Хлоропласты электронная микрофотография

Рис. 2-21. Электронная микрофотография метки листа кукурузы. Заметьте, что по своим размерам хлоропласты значительно превышают митохондрии, однако число их меньше числа митохондрий. По мере увеличения возраста клетки вакуоль обычно становится крупнее. Клеточная стенка относительно толстая и жесткая.

Фиг. 91. Структура хлоропласта (электронные микрофотографии).

Рис. 4. Электронная микрофотография хлоропласта кукурузы (X 30 ООО).

Рис. 1.17. Структура хлоропластов, видимая на электронных микрофотографиях тонких срезов эукариотических клеток

Рис. 14.11. Электронная микрофотография среза хлоропласта

Рис. 109. Участок хлоропласта, вид с поверхности (электронная микрофотография).

На рисунке 4 представлена электронная микрофотография хлоропласта кукурузы при увеличении в 30 000, на рисунке 5— хлоропласт кукурузы при увеличении в 270 000. На обоих рисунках видна пластинчатая структура хлоропластов. Исследования показали, что пластинки хлоропластов имеют форму дисков, которые соединены краями так, что они оказываются пустотелыми и образуют своеобразные мембраны. Элементарная мембрана имеет толщину 65—70А. [c.33]

Рис. 7.6. Электронная микрофотография хлоропласта (х15 800).

Компартментализация клетки значительно менее выражена, чем у эукариотических клеток (рис. 2.4). ДНК не окружена ядерной мембраной, а органеллы типа митохондрий и хлоропластов отсутствуют. Область ядра, видимая на электронной микрофотографии ультратонко-го среза клетки в виде сетчатой структуры из тонких нитей, непосред ственно граничит с заполненной рибосомами цитоплазмой (рис. 2.5). У многих бактерий впячивания плазматической мембраны образуют определенные структуры во внутреннем пространстве протопласта (внутриклеточные мембраны). С плазматической мембраной связаны процессы дыхания или фотосинтеза, доставляющие клетке энергию, т.е. функции, за которые в эукариотических клетках ответственны мембраны митохондрий и хлоропластов. [c.27]

Таким образом, окончательное доказательство положения, согласно которому хлорофилл действительно локализуется в тилакоидах хлоропластов, пока что отсутствует, и электронный микроскоп до поры до времени также не может нам здесь помочь. Ведь электронные микрофотографии лишены всяких красок кроме того, электронный микроскоп не позволяет, не считая особых случаев, идентифицировать отдельные молекулы [c.250]

Электронные микрофотографии хлоропластов различных растений показывают, что хлоропласт содержит 20—30 параллельных липидных слоев, отделенных от водно-белковых слоев мопомолекулярными пленками хлорофилла, причем гидрофильная порфириновая головка каждой молекулы хлорофилла входит в водно-белковый комплекс, а липофильный фи-тольный хвост — в липидный слой. Каждый липидный слой имеет толщину 50 А, разделяющие же их водно-белковые слои — около 250 А. [c.302]

По величине и многим другим особенностям рибосомы бактерий сходны с рибосомами митохондрий и хлоропластов. Бактериальная клетка содержит примерно от 5000 до 50000 рибосом число их тбм больше, чем быстрее растет клетка. Во время активного синтеза белков на электронных микрофотографиях тонких срезов клетки можно видеть правильные цепочки рибосом. Это рибосомы, связанные наподобие бус на цепи мРНК их называют полирибосомами или полисомами. [c.22]

Рис. 70. Электронная микрофотография среза хлоропласта зеленой водоросли. Увеличение X 33 600 (с любезного разрешения Людвика).

Рис. 7.8. Электронная микрофотография голого хлоропласта (с удаленной наружной оболочкой), полученная с помощью сканирующего электронного микроскопа. Вид сверху. Ламеллы и граны показаны в трехмерном изображении. Обратите внимание, что ламеллы плоские, как листы бумаги, и соединяют между собой граны. Для приготовления препарата использовалась реплика с напылением.

Рис. 23-6. А. Электронная микрофотография хлоропласта из листа пшината. Б. Схематическое изображение его структуры. В. Электронная микрофотография внутренней поверхности тилакоидной мембраны (препарат получен методом замораживания-скалывания). Частицы пирамидальной формы представляют собой, как полагают, молекулы ферментов, участвующих в фотосинтезе.

Рт. 7.23. Электронная микрофотография хлоропластов после выделения их в гипотоническом растворе. Оболочки и строма утрачены. х13 485. [c.287]

Рис. 1-19. Электронная микрофотография хлоропласта клетки мха. Видна разветвленная система внутренних мембран Уплощенные мембранные мешочки, содержащие хлорофилл, организованы в стопки, или граны (Г). Этот хлоропласт содержит также большие скопления крахмала (К) (С

Рис. 7-39. Электронные микрофотографии хлоропластов. А. Клетка из листа пщеницы, в которой тонкий слой цитоплазмы, содержащей хлоропласты, окружает большую вакуоль. Б. Тонкий срез одного хлоропласта видны зерна крахмала и жировые капельки, накапливающиеся в строме в результате биосинтеза. В. Граны при большом увеличении видна тилакоидная мембрана, образующая стопки (С любезного разрешения К

РИС.1-4. A. Электронная микрофотография ультратонкого среза молодой эпидермальной клетки подсолнечника. Ткань фиксировали и окрашивали уранилацетатом и цитратом свинца. Ясно видны ядро, митохондрии, хлоропласты, тельце Гольджи (диктиосо-ма, слева около ядра), эндоплазматический ретикулум, клеточная стенка, плазмадесмы и кутикула (наверху справа в виде тонкого темного слоя). (С любезного разрешения Ногпег Н. Т.) [c.30]

Фотосинтез происходит в органоидах растительных клеток, именуемых хлоропластами. На рис. 14.11 приведена электронная микрофотография среза хлоропласта из листа кукурузы. Диаметр хлоропласта 3 — 10 мкм, толщина 1,5—3 мкм. Хлоропласт заполняет почти всю клетку зеленой водоросли. На рис. 14.11 видны примерно параллельные ламеллы, погруженные в более светлую строму. У высших растений ламеллы образуют стопки, называемые гранами. Ламеллы представляют собой сечения уплощенных замкнутых мешочков — тилакоидов имеющих диаметр около 500 нм. Их число в хлоропласте порядка 1000. Модель структуры хлоропласта показана на рис. 14.12. Процессы фотосинтеза локализованы в мембранах тилакоидов, в которых содержатся активные пигменты, прежде всего хлорофилл. Фрагменты тилакоидов реализуют реакции фотоиндуцированного транспорта электронов и сопряженное с ним фотофосфорилирование. В мембранах находятся светособирающие и электроннотранспортные комплексы, и АТФ-синтетазы хлоропластов. [c.458]

Компартментализация прокариотической клетки значительно менее выражена, чем у эукариотических клеток. ДНК не окружена ядерной мембраной, а органеллы типа митохондрий и хлоропластов отсутствуют. Область ядра, видимая на электронной микрофотографии ультратон-кого среза клетки в виде сетчатой структуры из тонких нитей, непосредственно граничит с заполненной рибосомами цитоплазмой. У многих бактерий впячивания плазматической мембраны образуют определенные структуры во внутреннем пространстве протопласта (внутриклеточные мембраны). С плазматической мембраной связаны процессы [c.10]

Рас. 19-29. Электронная микрофотография участка молодого зеленеющего хлоропласта из проростка овса. Происходит реорганизация мембранной системы этио-шгаста в ней уже есть хлорофилл, образуются граны. (С любезного разрешения В. Gunning.) [c.183]

Липиды играют важную роль в построении и функционировании клеток. На этой электронной микрофотографии показана цитоплазма фотосинтезирующей водоросли Еидкпа. Отчетливо видны липидсодержащие мембраны хлоропласта (наверху справа) и нескольких митохондрий (вокруг хлоропласта и внизу слева). [c.326]

Рис. 7.21. Кранц-анатомия , характерная для С -рас-тений. А. Срез листа африканского проса. Хорошо видны различия между хлоропластами клеток обкладки прово-дящих пучков и хлоропластами клеток мезофилла. В клетках обкладки проводяш,их пучков видны отделы1ые рудиментарные граны, тогда как в клетках мезофилла они многочисленны и отчетливо видны. Ив тех, и в других клетках видны зерна крахмала. (Увеличение х4(ХЮ.) Б. Электронная микрофотография листа кукурузы. Видно наличие двух типов хлоропластов в клетках обкладки проводящего пучка и клетках мезофилла (х9900).

Рибосомы состоят из двух субчастиц у бактерий это субчастицы 30S и 50S (рис. 2.19), образующие 708-рибосомы. По величине и многим другим особенностям рибосомы бактерий сходны с рибосомами митохондрий и хлоропластов. Бактериальная клетка содержит примерно от 50СЮ до 50000 рибосом число их тем больше, чем быстрее растет клетка. Во время активного синтеза белков на электронных микрофотографиях тонких срезов клетки можно видеть правильные цепочки рибосом. Это рибосомы, связанные наподобие бус на цепи мРНК их называют полирибосомами или полисомами. [c.43]

В гл. I читатель познакомится со структурой хлоропластов, что позволит ему понять излагаемый далее материал. Мы приводим здесь ряд интересных электронных микрофотографий однако следует сказать, что нам еще далеко не ясна связь между структурой, которая на них изображена, и отдельными фотосин-тетическими процессами. Некоторые исследователи утверждают, что на таких электронных микрофотографиях можно разглядеть фотосинтетические единицы (см. гл. I и IX), но это утверждение спорно. [c.9]

На электронных микрофотографиях тонких срезов хлоропластов у всех видов растений видны более или менее параллельные ламеллы, погруженные в строму. У большинства высших растений эти ламеллы плотно упакованы в отдельные стопки, или граны. Каждая грана выглядит, как стопка дисков. Это так называемые тилакоиды (фото П1). На препаратах разрушенных хлоропластов можно иногда видеть, что тилакоиды сдвинуты в сторону, напоминая рассыпавшуюся стопку монет (фото 1,Г). Существуют три разных взгляда на структуру хлоропластов. Согласно первому, развиваемому в основном в работах Фрей-Висслинга и его школы [109], каждый отдельный диск граны состоит из двух ламелл, соединенных по краям, т. е. представляет собой как бы уплощенный пузырек или замкнутый мешочек. Каждый диск связан с дисками других гран двумя очень тонкими ламеллами, тянущимися через строму. Эта модель, показанная на фиг. 1, построена на основании электронных микрофотографий (одна из них приведена на фото II). О том, что мешоЧки замкнуты, свидетельствует их набухание в гипотонических растворах сахарозы [108]. Предполагают, что весь хлорофилл сосредоточен в гранах. Это следует из того, что только граны обнаруживают флуоресценцию [109] и только в них удается [c.13]

У большинства водорослей, по-видимому, нет гран, но ламеллы собраны у них в небольшие группы (по 2—8 ламелл в каждой). Исключение в этом смысле составляют красные водоросли, у которых все ламеллы расположены поодиночке [117]. Хлоропласты водорослей, как и хлоропласты высших растений (фото X), окружены тонкой двойной мембраной. У сине-зеленых водорослей ламеллы обычно находятся не в хлоропласте, а тянутся вдоль клеточной стенки или поперек клетки [14, 223]. При делении клетки образующаяся перегородка делит их пополам [223]. На электронной микрофотографии сине-зеленой водоросли Зупескососсиз сейогит Кальвин и Линч [54] наблюдали круглые частицы диаметром около 220 нм. Такой же величины частицы были видны и в осадке, полученном в результате Центрифугирования при 36 000 В этой фракции обнаруживался весь хлорофилл и все каротиноиды. Авторы полагают, что частицы, о которых идет речь, аналогичны гранам. [c.16]

У эукариот фотосинтез протекает в органеллах, называемых хлоропластами. Их число может варьировать от одного (как у одноклеточной водоросли hlorella) до примерно ста (как в клетках палисадной паренхимы). Диаметр хлоропластов составляет 3—10 мкм (в среднем около 5 мкм), поэтому они хорошо видны в световой микроскоп (рис. 5.2 и 7.3). Хлоропласты окружены двойной мембраной, которая образует оболочку хлоропласта. Они всегда содержат хлорофилл и другае фотосинтетические пигменты, расположенные на системе мембран. Мембраны погружены в основное вешество, или строму. Детали строения хлоропластов можно выявить при помоши электронного микроскопа. На электронной микрофотографии низкого разрешения (рис. 5.11, 5.13 и 7.4) показан типичный вид хлоропластов в клетке мезофилла. На рис. 7.6 и 7.8 показаны электронные микрофотографии хлоропластов, а на рис. 7.7 схема строения хлоропласта и его мембранных систем. На мембранах протекают световые реакции фотосинтеза фазд. [c.257]

НИЗКИЙ оптический дихроизм хлоропластов может объясняться именно этой недостаточно строгой ориентацией. Парк и др. [251—253] определили молекулярный состав квантосом, исследуя разрушенные хлоропласты шпината. Для зеленых ламеллярных структур диаметром от 2000 до 80 нм, полученных центрифугированием при постепенно возрастающих скоростях, отношение хлорофилла к азоту было довольно постоянным. Крупные структуры были, по-видимому, лишены гран, тогда как фракция более мелких частиц содержала граны. Эти результаты служат доказательством равномерного распределения хлорофилла по всей ламеллярной структуре хлоропласта. Было высказано предположение, что обычно наблюдаемая флуоресценция одних только гран объясняется более высоким содержанием ламеллярных структур. В квантосомах были обнаружены небольшие количества трех переходных металлов — железа, марганца и меди, причём концентрация марганца оказалась наиболее низкой. Марганец необходим для выделения кислорода при фотосинтезе. Учитывая это. Парк и Пон [253] рассчитали молекулярный вес наименьшей единицы в ламелле, которая, очевидно, еще могла бы осуществлять фотосинтез, т. е. частицы, соответствующей одному атому марганца. Он оказался равным 9,6-10 . Позже [251] расчеты были проведены с учетом данных об объеме квантосом (полученных путем измерений на электронных микрофотографиях), а также результатов определений эффективной плавучей плотности разрушенных ламеллярных структур в ультрацентрифуге. Было обнаружено, что молекулярный вес квантосом равен 2-10 , что соответствует двум атомам марганца. Данные о молекулярном составе квантосом представлены в табл. 1. Мембрана толщиной 10 нм содержит 50% липида и 50% белка. Следовательно, с учетом разницы в плотности (1,0 1,4) можно считать, что на долю липида приходится около 6,5 нм толщины мембраны, а это согласуется с представлением о существовании двойного липидного слоя. [c.35]

Фото 15. Электронная микрофотография нопоречного среза хлоропласта (спорофит [c.636]

Что касается локализации молекул хлорофилла в хлоропластах, то прямого ответа на этот вопрос электронный микроскоп дать не может, так как при фиксации хлоропластов осмиевой кислотой и обезвоживании их спиртом хлорофилл вымывается. Локализация хлорофилла в тилаковдах гран и стро . ы доказана косвенным методом по восстановлению хлоропластами на свету взотяокисло-го серебра до металлического серебра (реакция Молиша), осадок которого на этих структурах обнаружен на электронных микрофотографиях (Рабинович, 1959, стр.626). Во всех предлагаемых схемах [c.99]

Рис. 4-22. Электронная микрофотография тилакоидной мембраны хлоропластов клетки растений, полученная по методу замораживания-скалывания. Тилакоидные мембраны, осуществляющие фотосинтез, уложены в виде множества слоев. Плоскость скола переходит с одного слоя на другой и проходит через середину каждого липидного бислоя. Внутримембранные белки, которые содержатся в значительном количестве внутри двойного слоя, обнажаются и после натенения выявляются в виде вну гримембранных частиц в )той платиновой реплике. Самой крупной частицей, выявляемой на мембране, является комплекс из множества белков, образующих фотосистему II. (С любезного разрещения Ь. Р. 81аеЬеИп.)

Пигменты хлоропластов хлорофиллы, цитохромы и каротиноиды в природном состоянии, очевидно, не являются свободными, но связаны с протеинами и липопротеинами. Фрей-Вислинг и Штейнман (1957) установили, что па хороших электронных микрофотографиях ламеллы могут рассматриваться как состоящие из сферических частиц около 65 А в диаметре и что эти частицы представляют собой макромолекулы протеинов и [c.308]

Рис. 20-36. Электронная микрофотография двух форм пластид в проростках овса. А. Этиопласт из проростка, выращенного в темноте. Кристаллоподобная структура, образованная внутренними мембранами, содержит протохлорофилл. Б. После освещения из этионласта развивается хлоропласт. Показана часть молодого зеленеющего хлоропласта. Происходит реорганизация мембранной системы этионласта в ней уже есть

Что касается роли хлоропластов в синтезе вирусов, то на этот счет существуют противоположные мнения. Электронные микрофотографии показывают, что при инфицировании растения некоторыми вирусами наблюдается возникновение новых разнообразных структур неизвестной природы (так называемые ланшинки в случае ВТМ) [336]. [c.250]

Рис. 7-38. Хлоропласты содержат три мембраны - наружную, внутреннюю и тилакоидную, которые делят органеллу на три внутренних компартмента межмембранное пространство, строму и тилакоидное пространство. В тилакоидной мембране находятся все энергетические системы хлоропласта На электронной микрофотографии эти мембраны выглядят разбитыми на отдельные фрагменты, имеющие вид уплощенных пузырьков (см. рис. 7-39), но в хлоропласте они. вероятно, соединены в одну мембрану, образуюгцую многочисленные складки. Как видно из

Митохондрии и хлоропласты никогда не возникают de novo, они всегда образуются путем деления уже сушествующих органелл. Как показывают наблюдения над живыми клетками, митохондрии не только делятся, но могут и сливаться друг с другом. Однако в среднем каждая органелла должна удвоить свою массу и затем разделиться пополам один раз за одну клеточную генерацию. Электронные микрофотографии дают основание полагать, что деление митохондрий начинается с образования кольцевой бороздки на внутренней мембране, подобно тому как это происходит при делении многих бактериальных клеток (рис. 7-65 и 7-66) таким образом, деление митохондрий - это, по-видимому, контролируемый процесс, а не случайное расшепление надвое. [c.486]

Рис. 20-38. Электронная микрофотография клеток в молодом листе табака. В этих сильно вакуолизированных клетках цитоплазма, в которой много хлоропластов, располагается на периферии в виде тонкого пристеночного слоя. (С любезного разрешения J. Burgess.)

Справочник химика 21

Химия и химическая технология