Этиловый спирт ингибирующее действие

В печени и почках крыс и морских свинок также происходит восстановление 7 и 12 до ариламинов, но основная деятельность этих органов направлена на то, чтобы вызвать гидролиз 7 и 12. Восстановление 7 катализируется ферментом при оптимальном значении pH, равном 7.8, и активируется коферментами НАД-Нг (2а) и ФМН-Нг (4а), а также этиловым спиртом. Поскольку восстановленные коферменты 2а и 4а образуются в результате ферментативного окисления спирта в ацетальдегид (по крайней мере, в п[)п-сутствии фермента алкогольдегидрогеназы), то роль спирта может заключаться в том, чтобы вызывать образование восстановленных коферментов. Ферментативная активность была обнаружена как в цитоплазме клетки, так и в находящихся в клетке микросомах [289], причем в обоих случаях действует ряд окислительно-восстановительных ферментативных систем, использующих никотинамидные и флавиновые коферменты. Интересно, что известные ингибиторы нитратредуктаз, нанример дипиридил, иитрат серебра, кислород, салицилат натрия и сульфат аммония, ингибируют реакцию восстановления [290, 291]. [c.168]

Введение ацетальдегида в исходный этиловый спирт ускоряет окисление, но на более глубокой стадии реакция затормаживается из-за ингибирующего действия смол, образующихся из ацетальдегида [7]. При окислении этилового спирта имеет место последовательность превращения продуктов [c.26]

В дибутиловом эфире и этиловом спирте цепной распад перекиси бензоила протекает как реакция первого порядка [41]. В этом случае удельная скорость распада не изменяется при уменьшении концентрации перекиси от 0,195 до 0,0212 моль л. Так как абсолютная величина скорости распада в дибутиловом эфире при 60° на два порядка больше, чем в бензоле, то, очевидно, реакция подчиняется уравнению (17), т. е. обрыв цепей происходит по схеме (IX). Цепной механизм течения этих реакций подтверждается ингибирующим действием различных веществ. Так, распад перекиси бензоила в этаноле ингибируется кислородом, продуктами реакции и стиролом [41, 47]. Вероятно во многих случаях одновременно протекает несколько реакций развития и обрыва цепей. В этих случаях кинетические уравнения имеют более сложный вид и лишь приближенно могут быть представлены в виде уравнений (16) или (14). [c.40]

Молекулярный кислород оказывает решающее влияние на процесс восстановления красителей, предотвращая его протекание или окисляя образующуюся при этом лейкоформу красителя. Если облучаемый раствор находится в соприкосновении с воздушной атмосферой, степень восстановления красителя определяется такими факторами, как скорость диффузии кислорода в объеме раствора, доза, полученная последним, и мощность дозы излучения, действующего на этот раствор. Так, например, первоначально насыщенный воздухом раствор метиленового голубого, содержащий избыточное количество бензоата, при облучении не обесцвечивается до полного истощения молекулярного кислорода. Только после этого начинается восстановление красителя с выходом около 3 молекул на 100 эв совершенно так же, как в условиях отсутствия молекулярного кислорода [040]. Следовательно, можно сказать, что молекулярный кислород защищает краситель от радиационного восстановления. Другой аспект роли молекулярного кислорода открывается, если провести сравнение поведения насыщенных воздухом растворов красителя, содержащих избыточное количество органического вещества, и его растворов, не имеющих органической добавки. При этом оказывается, что органическое вещество действует как защитный агент. Подобное действие характерно для ацетона [5106], сахарозы и фенола (5106], хинона, гидрохинона, глюкозы и глицерина [555], формальдегида, галактозы и азулина (С15Н18) [М74], этилового спирта [М74, 5106] и желатина [037]. В то же время тиомочевина [09] и двуокись углерода [М74], ингибирующие обесцвечивание растворов красителя, не содержащих воздуха, действуют так же и в присутствии последнего. Объяснение этих результатов состоит в том, что молекулярный кислород предотвращает восстановление красителя, а органическая добавка, успешно конкурируя с красителем в захвате ОН-радикалов, защищает его от окисления (ср. стр. 212). [c.208]

В некоторых работах показано влияние начального содержания бактерий на скорость и успешность винного брожения. Низкое начальное их содержание обычно приводит к нежизнестойкости бактерий, а его увеличение в 10 раз способствует успешному ходу брожения. Из этого следует, что в готовых винах присутствует ряд компонентов (отличных от этилового спирта), ингибирующих брожение, и их действие можно ослабить путем добавления специальной закваски (и увеличения затрат). Изучение взаимодействия между дрожжами и яблочно-молочнокислыми бактериями ведется уже довольно давно [24,29,82], но до сих пор не выявлено веществ, с помощью которых осуществляется это взаимодействие. В этом отношении очень важно недавнее выделение белков, продуцируемых сахаромицетными дрожжами и подавляющих яблочно-молочнокислые бактерии [17]. Содержание таких соединений в винах и условия, в которых они продуцируются, нуждаются в дальнейшем изучении. [c.173]

Реагент БА-6 (ТУ 6-02-7-6—73) — продукт конденсации бензиламина с уротропином, представляет собой вязкую жидкость светло-коричневого цвета со слабым аминным запахом и плотностью 1,058 г/см , вязкостью при 20 °С около 65 мПа-с, с молекулярной массой 250—260. Хорошо растворим в неорганических кислотах (соляной, серной, фосфорной) и в органических растворителях (эфире, ацетоне, этиловом спирте, этилаце-тате и диоксане). Нерастворим в воде. Степень ингибирующего действия 4NH 1 при концентрации ингибитора 1 г/л при температуре 100°С составляет около 98%. Стабилен во времени и не коагулирует в присутствии солей трехвалентного железа. Нетоксичен. [c.24]

Перхлорэтилен (тетрахлорэтилен) — бесцветная тяжелая малолетучая жидкость со слабым запахом эфира температура кипения 120,8 °С, плотность 1,62. Более устойчив, чем трихлорэтилен, однако на воздухе под действием света медленно реагирует с кислородом, разлагаясь на фосген и трихлоруксусную кислоту. Пер-хлррэтилен менее цодвержен гидролизу, чем трихлорэтилен,- поэтому наряду с ним можно применять мыла и моющие средства, содержащие влагу. По сравнению с трихлорэтиленом он менее активен как растворитель. Перхлорэтилен транспортируют и хранят в стальных оцинкованных бочках или бутылях из темного стекла, вставленных в деревянную решетку. Процесс его окис- ления можно ингибировать, добавляя небольшое количество этилового спирта и эфира. [c.139]

Ингибирующий эффект хлор-ионов. В 1951 г. Г. Дьюхерст [62, 63] показал, что возрастание 0(Ре2+) в присутствии органических примесей подавляется добавлением к раствору хлор-ионов. Например, влияние 10 Л1 этилового спирта на величину 0(Ре +) полностью исключается при введении в раствор 10 2 М хлористого натрия. М. Бэртон и сотр. [73] нaблюдaJiИ. .а-налогичное действие добавки МаС1 в случае бензола и фенола. [c.349]

Было выявлено, что при идеальных условиях и при достаточном количестве углеводов некоторые штаммы дрожжей 5. erevisiae способны синтезировать этиловый спирт в высокой концентрации (около 20%). Это не означает, что спирт не оказывает воздействия на ход брожения — он ингибирует процесс роста и метаболизм дрожжей и даже при низких концентрациях может замедлять скорость брожения. Было показано, что ингибирующее действие этилового спирта в значительной степени обусловлено условиями размножения дрожжей, причем на восприимчивость их к этиловому спирту заметно влияет рост при высоких температурах (свыше 32-33 °С) и низких значениях pH. На воздействие этилового спирта оказывает влияние также содержание жиров в питательной среде и наличие или отсутствие некоторых солей (в частности, магния). На токсичность спирта при брожении влияет присутствие в сусле других высших спиртов, поскольку последние более токсичны, чем этиловый спирт, а их токсичность связана с растворимостью содержащихся в них липидов [20]. [c.55]

В первичных и вторичных спиртах также протекает быстрое индуцированное разложение перекиси беизоила. В этиловом и изопрониловом спиртах период ее полураспада составляет всего 2—3 мин., причем кислород оказывает ингибирующее действие [48]. Ход процесса изображается следующим образом [c.381]

Низшие эфиры ванилиновой кислоты образуются при ее вазимодействии с соответствующими спиртами. В качестве катализаторов обычно используют соляную или серную кислоты (лишь реакция образования фенилового спирта катализируется хлороксидом фосфора). Эти эфиры проявляют по отношению к различным бактериям и плесеням сильное токсическое действие. Так, ингибирующая массовая доля эфиров для микроорганизмов Ba illus my oides составляет, % метилового 0,21, этилового и бутилового 0,15, амилового и изоамилового 0,01, фенилового 0,03. [c.302]