Качалка лабораторная

Для обеспечения хорошей аэрации микроорганизма ферментацию Б колбах следует проводить при тщательном перемешивании. Для этого можно применять любые имеющиеся качалки. Простые, надежные в эксплуатации и возможно более дешевые качалки устанавливаются в термостатированной комнате или шкафу, где поддерживается постоянная температура 25—30 °С. При отсутствии термостатированной комнаты можно применять качалку-инкубатор или качалку с водяной баней. Обычно первая используется чаще, чем вторая. К сожалению, самая дешевая инкубированная качалка примерно вдвое дороже самой дешевой качалки с водяной баней и в 3—4 раза дороже простой механической качалки без контроля температуры. Поскольку в лабораторной практике преобладают колбы Эрленмейера на 500 мл, качалка должна быть рассчитана именно на них. [c.214]

Технологический режим выращивания дрожжей моделировали в лабораторных условиях в колбах объемом 250 мл на термостатированной качалке при температуре 30 °С в течение 10-12 ч. Начальный объем питательной среды составлял 30 мл, конечный (без учета отбора проб) - 70 мл. В ходе культивирования контролировали концентрации биомассы, аммонийного азота и фосфора в среде, проводили микробиологический контроль (морфология, численность почкующихся, живых и мертвых клеток). [c.29]

Предварительно дезактивирующее влияние ядов было изучено при комнатной температуре и продолжительности процесса 30 мин в лабораторном реакторе идеального смешения, представляющем собой стеклянный термостатированный сосуд, укрепленный на быстроходной качалке. [c.126]

При выращивании микроорганизмов глубинным методом клетки суспендированы в жидкости и находятся во взвешенном состоянии. В небольшую (50—250 мл) колбу наливают жидкую питательную среду, в которую засевают чистую культуру либо с поверхности косого агара, либо из ампул. Затем колбу на сутки или более помещают в термостат с определенной температурой, где культура растет и размножается. Чисто аэробные микроорганизмы выращивают в специальных колбах, которые ставят на качалку в термокамере. После этого культуру пересевают в лабораторные ферментаторы со средой такого же или несколько измененного состава. Лабораторные ферментаторы — стеклянные аппараты емкостью 1—10 л, в которых можно обеспечить продувание среды воздухом, регуляцию температуры, pH и других условий роста. По описанной выше схеме обычно организуют исследование культур микроорганизмов. Кроме того, таким путем готовят и чистую культуру для производственных нужд. Дальнейшее размножение чистой культуры в производственных условиях идет в несколько стадий при использовании металлических инокулято-ров объемом от 0,1 до 100 м и более. Инокуляторы снабжены мешалками, аэраторами, устройствами для стерилизации и охлаждения, арматурой, измерительными приборами. Для каждой следующей стадии необходимо 3—20% посевного материала (по объему). [c.68]

Наиболее универсальный тип лабораторной качалки, в которой встряхиваемый сосуд перемещается по горизонтали, изображен на рис. 61. На такой качалке можно разместить достаточно большой сосуд или небольшой автоклав для работы под высоким давлением. Встряхиваемый сосуд можно [c.64]

Искусственное эмульгирование образцов мазутов проводилось на лабораторной качалке в течение двух часов со скоростью 120 качаний в минуту. Стеклянный цилиндр, емкостью 1200 мл, содержащий 800 г мазута и 200 г морской воды соленостью 35°/оо, укреплялся в качалке в горизонтальном положении. После окончания перемешивания производилось отстаивание образовавшейся эмуль- [c.127]

Соляная кислота, 10% раствор Лабораторна я качалка Ацетон, 100—150 мл [c.330]

В реакционную колбу загружают мономеры, приливают приготовленный раствор инициирующей системы, остальное количество воды и устанавливают колбу, закрытую пробкой, на лабораторную качалку. Реакцию проводят в течение 6 ч, а затем реакционную смесь выливают в избыток метилового спирта, слегка подкисленного небольшим количеством соляной кислоты. [c.330]

Простое устройство для встряхивания указано на рис. 20. Колба с двух сторон привязана к штативу резиновыми шлангами, а с третьей — к мотору. Скорость встряхивания можно регулировать, подключив к мотору реостат сопротивления. Для значительных объемов и длительных процессов используют специальные лабораторные качалки. [c.14]

В лабораторных условиях гриб культивировали при 28— 30°С в колбах, установленных на качалке, которая совершала 170—180 колебаний в минуту. Питательная среда содержала [c.143]

В мерную колбу емкостью 50 мл (отградуированную при 20°) помещают навеску полиизобутилена 0,2 г (взвещенную на аналитических весах с точностью 0,0001 г). Затем в колбу через воронку с бумажным фильтром наливают приблизительно 30— 35 мл хлороформа и колбу взбалтывают на лабораторной механической качалке до полного растворения навески полиизобутилена. После этого колбу помещают в термостат при 20° на 10—1 5 мин. и затем в нее доливают хлороформ до метки. После небольшого перемешивания раствор готов для определения вязкости. [c.136]

Приготовленный таким образом раствор оставляют на ночь. На следующий день содержимое колбочки взбалтывают от руки, доливают хлороформ до метки, раствор перемешивают и взвешивают на аналитических весах непосредственно перед определением молекулярного веса. Для ускорения растворения навески полиизобутиленов приготовленный в колбочке раствор можно взбалтывать на простой лабораторной механической качалке. Обычно для полного растворения достаточно взбалтывания в течение 2 часов, после чего содержимое колбочки доливают до метки хлороформом. [c.25]

В лабораторной практике чаще всего применяется способ с перемешиванием (рис. 3,6), при котором носитель суспендируется в растворе фермента и полученная смесь непрерывно перемешивается с помощью магнитной или механической мешалки или на лабораторной качалке. Этот способ гораздо эффективнее статического и обеспечивает более равномерное заполнение поверхности носителя адсорбированным ферментом. [c.47]

Наиболее простой и широко распространенный в лабораторной практике способ глубинного культивирования — выращивание на качалках, обеспечивающих встряхивание или вращение колб или пробирок со скоростью 100—200 и более оборотов в минуту. Чем больше скорость вращения, тем больше соприкосновение среды с воздухом и выше насыщение ее кислородом. Увеличить аэрацию среды при работе на одной и той же качалке можно уменьшением объема среды или применением колб с отбойниками — вдавливаниями внутрь в виде 4—8 отростков 2—3 см длиной (см. рис. 30). При вращении колб с отбойниками поверхность соприкосновения среды с воздухом заметно увеличивается благодаря разбрызгиванию жидкости Чем больше отбойников, тем сильнее разбрызгивание жидкости, тем выше аэрация. [c.58]

В лабораторных условиях вьпцелачивание железа проводят в стационарных условиях или при культивировании на качалке, а также в реакторах с механическим перемешиванием или колоннах. При этом используются либо растущие культуры микроорганизмов, либо культуральная жидкость, полученная предварительно в отсутствие минералов, подвергающихся выщелачиванию. [c.343]

Определен температурный оптимум культуры - 32°С и показана возможность адаптации исследуемого штамма Ba illus ereus к 18°-20°С - температуре, приближенной к естественным условиям, в которых предполагается применение разрабатываемого биопрепарата. Оптимальный режим аэрирования культуры обеспечивается перемешиванием на лабораторной качалке со скоростью 170 об/мин. Показано, что активный рост культуры обеспечивается при поддержании значения pH 7,5. [c.159]

Показатель эффективности биоцидов - прирост сухой биомассы в топливе с присадкой в условиях испытания. Следует иметь в виду, что по отношению к различным грибам и бактериям (всего их в топливах обнаружено несколько десятков тысяч) токсичность биоцидов различна. Чаще всего оценивают эффективность присадок, используя для изготовления опытных образцов наиболее распространенные бактерии, например С1ас1о8ропит гектае или МкоЬас1епит 1ас1юо1ит. Согласно методике, разработанной в ГАНГ и МГУ (ГОСТ 9.023-74 Топлива нефтяные. Метод лабораторных испытаний биостойкости топлив, защищаемых противомикробными присадками ) [93], образец топлива, содержащего воду в соотношении (5+7) 1, засевают специально приготовленной культурой, образцы выдерживают в течение нескольких суток при 28-30 °С в статических условиях или на лабораторной качалке, а затем фильтруют через мембранный фильтр с диаметром пор не более 0,5 мкм. Топливо устойчиво к данному виду микроорганизмов, если прироста биомассы нет. При приросте биомассы менее 0,7 г/л топливо считается умеренно пораженным, а при более 0,7 г/л - интенсивно пораженным. [c.112]

Окислепие ироводи. т в титановой ампуле емкостью 200 мл, установленной на лабораторной качалке, кислородом воздуха, на.ходящегося в свободном объеме аппарата. Ампула снабжена электрообогревом и карманом для термопары, подсоединенной к ПСР-1-01 для контроля температуры. [c.82]

Опытное исследование процесса гидрогенизации производится в автоклавах лабораторного типа, в которых перемешивание достигается различными способами либо нри помощи мешалки или вращения автоклава, как описано выше, либо с помощью качания автоклава на специальной качалке. Во всех случаях температура опыта должна замеряться внутри автоклава, для чего в крышке автоклава имеется карман для термометра. Так как температура яв,пяется одним из важнейших факторов гидрогенизации и крекинга, то на правильность определения температуры должно-быть обращено особое внимание. Специальные опыты показали [34], что в автоклавах с мешалками правильный замер темнературы является затруднительным и для выяснения основных факторов гидрогенизации предпочтительнее пользоваться качающимися автоклавами. Одним из способов выяснения правильности измерения температуры на данной гид-рогенизационной установке может слуншть сопоставление результатов проведенных на ней опытов крекинга того или иного нефтепродукта с результатами, полученными в аналогичных условиях на стандартной установке, описанной в гл. III стр. 420. [c.521]

ЭТИ.110ВЫЙ спирт (абсолютированный), Лабораторная качалка 20 мл Диализатор [c.365]

ДОМ вегетативной гибридизации. Asp. niger S4 на твердых средах дает обильный рост и образует большое количество конидий. На агаре колония его имеет коричневый цвет с белой каймой в агар выделяется немного ярко-желтого пигмента. В глубинной культуре на барде с добавлением 2% муки и 0,25% магнезита (в лабораторных опытах на качалке) штамм Asp. niger S4 обладает активностью до 1700—1900 ед. ДС, 200—250 ед. МС и 30—40 ед. АС. [c.149]

Последним препаратом того периода был уже упоминавшийся Спореин лаборатории Либека в Париже, который в последней раз использовал Жако в 1950 г. Штейнхауз в полевых опытах [179] для размножения бактерий использовал агаровые среды, с 500 см поверхности которых он получил 0,2—0,3 г высушенных спор и кристаллов. Переломным моментом явилась работа Лему-аня и др. [129], которые использовали для культивации жидкую среду старого типа, но аэрируемую на качалке. Для промышленного производства биопрепарата необходимы дешевые питательные среды, в которых пептон и чистые сахара заменены другими источниками питания бактерий. В качестве примера перехода от лабораторной ферментации к промышленному производству можно привести технологический процесс, применяемый в Чехословакии при производстве Батурина [242—244]. [c.205]

Посевной материал можно получать периодически (исходный штамм в пробирке- -выращивание в колбе на качалке-> выращивание в лабораторном ферментаторе, а затем в инокуляторе) или непрерывно, так же как это было изложено в технологии лизина. В зависимости от способа получения посевного материала содержание биомассы продуцента в посевной культуральной жидкости может быть различным — от 3—5 г/л при периодическом способе выращивания до 15 г/л при непрерывном. Установлено, что чем больше вводится посевного материала, тем выше степень трансформации антраниловой кислоты. Выращивают культуру при температуре 30° С в течение 24 ч в каждом пассаже. [c.417]

Определение а, -ненасыщенных сложных эфиров и амидов. В реакционную колбу точно отвешивают около 0,1 мг-экв образца (примечание 2) и приливают 3 мл 0,1 н. раствора гидроокиси калия и 1 мл ацетона. Колбу закрывают пробкой и помещают на лабораторную качалку на 1 ч (примечание 3). Затем добавляют 3 капли раствора фенолфталеина и вводят по каплям 0,05 н. раствор соляной кислоты до тех пор, пока окраска содержимого колбы не изменится от розовой до бесцветной. После этого добавляют 0,05 н. раствор гидроокиси натрия, пока снова не появится розовая окраска, приливайт 10 мл дистиллированной воды (примечание I) и.заканчивают определение, как описано в предыдущей методике. Так же, но без навески образца, проводят холостой опыт. [c.487]

Клетки активно растущей культуры Е. oli собирают, промывают и ресуспендируют в свежей основной солевой среде (разд. 18.4.2), содержащей NH4+, NH4+ и гидролизат казеина или любой другой источник азота. Для таких быстро растущих культур, как Е. oli, в начале эксперимента достаточно 50—100 мкг (сухой вес) клеток на 1 мл среды, для более медленно растущих организмов требуется большая биомасса. Раствор " С-глю-козы (равномерно меченной с удельной активностью 10 имп/мин-мкмоль или выше) помещают в боковой отвод и вливают в сосуд с культурой (конечная концентрация 10 мМ), начиная тем самым эксперимент. Открывают систему газонаполнения, культуру встряхивают (можно поместить все устройство на лабораторную качалку с термостатируемой водяной баней) и начинают отбор газа в ловушки. " СОг собирают с помощью газоулавливающего раствора — смеси моноэта-ноламина и абсолютного этанола (1 2 10 мл). Газоулавливающий раствор сливают с 20—30-мин интервалами из колонок, для изготовления которых достаточно иметь стеклянные хроматографические колонки с вплавленным в основание пористым стеклянным фильтром, снабженные отверстиями для ввода газа, как показано на рис. 18.10, и разбавляют абсолютным этанолом до 20 мл. Затем отбирают пробы и определяют радиоактивность (внеся соответствующие поправки на тушение) с помощью жидкостного сцинтилляционного счетчика (разд. 16.4.3). Таким образом, подсчитывают общее количество " СОг, образующегося в результате метаболизма глюкозы. [c.431]

Выщелачивание обычно осуществляют в непрерывном режиме в системе из последовательно соединенных реакторов. Очень важной особенностью чанового выщелачивания является то, что размеры установки мало влияют на кинетику и вынос металла. Поэтому пригодность высокосортных руд или концентратов к переработке методом чанового бактериально-химического выщелачивания определяют, используя малогабаритное лабораторное оборудование. Подробно этот вопрос рассматривается в главе 4. 11еобходимо, однако, отметить, что метод выщелачивания в колбах на качалках (см. раздел 3.1.2) очень важен как предварительный тест для этого типа выщелачивания. Он дает ценную информацию об оптимальных условиях бактериального выщелачивания (плотность пульпы, состав питательной среды, необходимость подачи газа) и о результатах выщелачивания (скорость растворения металлов и количество извлеченных металлов) даже тогда, когда используются небольшие количества выщелачиваемого твердого порядка десятков грамм. [c.104]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология