Амиды определение колориметрическим

Вследствие, относительной устойчивости амидов число известных химических методов их определения невелико. Наиболее общей реакцией, которой подвергаются соединения этого типа, является их кислый и основной гидролиз до соответствующих кислот и аминов. Первичные н вторичные амины могут быть затем ацилированы однако реакции такого типа все еще пе имеют аналитического значения. В следующих разделах книги описываются два сравнительно общих метода 1) макро-метод, основанный на реакции омыления, и 2) колориметрический метод, основанный па образовании гидроксамовой кислоты. [c.66]

ОПРЕДЕЛЕНИЕ АМИДОВ КОЛОРИМЕТРИЧЕСКИМ МЕТОДОМ ГИДРОКСАМОВЫХ КИСЛОТ [c.68]

Е. Колориметрические и физические методы определения амидов и имидов [c.254]

Как для колориметрического определения никотиновой кислоты и ее амида, так и их открытия рекомендуется также цветная реакция с бромцианом и анилином, свойственная пиридину и его производным [12]. [c.444]

БИУРЕТОВАЯ РЕАКЦИЯ — цветная реакция, которую дают с солями меди в щелочной среде биурет H2N ONH ONH2, амиды и имиды кислот, полипептиды, белки и другие соединения, содержащие группировки —СО—NH—, Б. р. — цветная реакция на белок — лежит в основе его количественного колориметрического определения. Если к щелочному раствору белка прибавить раствор uSO , появляется фиолетовое окрашивание. Чувствитель-1юсть Б. р. невысока. [c.45]

Эфиры и-аминобензойной кислоты, имея близкое родство в химической структуре, дают ряд общих реакций, как, например, образование азокрасителя за счет свободной аминогруппы в ароматическом кольце имея ароматическое ядро, они могут бромироваться, нитроваться, сульфироваться. Эти общие реакции лежат и в основе методов их количественного определения нитритометрия, броматометрия, колориметрический метод и др. (См. Амиды сульфаниловой кислоты ). [c.262]

Кислоты, большинство амидов и нитрилы не мешают определению сложных эфиров описанным колориметрическим методом. Условия гидроксиламинолиза недостаточно жестки и реакция с амидами и нитрилами в этих условиях не протекает. Наоборот, хлорангидриды активно участвуют в обоих реакциях. Карбонильные соединения в высоких концентрациях также реагируют с гидроксиламином. Переходные металлы, например медь, никель и ванадий, реагируют с гидроксамовыми кислотами, образуя окрашенные комплексы, которые мешают определению. Возможно, что ванадий вообще успешно может заменить железо в этом определении [6]. Ионы, комплексно связывающие Ре +, например хлорид, тартрат, ацетат, а также вода могут оказывать значительное влияние на интенсивность окраски при определении как сложных эфиров, так и ангидридов. [c.148]

Следы амидов можно определять колориметрически двумя методами по окраске железогидроксаматных комплексов аналогично определению сложных эфиров и путем гидролиза и колориметрического определения образующихся аммиака или аминов. [c.176]

В табл. 3.20 представлены результаты определения некоторых амидов путем перевода их в гидроксамовые кислоты. Во многих случаях удается связать скорость реакции с особенностями строения амида. Например, для формамида максимум интенсивности окраски достигается при 26 °С менее чем за 1 ч, тогда как для ацетамида — за 8 ч. Замещение амидного водорода значительно снижает скорость реакции. Для Ы-метилацетамида (см. рис. 3.17) интенсивность окраски достигает максимума через 7 ч (60 °С) или через 24 ч (26 °С) по сравнению соответственно с 2 и 8 ч для незамещенного ацетамида. Соответствующие значения для формамида— 10 и 40 мин, для диметилформамида — 40 и 300 мин. В соответствии с этими наблюдениями ацетилглицин и пептиды реагируют медленно и дают низкие колориметрические результаты. Подобные же закономерности найдены и для производных никотинамида. Для самого никотинамида окраска достигает максимального значения 52 единицы на 1 мкмоль/мл после 8-часового взаимодействия при 26 ""С, тогда как его Ы, Ы-диэтилпроизводное (ко-рамин) дает максимальное значение 6 единиц Клетта за 8 ч при [c.178]

Как указывалось ранее, наряду с методами бумажной и ионообменной хроматографии для определения аминокислот из гидролизатов [65, 89, 118, 154, 162] существует ряд других методов, используемых в меньшей степени или находящихся еще в стадии разработки. Применялась также газовая хроматография для разделения этерифицированных аминокислот [9, 87] или продуктов окисления аминокислот [195]. Хотя этот метод очень чувствителен, применение его ограничено, так как некоторые аминокислоты не образуют достаточно летучие производные. Был сделан ряд усовершенствований для улучшения существующих методов. Колориметрический метод определения гистидина улучшен за счет дегазации раствора перед добавлением окрашивающего реагента — диазосульфаниловой кислоты [159]. Аспарагин и глутамин могут быть определены путем этерификации с последующим восстановлением боргидридом лития. После гидролиза эти амиды идентифицируются в виде соответствую1цих кислот, в то время [c.401]

Поляничева А. П. и Саватюгина С. М. Определение влажности торфа с помощью ламп инфракрасного излучения. Торф, пром-сть, 1952, № 9, с. 25—27. 7959 Поляченко М. М. Определение инвертного сахара в белом сахаре полярографическим методом. Тр. Киевск. технол. ин-та пищ. пром-сти, 1950, вып. 10, с. 17—22. 7960 Пономарев Г. А. Колориметрический метод определения никотиновой кислоты (и ее амида) в крови. Фармакология и токсикология, 1945, 8, № 5, с. 31—33. 7961 Пономаренко Б. В. Колориметрическое определение анилина на основе диазотирования и образования красителя. Сообщ. о науч. работах членов Всес. хим. об-ва им. Менделеева, 1946 [на обл. 1947 г.], вып. 4, с. 16. [c.301]

Раскрытие 5-лактамного кольца при взаимодействии пенициллинов с первичными аминами, приводящее к образованию замещенных амидов пенициллоиновых кислот, было положено в основу колориметрического и микрофлуориметрического способов определения пенициллинов. В первом случае в качестве реагента берется Н-(1-на-фтил-4-азобензол)-этилендиамин, во втором — 2-метокси-6-хлор-9-(,5-аминоэтил)-аминоакридин. Эти реакции протекают по следующему уравнению [c.117]

Амиды Объемный и колориметрический методы количественного определения карбамида недостаточно чувствительны и требуют значительных затрат времени. Разработан спектрофотометрический метод, основанный на измерении оптической плотности окрашенного комплексного соединения, образующегося при реакции карбамида с п-диметиламино нзальдегидом Оптическая плотность измеротась на спектрофотометре СФ-4 при Х=420 нм в кюветах длиной 10 мм. Продолжительность опред ия 15 мин., относительная ошибка определения [c.44]

Существующий метод определения капролактама основан на разложении амидов кислот гидроксиламином с дальнейшей обработкой их ионами трехвалентного железа. Получаются окрашенные в красно-коричневый цвет соединения, концентрацию которых определяют колориметрически. Но иа ОЧНСТИ1.И с(юруженпя поступают также воды суконно-камвольного комбината, содержаш.ие значительное количество красителей, поэтому такое колориметрическое определение количества капролактама ненадежно. [c.143]

Б. p. обусловлена наличием в молекулах перечисленных соединений - O-NH-группировки. Образующиеся при Б. р. окрашенные соединения являются комплексами, которым приписывают строение, представленное, например, форму-ла-ми (I) — медный комплекс из амида салициловой к-ты, (II) — комплекс из биурета и (III) — комплекс из полипептида. Для медных каждого соединения характерна окраска (красная, фиолетовая, синяя) с максимумом поглощения в интервале 440—640 ммк. К медным биуретовым комплексам близки по строению никелевые биуретовые комплексы, окрашенные в желтый цвет. Б. р. используется как цветная реакция на белок и лежит в основе количественных колориметрических определений. Обычно реакцию на белок проводят, прибавляя к его раствору в NaOH разб. раствор uSOj при этом появляется фиолетовое окрашивание. Чувствительность реакции невысока. [c.222]

Для онределения индивидуальных аминокислот, включая сюда и колориметрическое определение тироксина, предложен метод, основанный на реакции с диазотированным N -диэтил yльфaнил-амидом [471]. [c.222]