Определение концентрации сахара в раствора

При измерениях можно использовать рефрактометр, предназначенный ДЛЯ определения концентрации водных растворов сахара [c.321]

ОПРЕДЕЛЕНИЕ КОНЦЕНТРАЦИИ САХАРА В РАСТВОРЕ [c.368]

Применяют поляриметрию для определения концентрации растворов оптически активных веществ, в основном углеводов — сахара, глюкозы. Для идентификации веществ используют удельное вращение, которое является постоянной (константой) для данного вещества. По удельному вращению рассчитывают концентрацию вещества с [c.803]

Определение концентрации сахара в растворе. .......................... [c.384]

Ход определения. Производят измерение показателя преломления исследуемого раствора. По найденному значению с помощью графика, построенного по стандартным растворам, определяют концентрацию сахара в исследуемом растворе. [c.122]

Работа 11. Определение концентрации сахара в растворе [c.121]

Сахарометры применяются для определения концентрации сахара (в весовых процентах) в растворах. Изготовляются с термометрами или без термометров по ОСТ 40012. [c.153]

Если известно удельное вращение вещества [а], то при помощи поляриметра можно определить неизвестную концентрацию раствора. Это находит практическое применение, например, при определении концентрации сахаров. [c.98]

Определение концентрации сахара в растворе [c.356]

Показатель преломления широко используется для идентификации жидких веществ и проверки их чистоты, при анализе двойных жидких растворов, для которых известна зависимость показателя преломления от состава раствора, при определении концентрации сахара в водных растворах и во многих других случаях. [c.88]

Для измерения показателя преломления может быть также использован рефрактометр для определения концентрации сахара (рис. 52), который имеет шкалу показателей преломления и процентного содержания сахара в растворе. Очевидно, пользуясь первой шкалой, можно определять показатели преломления и других веществ, если они не выходят за пределы шкалы рефрактометра. [c.183]

При измерениях может быть использован рефрактометр, предназначенный для определения концентрации водных растворов сахара. Этот рефрактометр отличается тем, что измерительные призмы неподвижны, а граница светотени отбрасывается зеркалом на шкалу показателей преломления и может по ней перемещаться. При измерении совмещают указатель (три черточки или крест) с границей светотени и отсчитывают показатель преломления. На шкале рефрактометра нанесены рядом с показателями преломления весовые проценты сахара. [c.298]

Процесс выращивания дрожжей отличается от спиртового брожения тем, что он протекает в среде, обогащенной растворенным кислородом. Для этой цели растворы сахаров с концентрацией от 0,7 до 2,5% в присутствии указанных выше микроорганизмов подвергаются энергичной аэрации воздухом. Количество воздуха должно обеспечивать определенную минимальную концентрацию растворенного кислорода. Поэтому процесс выращивания дрожжей представляет собой взаимосвязанную систему, где концентрация сахара в растворе, количество микроорганизмов в системе и концентрация растворенного кислорода должны находиться в определенных соотношениях [122]. При правильном ведении процесса из [c.417]

Сахарометры применяются для определения концентрации сахара (в весовых процентах) в растворах. [c.153]

Определение концентрации щелочных растворов. Амилозу и амилопектин можно высушить, нагревая в вакууме при 70° в течение 24 час, и затем непосредственно взвесить с соблюдением мер предосторожности, необходимых при работе с гигроскопичными веществами. Тем не менее такая методика трудна, и высушенный этим путем полисахарид не всегда растворяется полностью, вследствие чего часть вещества может быть потеряна при фильтровании. Поэтому удобнее определять концентрацию растворов по окончании вискозиметрических измерений путем гидролиза аликвотной части раствора до d-глюкозы с последующим определением восстанавливающего сахара. Разумеется, такая процедура обязательна при непосредственном использовании комплекса амилозы с н-бутанолом. Рекомендуется метод определения восстанавливающего сахара с помощью щелочного феррицианида [9]. [c.393]

При помощи стеклянной палочки навеску (без потерь) переносят в колбу Штифта (с расширенным горлом над чертой) емкостью 201,5 мл и добавляют 7 мл свинцового уксуса для осаждения белковых веществ, которые, оставаясь в растворе, вызывали бы помутнение его, исключая тем самым возможность точного определения концентрации сахара оптическим методом. [c.302]

При измерениях можно использовать рефрактометр, предназначенный для определения концентрации водных растворов сахара (сахариметр). Этот рефрактометр отличается тем, что измерительные призмы неподвижны, а граница светотени отбрасывается зеркалом на шкалу показателей преломления и может по ней перемещаться. При измерении совмещают указатель (три черточки или [c.321]

Удельное вращение равно углу вращения (выраженному в градусах) в слое раствора толщиной 1 дм, содержащего 1 г вещества в 1 мл прн 20"", при определенной длине волны (например при длине волны желтой линии спектра паров натртгя 5896 А). Зная угол вращения, удельное вращение и толщину слоя раствора, легко рассчитать концентрацию раствора. Удельное вращение плоскости поляризации в водных растворах тростникового сахара постоянно и может служить для определения концентрации раствора сахара. Скорость инверсии тростникового сахара можно изучать по изменению угла вращения плоскости поляризации, поскольку сам тростниковый сахар и продукты инверсии оптически активны. [c.356]

Измерения производят через определенные промежутки времени в начале реакции — через каждые 5—10 мин, в конце — через 15—30 мин. Во время измерений реакция в трубке продолжается, так что при нескольких измерениях не могут получиться одинаковые отсчеты. Для возможно полного устранения влияния этих помех на качество измерений, нужно произвести необходимое количество отсчетов (2—3) за 40—50 с. Это удается, если техника работы с поляриметром хорошо освоена при установке нуля и определении концентрации раствора чистого сахара. Нужно брать среднее значение из всех отсчетов и отмечать средний из моментов времени первого и последнего отсчетов (с точностью до 1 мин). [c.251]

Наполняют сосуд раствором сахара определенной концентрации, подкрашенным красной краской, закрывают пробкой с трубкой и погружают в ванну с дистиллированной водой (не до дна ), закрепив сосуд лапкой на штативе. Записывают в лабораторный журнал наблюдаемое явление и его краткое объяснение. Рассчитывают, до какой высоты к может подняться жидкость в осмометре. [c.49]

Метод применяется для быстрого определения концентрации водных, спиртовых, эфирных и других растворов. Им пользуются в химической, нефтехимической, фармацевтической, пищевой про-мышленности (для контроля толуола, бензола, керосина, водноспиртовых смесей, сахара, вина), при контроле производства синтетического каучука, волокон, пластмасс. Преимуществами метода являются простота, точность, быстрота, возможность проведения анализа в малом, объеме вещества, возможность автоматизации контроля. [c.72]

Оптическое устройство современных поляриметров более сложное. В лабораторной практике применяются различные типы поляриметров, например круговые поляриметры СМ-1 и СМ-2, портативный поляриметр П-161-У, фотоэлектрический поляриметр ФЭП-У. Разновидностью поляриметров являются так называемые сахариметры, специально предназначенные для определения концентрации растворов сахара. В сахариметрах угол вращения рас- [c.82]

Как будет показано далее, ряд свойств полисахаридов зависит от их расположения в клеточной оболочке и химической связи с другими компонентами. При характеристике растительных материалов, используемых в качестве сырья в технологических процессах, например, в целлюлозно-бу.мажном производстве, при производстве фурфурола, сахаров и т. д., под ГМЦ подразумевают группу полисахаридов, определяемую общепринятыми методами, например по растворимости в растворах щелочей или по гидро-лизуемости кислотами определенных концентраций [13]. [c.17]

Учитывая, что применение уравнения Эйнштейна для вычисления объема дисперсных частиц по величине внутреннего трения золей ограничивается лишь частичками, форма которых близка к шарообразной, А. В. Думанский для оценки гидрофильности коллоидных систем разрабатывает новые методы. Кроме того, известными методами определения связанной воды — дилатометрическим, калориметрическим и криоскопическим — невозможно определить истинное содержание связанной воды в объектах исследования. Поэтому А. В. Думанский в 1933 г. предложил рефрактометрический метод, основанный на определении концентрации сахара в коллоидном растворе, которая будэт всегда вышг исходной концентрации вследствие того, что связанная вода обладает свойством растворимости, в данном случае, сахара. [c.6]

Рефрактометры довольно широко применяются в агрохимических лабораториях, в основном для определения концентрации сахара в растворах. Наша промышленность выпускает специальные рефрактометры-сахариметры. На рис. 136 показан общий вид наиболбе распространенного рефрактометра-сахариметра марки РПЛ (рефрактометр прецизионный лабораторный), который выпускается Киевским заводом контрольно-измерительных приборов. [c.344]

Компенсационный диализ и вивидиализ — методы, разработанные для исследования биологических жидкостей, представляющих собой коллоидлые системы. Принцип метода компенсационного диализа состоит в том, что в диализаторе вместо чистого растворителя используют растворы определяемых низкомолекулярных веществ различной концентрации. Например, для определения не связанного с белками, т. е. свободного, сахара в сыворотке крови проводят ее диализ против изотонического солевого раствора, содержащего различные концентрации сахара. В том растворе, [c.420]

Один из распространенных методов определения чисел сольватации состоит в том, что к раствору электролита добавляют неэлектролит, т. е. вещество, которое не переносится током (чаще всего сахар). В первом приближении можно считать, что сахар не вступает в сольватную оболочку. Тогда, если одновременно с наблюдением за изменением концент1зации электролита проследить за изменением концентрации сахара, можно установить количество воды, переносимое ионами. Концентрация сахара либо будет уменьшаться, если количество принесенной воды будет превышать количество унесенной, либо увеличиваться, если будет обратное соотношение. [c.140]

Определение биологической активности инсулина проводят на здоровых кроликах массой 2,5—3,5 кг. Животных массой 1,8—2,3 кг предварительно не менее 14 сут содержат в условиях вивария, где они получают овес, сено или свежую траву, корнеплоды, комбинированный корм и воду. По истечении этого срока определяют чувствительность кроликов к инсулину. Для этого кроликам дважды с интервалом 7—8 сут после 18 ч голодания вводят подкожно раствор стандартного образца инсулина из расчета 0,5 ЕД на 1 кг массы тела животного и определяют величину снижения концентрации сахара в крови в процентах. Кровь для исследования берут из краевой вены уха животных до введения инсулина и через 1,5 и 2,5 ч после его введения (для расчета берут среднюю концентрацию сахара в крови из двух определений после введения инсулина). Кровь берут в условиях, не допускающих чрезмерного волнения кроликов. Из опытов исключают животных с исходной концентрацией сахара в крови ниже и выще пределов, установленных для используемого метода определения содержания сахара в крови (ниже 75 мг % и выше 120 мг % для феррицианидного метода, [c.176]

Определение ВС. 0,5 мл образца, содержащего 5-50 мкг ВС кипятят в течение 45 мин с 0,5 мл реагента Шомоди в градуированной пробирке. Содержимое охлаждают до комнатной температуры, добавляют при перемешивании 0,5 мл реагента Нельсона и доводят до 5 мл дистиллированной водой. Раствор перемешивают и измеряют поглощение при 540, 610 или 740 нм (более высокая чувствительность) относительно раствора сравнения. Последний готовится в тех же условиях при использовании дистиллированной воды. Концентрацию сахаров определяют по калибровочному графику с использованием раствора глюкозы в качестве стандарта. [c.145]

Метод определения биологической активности Определение биологической активности инсулина проводят на здоровых кроликах массой 2,5—3,5 кг. Животных массой 1,8— 2,3 кг предварительно не менее 14 сут содержат в условиях вивария, где они получают овес, сено или свежую траву, корнеплоды, комбинированный корм и воду. По истечении этого срока определяют чувствительность кроликов к инсулину. Для этого кроликам дважды с интервалом 7—8 сут после 18 ч голодания вводят подкожно раствор стандартного образца инсулина из расчета 0,5 ЕД на 1 кг массы тела животного и определяют величину снижения концентрации сахара в крови в процентах. Кровь для исследования берут из краевой вены уха животных до введения инсулина и через 1,5 и 2,5 ч после его введения (для расчета берут среднюю концентрацию сахара в крови из двух определений после введения инсулина). Кровь берут в условиях, не допускающих чрезмерного волнения кроликов. Из опытов исключают животных с исходной концентрацией сахара в крови ниже и выше пределов, установленных для используемого метода определения содержания сахара в крови (ниже 75 мг % и выше 120 мг % для феррици-анидного метода, ниже 52 мг % и выше 94 мг % для глюкозоок-сидазного метода), а также тех животных, которые реагируют на введение инсулина судорогами или у которых снижение концентрации сахара в крови составляет менее 15 % по отношению к исходной концентрации. Определение биологической активности инсулина проводят не ранее, чем через 7—8 сут после испытания на чувствительность. [c.297]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология