. [c.341]

Рис. 7-45. Сравнение анатомического строения листьев у Сз-растений и Сд-растений. В обоих случаях клетки, хлоропласты которых осуществляют нормальный цикл фиксации углерода, вьщелены цветом. В Сд-растениях клетки мезофилла специализированы для активной транспортировки СО2, а не для фиксации углерода именно эти клетки создают высокое отнощение С02 02 в клетках обкладки проводящего пучка. Только в )тих клетках у таких растений происходит цикл фиксации углерода (см. рис. 7-44). По проводящим пучкам образовавшаяся в листе сахароза поступает во все

Рис. 18.4. Хлоропласт из клетки мезофилла листа [1332].

Пируват, образующийся в клетках обкладки, в основном возвращается в клетки мезофилла и фосфорилируется при участии пируват, фосфат—дикиназы. Этот необычный фермент [уравнение (11-22)] расщепляет АТР на АМР и РР, который в свою очередь расщепляется до Pi. В результате на возвращение каждой молекулы пирувата в цикл приходится затрачивать энергию двух выоокоэнергетических связей. По этой причине считают, что циклическое фотофосфорилирование играет более важную роль в хлоропластах клеток мезофилла, чем в клетках обкладки. [c.59]

Древесная зелень отличается от остальной биомассы дерева наличием большого числа клеток, содержащих хлоропласты, главным образом, клеток палисадной и губчатой тканей мезофилла листа и в меньших количествах других зеленых тканей. Обычно хлоропласты окрашены в зеленый цвет, и именно их присутствию зелень обязана своим названием. Они содержат фотосиитетичесие пигменты двух классов - хлорофиллы и каротиноиды, поглощающие свет разных длин волн. Хлорофиллы относятся к зеленым пигментам и поглощают свет в синей и красной областях видимой части спектра при длинах волн соответственно около 450 нм и 650...700 нм. Каротиноиды - желтые и оранжевые пигменты, поглощающие свет в области 400...500 нм. [c.531]

Табенцким (1959) было показано, что под влиянием усиленного азотного питания увеличиваются не только размеры клеток мезофилла листьев сахарной свеклы, но и число хлоропластов в них (табл. 5). Повышение влажности почвы тоже благоприятно сказывается на числе [c.78]

Вторая отличительная особенность этих растений — морфологическая все растения типа С-4 обладают так называемым кгап2 -типом анатомии листьев (рис. 34). Сосудистые пучки в листьях окружены 1) внутренним пучковым слоем клетек (обкладкой), который очень богат специализированными хлоро-пластами, и 2) наружным слоем из клеток мезофилла, менее богатых хлоропластами. Недавно было установлено, что это характерное анатомическое строение листа служит для пространственного разделения (компартментализации) биохимических событий. [c.107]

Гранулярные и ламеллярные хлоропласты встречаются и у одних и тех же растений, но в разных тканях. Так, например, у кукурузы хлоропласты в листьях мезофилла hivisiot типично гранулярное строение, а в паренхимных клетках оокладки проводящих пучков - ламеллярное ( Hodge et al., 1955 Тагеева и др.,1962 Осипова, Ашур, 1965). [c.99]

В результате окислительного дскарбоксилирования этих кислот выделяется углекислый газ, который вовлекается в хлоропластах паренхимы в цикл Кальвина, а ооразущаяся пировиноградная кислота диффундирует обратно в клетки мезофилла. [c.265]

Карнаухов В.Н. Особенности фотосистем хлоропластов клеток мезофилла и паренхимных обкладок проводящих пучков листьев однодольных и двудольных растений. ДАН СССР, I97I, т.197, I 2, стр.480-483. [c.281]

Интересно отметить, что жидкокристаллическую структуру имеют и некоторые образо1вания в клетках растений. В качестве примера укажем на структуру хлоропластов—образований, связанных с реакцией фотосинтеза. Хлоропласты мезофилла кукурузы имеют пластинчатую структуру, как и смектические жидкие кристаллы. Помимо этого в хлоропластах имеются резко очерченные участки (граны). В гранах пластинки упакованы более плотно и регулярно, создавая слоистую структуру с периодом идентичности 136 А. Эта структура очень похожа на структуру миелиновой оболочки нерва. [c.117]

МЕЗОФИЛЛ (СМ. ТАКЖЕ РИС. 7.3. И 7.4). Эта выполняющая ткань располагается между двумя слоями эпидермиса листа (рис. 6.1) и состоит из модифицированных паренхимных клеток, осуществляющих фотосинтез. Фотосинтетическую паренхиму иногда называют хлоренхимой. Цитоплазма клеток хлоренхимы содержит большое число хлоропластов, в которых и протекают реакции фотосинтеза. У двудольных растений мезофилл состоит из двух четко различающихся слоев верхний слой составляет палисадная паренхима, клетки которой имеют столбчатую форму, а нижний — губчатая паренхима с клетками неправильной формы, содержащими меньше хлоропластов. Фотосинтез вдет главным образом в палисадной паренхиме, а воздухоносные межклетники губчатой паренхимы обеспечивают интенсивный газообмен. [c.224]

У эукариот фотосинтез протекает в органеллах, называемых хлоропластами. Их число может варьировать от одного (как у одноклеточной водоросли hlorella) до примерно ста (как в клетках палисадной паренхимы). Диаметр хлоропластов составляет 3—10 мкм (в среднем около 5 мкм), поэтому они хорошо видны в световой микроскоп (рис. 5.2 и 7.3). Хлоропласты окружены двойной мембраной, которая образует оболочку хлоропласта. Они всегда содержат хлорофилл и другае фотосинтетические пигменты, расположенные на системе мембран. Мембраны погружены в основное вешество, или строму. Детали строения хлоропластов можно выявить при помоши электронного микроскопа. На электронной микрофотографии низкого разрешения (рис. 5.11, 5.13 и 7.4) показан типичный вид хлоропластов в клетке мезофилла. На рис. 7.6 и 7.8 показаны электронные микрофотографии хлоропластов, а на рис. 7.7 схема строения хлоропласта и его мембранных систем. На мембранах протекают световые реакции фотосинтеза фазд. [c.257]

Рис. 7.21. Кранц-анатомия , характерная для С -рас-тений. А. Срез листа африканского проса. Хорошо видны различия между хлоропластами клеток обкладки прово-дящих пучков и хлоропластами клеток мезофилла. В клетках обкладки проводяш,их пучков видны отделы1ые рудиментарные граны, тогда как в клетках мезофилла они многочисленны и отчетливо видны. Ив тех, и в других клетках видны зерна крахмала. (Увеличение х4(ХЮ.) Б. Электронная микрофотография листа кукурузы. Видно наличие двух типов хлоропластов в клетках обкладки проводящего пучка и клетках мезофилла (х9900).

Пройдя через плазмодесмы в клеточных стенках, малат попадает в хлоропласты клеток обкладки проводящего пучка, где он, соединяясь с диоксидом углерода, превращается в пируват (ЗС-кислоту). При этом выделяется водород, который используется для восстановления НАДФ (рис. 7.22). Обратите внимание, что в клетки мезофилла диоксид углерода и водород поступают извне, а затем в клетках обкладки проводящего пучка они вновь удаляются. Суммарным эффектом этих процессов является перемещение диоксида углерода и водорода из клеток мезофилла в клетки обкладки проводящего пучка. [c.277]

Хлоропласты в клетках мезофилла представляют собой высокоспециализированные органеллы, в которых протекают световые реакции фотосинтеза, а в хлоропластах клеток обкладки проводящего пучка протекают темновые реакции Сз-фо-тосинтеза. В табл. 7.5 суммированы наиболее важные различия между хлоропластами мезофилла и хлоропластами клеток обкладки проводящего пучка, которые можно видеть на рис. 7.21. [c.277]

Паренхимные клетки мезофилла содержат специализированные органеллы — хлоропласты, — осуществляющие фотосинтез. В хлоропластах находится хлорофилл. У двудольных клетки палисадной паренхимы мезофшша, содержащие больше хлоропластов, располагаются вблизи верхней поверхности листа, что обеспечивает максимальное улавливание света. Сравнительно большая длина этих клеток увеличивает возможности поглощения света. Хлоропласты находятся по периферии клеток палисадной паренхимы. Это позволяет им поглощать максимально возможное количество света и облегчает газообмен. Хлоропласты обладают фототаксисом, т. е. они перемещаются в клетке по направлению к свету. У двудольных губчатая паренхима мезофилла имеет обширные межклетники для эффективного газообмена. [c.341]

В прошлом много внимания уделялось первому явлению, так как во время засухи часто наблюдается тесный параллелизм между транспирацией и фотосинтезом (см., например, [399П, и это заставляло считать, что закрывание устьиц должно влиять на оба процесса более или менее одинаково. Типичные данные такого рода приведены на фиг. 86. Однако, хотя при фотосинтезе поступающая в листья СО2 встречает на своем пути те же внешние и внутренние сопротивления диффузии, которые встречает водяной пар на траиспирацион-ном пути (необходимо только внести поправку на разность между коэффициентами диффузии в воздухе для СО2 и водяного пара), в этом случае приходится учитывать еще и дополнительные сопротивления, связанные с движением СО2 в жидкой фазе от клеточных стенок мезофилла до хлоропластов, где происходит фотосинтез [60, 234, 543]. [c.309]

Рис. 4.19. Электронные микрофотографии хлоропластов в клетке мезофилл (XI5 500 слева) и в клетке обкладки сосудистого пучка (XI4 500 справа у кукурузы, растения С4-типа. (А. Y. Kir hanskl. 1975. Amer. J. Botany, 62, 695-705.) ,

ТОМИИ (с кранц-анатомией ). Фотодыхание включает образование гликолата и его последующий распад в присутствии кислорода. В С4-растениях конечная фиксация СОг в цикле Кальвина — Бенсона протекает в клетках обкладки сосудистого пучка, плотно прижатых к соседним клеткам. Считается, что в такой компактной ткани, без межклетников, кислорода очень мало и что именно этот крайне низкий уровень кислорода лимитирует фотодыхание. Ясно также, что при отсутствии межклетников вокруг клеток обкладки затруднен и доступ СОг к хлоропластам, так что если бы эти клетки функционировали обособленно, они не могли бы эффективно осуществлять фотосинтез. Возможно, что С4-клетки рыхлого мезофилла играют роль коллекторов СОг и концентрируют ее с помощью ФЕП-карбоксилазы в виде органических С4-КИСЛ0Т. Фермент ФЕП-карбоксилаза действительно способен выполнять эту задачу очень эффективно он может фиксировать СОг, превращая ее в органические кислоты, при гораздо более низких ее концентрациях, чем это делает КиВР-карбоксилаза. Образовавщиеся таким путем органические [c.134]

Сопоставление этих данных с данными экспериментов на фасоли [6491 позволяет считать, что вызываемые световыми воздействиями колебания биопотенциалов у высших растений имеют сложную комплексную природу и на клеточном уровне могут быть представлены как типичными ПД надпорогового характера, так и градуальными фотоэлектрическими реакциями. При зтом ПД локализованы на плазматических мембранах клеток, а запускаемые светом подпороговые электрические ответы, по крайней мере на начальных этапах своего развития, протекают в хлоропластах, ПД возникают только в тех случаях, когда фотовозбуждение пигментов способно обеспечить пороговую деполяризацию возбудимых плазматических мембран. В зависимости от состояния межклеточных связей эти ПД могут быть распространяющимися или местными. Подтверждением этого предположения могут служить данные о возникновении подобных ПД местных спайков, возникающих по достижении критического уровня деполяризации в ходе медленных светоиндуцированных изменений Е в мезофилле листьев томата [349], [c.112]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология