Магний в растительном материале

Определение каротина в свежем растительном материал Адсорбция на окиси магния или окиси алюминия и под [c.360]

При анализе органических продуктов (кровь, растительный материал, продукты питания) образцы подвергают озолению в кварцевых, никелевых или фарфоровых тиглях, в присутствии фиксаторов [1—3]. В качестве фиксаторов применяют окись и гидроокись кальция или магния, перекись кальция или магния, ацетат кальция, калия или магния, соли меди и алюминия, карбонат натрия или кальция [3—6]. Иногда озоляют без фиксатора [7, 8], особенно продукты, содержащие большое количество солей кальция, например, зубы, кости, почвы [7]. Озоление занимает очень много времени (28—48 ч). [c.18]

Я уже свыше 10 лет интересовался проблемой разделения содержимого растительной клетки и занимался поисками метода, пригодного для этого. Содержимое исследуемых растительных железистых волосков в соответствии с их объемом составляет менее 0,1 [is, и поэтому я сразу мог констатировать, что ни один из тогдашних хроматографических методов не позволяет добиться желательного результата. Микрофотография показала, что железистый волосок меньше отдельного зернышка разделительного слоя или волокна целлюлозы бумаги. Чтобы продвинуться вперед, я перешел к открытым колонкам из тонкоизмельченного материала и стал использовать известные палочки и желобки из окиси магния. Полученные результаты оказались достаточно хорошими, но адсорбционная активность была слишком мала. [c.13]

Методика опыта. Навеску хорошо измельченного растительного материала 3—10 г (в зависимости от его влажности) помещают при помощи воронки в колбу Кляйзена (рис. 1, 1). Воронку и горлышко колбы обмывают 100 мл дистиллированной воды. После того как навеска пропитается водой, к остывшей смеси добавляют прокипяченное и охлажденное 5%-ное магнезиальное молоко (приготовляют из свежепрокаленного оксида магния) до тех пор, пока среда не станет щелочной (определяют по лакмусовой бумажке). Обычно расход [c.5]

Растительный материал и вытекающий из кювет раствор во всех опытах подвергался химическому анализу. Азот определяли после озо-ления растительного материала с серной кислотой колориметрически,с реактивом Несслера, общий фосфор из той же озоленной смеси — также колориметрическим методом, кальций и магний — трилоном Б. Данные ПС определению азота и фосфора в растениях томатов и огурцов из опыта 1 приведены в табл. 5. [c.249]

Озоление в присутствии солей магния (анализ кровяной сыворотки, травы, костей, минералов и пр. [10], методики № 91—93). 2,5—10 г сухой травы, навеску обезжиренного минерала или костей и других образцов (50—250 мкг фтор-иона) помещают в платиновый или никелевый тигель-чашку емкостью 200—250 жл и прибавляют очищенный Mg( H3 OO)2. для травы— 125 мл 0,5% раствора, для минерала или костей—1 мл 25% раствора, на 5—10 мл кровяной сыворотки добавляют 75 мг MgO. Содержимое тигля перемешивают и осторожно высушивают при 105° С в течение ночи или помещают в автоматически контролируемый муфель при комнатной температуре и постепенно нагревают до 570—600° С. Скорость нагрева определяется количеством влаги и органических веществ. После сожжения минералов и костей (обычно в течение 6 ч, до удаления углерода) или растительного материала (выдерживают при 600° С в течение 1 ч) тигель вынимают из муфеля, энергично перемешивают содержимое, снова помещают в муфель и повторяют эту операцию до тех пор, пока не выгорит весь углерод. Полученную золу анализируют, как указано в методике 2, п. 1. [c.19]

Выполнение анализа. 10—20 мг высушенного растительного материала озоляют в фарфоровом тигле. Полученную золу по охлаждении растворяют в 5—6 каплях соляной кислоты. Раствор разбавляют водой до объема 0,5—1 мл и хорошо перемешивают. Каплю раствора наносят на неоористую (глянцевую) бумагу (фильтровальная бумага содержит магний). Прибавляют по одной капле растворов бромноватистокислого натрия и иодистого калия. В присутствии магния появляется красно-бурый осадок или окрашивание. [c.513]

Ход определения. Пробу исследуемого растительного материала разрушают обработкой азотной и хлорной кислотами. К аликвотной части раствора добавляют 10 мл 2%-ного раствора оксихинолина (в 4%-ном растворе уксусной кислоты) и добавлением аммиака доводят pH раствора до значения 5,25 (контролируя потенциометрически). Полученный раствор нагревают почти до кипения и фильтруют непосредственно в делительную воронку емкостью 125 мл. По охлаждении раствор взбалтывают дважды с 10 лгл четыреххлористого углерода. Затем прибавляют к раствору 5 мл 1%-ного раствора купраля и снова встряхивают около 2 мин. с 10лгл четыреххлористого углерода. Присутствующий в исследуемом растворе марганец переходит в слой органического растворителя в виде комплекса фиолетового цвета. Экстракцию повторяют со следующим 1 лгл раствора купраля. Спускают водный слой в стакан и удаляют из него растворитель кипячением. Присутствующий в растворе кальций осаждают при 90° добавлением 5 мл насыщенного раствора оксалата аммония и оставляют в покое на ночь. Затем сливают раствор с осадка при помощи стеклянной палочки и доводят его объем до 100 мл. В аликвотной части раствора определяют магний титрованием раствором комплексона в присутствии эриохрома черного Т. К оттитрованному до конечной точки раствору прибавляют около 1 мл избытка [c.458]

Ход анализа. Навеска сухого растительного материала (100— 200 лг), предварительно измельченная и просеянная через сито с отверстиями 0,25 мм, озоляется сухим способом в муфельной печи при 400—500°. После озоления в остывшие тигли добавляют 1— 2 капли дистиллированной воды и 5—7 капель концентрированной НС1. Затем тигли помещают на слабую электроплитку с закрытой спиралью и производят постепенно выпаривание (без кипения) почти досуха. В тигли наливают горячую дистиллированную воду (7—9 мл) и снова производят выпаривание при тех же условиях. Эта операция производится 2—3 раза до полного освобождения от НС1. Далее осадок из тигля переносят в мерную колбу на 25— 50 мл (в зависимости от содержания магния). Раствор фильтруют через складчатый фильтр в сухую колбу. Полученный фильтрат подщелачивают 10%-ным раствором NaOH до pH 10 и используют для спектрофотометрического определения. [c.120]

Фенилазидный метод был применен для определения остатков альдрина в растительном материале . Растительный экстракт яблок, бобов, сельдерея, огурцов, персиков, редиса, томатов подвергался очистке на колонке с аттазолом. Для растительных экстрактов люцерны, капусты, шпината требуется дополнительная обработка активированным углем. Имеется указание, что экстракцию растительного материала целесообразно осуществлять смесью ацетон+петролейный эфир, затем очищать экстракт на колонке, заполненной смесью окись магния+целлит (2 1) и силикат магния-Ьцелит (2 1). К очищенному концентрированному экстракту добавляют раствор фенилазида в петролейном эфире и после сочетания продукта реакции с диазотированным [c.102]

Ход анализа. Часть вытяжки после сухого или мокрого озоления растительного материала, содержащую от 1 до 10 мг кальция и магния, переносят пипеткой в коническую колбу емкостью 200—250 мл. Нейтрализуют щелочью и прибавляют 5 капель 1%-ного раствора солянокислого гидроксилампна. Еслн есть основание предполагать, что в растворе присутствует медь в количествах, превышающих 1 жг на 1 л, то для ее связывания добавляют 1—2 мл 1%-ного раствора сульфида натрия. В противном случае добавление этого реактива излишне. Затем, разбавив дистиллированной водой, не содержащей кальция, магния и меди, раствор в колбе до 80—100 мл, приливают 5 мл аммиачного буфера и 10—15 капель индикатора хромогена черного. Раствор оттитровывают 0,05 н. раствором трилона Б до сине-голубого окрашивания и записывают результат титрования. [c.146]

Маковер и Нильсен [240] предложили метод определения содержания воды в высушенных овощах. Вначале взвешенные образцы насыщают водой, давая частицам пробы набухнуть, а затем замораживают. Охлажденную примерно до —70 °С пробу переносят в аппарат для лиофильной сушки и сушат в течение ночи до содержания влаги 2—3%. Благодаря набуханию частиц предварительное размачивание резко увеличивает скорость сушки. Последующее сжатие частиц в процессе сушки оказывается незначительным, а пористость материала при набухании дополнительно увеличивается за счет извлечения из растительной ткани растворимых веществ, например сахаров. Процесс сушки завершают Б вакуум-термостате при 60—70 °С или в эксикаторе с перхлоратом магния при комнатной температуре. Без предварительной лиофильной сушки обезвоженные овощи продолжают терять влагу более 100 ч. После лиофильной сушки некоторые овощные продукты достигают постоянной массы в течение относительно короткого времени. На рис. 3-28 представлены кривые сушки сладкого картофеля при 60 и 70 °С. Для проб, подвергнутых размачиванию и лиофильной сушке, постоянство массы достигается за 38 и 22 ч при 60 и 70 °С соответственно. Полученные результаты равны 8,3% при 70 °С и 8,2% при 60 °С и хорошо совпадают с результатами высушивания в вакуум-эксикаторе при комнатной температуре в течение 4 дней. Аналогичные данные получены для свеклы и для белого картофеля. Однако в случае моркови более предпочтительной представляется сушка в вакуум-термостате при 60 °С. При использовании этого метода были получены результаты [c.169]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология