Каротины определение хроматографическим

Методика количественного определения каротина в плода бины обыкновенной (Fru tus Sorbi). Метод основан на экстра каротина Органическими растворителями (ацетон, бензин), оч1 от сопутствующих веществ методом хроматографической ции. Количество каротина в очищенном растворе определяют риметрически по интенсивности желтой окраски раствора нением его с раствором азобензола или раствором дихромат ЛИЯ, который стандартизован по чистому каротину, [c.10]

Хроматографический метод определения каротинов. Каротины широко распространены в природе. Больше всего каротина в зеленых [c.116]

Метод ХТС пригоден также для определения цис транс-жзошеряых соединений. На активных слоях силикагеля Г при разделении метанолом полностью mpaw - -каротин, например, остается на точке старта, а 15,15 -z u - -каротин перемещается (Rf X 100 65). Образование полос определенно указывает на изомеризацию в процессе хроматографического разделения. [c.220]

Растительные вещества методика анализа 7411 определение каротина 7772 общей кислотности 6585 серы 8388, 8390 способ сжигания 8248 Расчеты, упрощение при массовых определениях физико-химич. методами 6344 Рацематы, разделение хроматографическое 8491 Рациональный анализ, см. фазовый анализ Рвотный орех, определение алкалоидов в фармакопейных препаратах 6624 Реагенты аналитические, классификация на основе энерге-тич. характеристик 215 Реактив Губера, свойства 615 Реактивы 1549, 1582, 1588, 2371, 2393 см. также под индиви дуальными названиями анализ и испытание 2331—2334 2339, 2340, 2362, 2390. 5532 Ь1 нение аналитич. ценности [c.382]

Методом Рачевского обычно определяют каротин в сыворотке крови. В растительных пищевых продуктах каротин большей частью содержится наряду с другими каротиноидами, поэтому непосредственно определить его содержание описанным методом невозможно. Метод Рачевского, однако, с успехом применяется для определения каротина, после отделения других каротиноидов при помощи хроматографической адсорбции (см. стр. 93). [c.91]

Хроматографический " метод в масложировой промышленности применяется для контроля сырья, определения происхождения масла или жира и обнаружения в них загрязнений. При помощи этого метода в маслах, например в миндальном и кокосовом, устанавливают присутствие различных красящих веществ. Масло или жир растворяют в петролейном эфире и раствор пропускают через колонку заполненную окисью алюминия или отбеливающей глиной. При этом даже очень малые примеси пигментов (например, каротин, ксантофилл и другие) обнаруживаются в виде полос различного цвета, расположенных в верхней части хроматограммы. [c.198]

Каротины располагаются в колонке ниже других каротИ ноидов, то их легко собрать при промывании колонки рас творителем и определить количественно колориметрически Способы количественного определения каротина с по мощью хроматографии по М. С. Цвету разработаны Государ ственной контрольной витаминной станцией. Эти способы однако, трудно использовать в студенческом практикуме так как они требуют много времени и реактивов. Мы ограничимся поэтому описанием качественного разделения каротиноидов на хроматографической колонке. Приборы. 1. Ступка с пестиком. [c.94]

В основе всех методов определения каротина присутствует метод хроматографического анализа (см. раздел I, с. 52 - 56), разработанный русским ученым М.Е. Цветом Принцип метода состоит в том, что сложная смесь различно окрашенных веществ экстрагируется из листьев или корнеплодов каким-либо органическим растворителем или их смесью, например спиртом, ацетоном. Экстракт пропускают через стеклянную трубку, заполненную адсорбентом. Как адсорбенты используются тонко размолотые тальк, крахмал, углекислый кальций или окись алюминия и др. В связи с тем, что каждый из пигментов обладает различной скоростью движения по адсорбционной колонке с фронтом растворителя и специфической адсорбционной способностью, происходит концентрация данного пигмента в определенном слое адсорбента. Слой адсорбента, содержащий тот или иной пигмент, вынимают из трубки или колонки. Пигмент выделяют из адсорбента с помощью какого-либо другого растворителя и количественно определяют, измеряя интенсивность окраски на спектрофотометре или колориметре. [c.435]

Адсорбенты. Выбор адсорбента до настоящего времени частично производится опытным путем. В то же время накапливается все больше данных о пригодности тех или иных адсорбентов для разделения веществ с определенным химическим строением, приводится несколько примеров применения специфических адсорбентов. В каждом отдельном случае выбирают такой адсорбент, который обладает наибольшей избирательностью по отношению к отдельным компонентам смеси, подлежащей разделению. Выбор адсорбента частично зависит от характера применяемых растворителей. Для анализа веществ с полярными группами в молекуле могут применяться окись алюминия и окислы других металлов. Для разделения кароти-1ЮНД0В обычно используются окись алюминия, гидрат окиси кальция, углекислый цинк и углекислый кальций, адсорбирующая способность которых уменьшается в приведенной последовательности. Стрейн исследовал последовательность адсорбции некоторых каротиноидов на колонках из сахара, целита и окиси магния. Относительная способность к адсорбции в значительной мере определялась избирательным сродством адсорбентов к характерным группам или частям молекул пигментов. Сахар преимущественно притягивает полярные гидроксильные группы ксантофиллов, а окись магния — ненасыщенные части молекул каротинов и ксантофиллов, а также и гидроксильные группы ксантофиллов. Стрейн применил колонки пз окиси магния для исследования ксантофиллов и хлорофиллов и показал, что распределение растворенных веществ в зонах адсорбции зависит от многих условий. Например, пигменты, образующие обычно одну окрашенную зону, могут образовать две зоны, в присутствии некоторых бесцветных примесей. Для разделения карбонильных соединений в виде 2,4-динитрофенилгидразонов был применен порошкообразный сернокислый магний.Брокманн показал, что растворимые в воде соли, например сульфаты меди и цинка, могут служить хорошими адсорбентами для хроматографического разделения производных азобензола. Сернокислый алюминий можно применять для разделения оксиантрахинонов, причем очень прочно адсорбированные вещества удается выделить только после растворения адсорбента в воде. [c.1491]

Определению витамина А перечисленными методами, как правило, предшествует подготовительная стадия, включающая щелочной гидролиз жироподобных веществ (см. сказанное выше об определении Р-каротина) и экстракцию неомыляе-мого остатка органическим растворителем. Многие пищевые продукты содержат вещества, которые, подобно каротиноидам, совместно с витамином А переходят в неомыляемую фракцию и мешают спектрофотометрическому, флюорометрическому и колориметрическому определению. В таких случаях проводят хроматографическое отделение витамина А от сопутствующих соединений, используя окись алюминия (активированная, влажность 4%), окись магния, кизельгель и др. При наличии большого количества мешающих анализу веществ иногда бывает необходима повторная хроматографическая очистка на колонках с подбором адсорбентов, обладающих различными поглощающими свойствами [И]. [c.203]

Количественные определения каротиноидов производятся различными методами, чаще всего визуальным колориметриро-канием. Для этого разделенные хроматографическим способом пигменты вытесняются подходящим растворителем, переводятся в бензин или в другой растворитель и колориметрируются. Стандартным раствором может служить раствор двухромовокислого калия, так называемый стандарт Лундборга-Русселя (0,036 %-ный раствор К2СГ2О7 соответствует по окраске раствору 2,08 С каротина в 1 мл петролейного эфира). [c.94]

Определение каротина в растительных itKaHHX слагается из тадии выделения путем экстрагирования, фазового распределения или хроматографической абсорбции и затем из колориметрического или спектрофотометрического измерения в элюате или фильтрате Весьма важно не допустить изомеризации на стадии выделения или экстрагирования, В последнее время наблюдает-ея стремление избежать применения методов, основанных на фазовом разделении, так как они не всегда дают количественный выход витамина и не специфичны для биологически активных каротинов. Удаление хлорофилла из растительного материала достигается с помощью самых разнообразных адсорбентов, вклю--чая гидрат окиси бария, карбонат кальция, кальцинированную соду, гашеную известь, дикальцийфосфат и обезжиренную костяную муку. [c.165]

Б. Г. Савинов и Г. М. Лущевская 54 предложили упрощенный метод хроматографического определения каротина в зеленых растениях. Б, Г. Савинов Г, С. Третьякова155 изучали димеризацию каротина при бромировании, применив адсорбцию на активированном сульфиде магния из бензинового раствора, а также на окиси магния и окиси алюминия. [c.183]

Хайфлосуперцел нашел применение и в тонкослойной хроматографии. Смесь этого сорбента с оксидом магния и сульфатом кальция образует прочные слои, элюирование на которых можно проводить с высокой скоростью. Разделение неполярных каротинов на таких слоях протекает с хорошим разрешением [369]. На таких слоях можно, например, за один прием разделить все каротиноиды моркови. Хроматографический анализ пигментов хлоропластов перца apsi um включает две стадии сначала на пластинках с целлюлозой разделяют хлорофиллы и ксантофиллы, а затем смесь каротинов хроматографируют на тонком слое оксида магния и хайфлосуперцела [370]. На слоях из оксида магния элюирование можно вести легким петролейным эфиром. ТСХ на этом сорбенте в сочетании с УФ-детектиро-ванием составляет основу метода количественного определения а- и р-каротинов в биомассе [371]. Для обнаружения небольших количеств р-каротина предложен метод хроматографии в тонком слое, сформированном из смеси карбоната кальция, оксида магния и гидроксида кальция, в системе ацетон — легкий петролейный эфир — хлороформ (5 5 4) [372]. Проведен сравнительный анализ эффективности разделения главных пигментов на слоях из кукурузного крахмала, целлюлозы и микрокристаллической целлюлозы. В системе гептан — этилацетат — пропанол полное разделение было достигнуто на слоях из крахмала [373]. [c.251]

Количественное разделение фенилаланина, лейцина, изолейцина, метионина, триозина и валина достигается на колонне, наполненной картофельным крахмалом. Для автоматического отбора большого числа фракций разработано особое приспособление. Отдельные фракции весьма малого объема анализируются затем микробиологическим путем [265]. Хроматографическое разделение применено теперь и в большинстве работ по изучению распределения каротиноидов в растительных тканях. Описаны методы определения как одного каротина — пигмента с активностью витамина А [50, 114, 231, 290] в альфа-альфа и тому подобных травах — так и вместе с витамином А — в смешанных кормах [72, 200]. Выбор подходящего растворителя на стадии элюирования позволил добиться отделения р-каротина от некоторых его стереоизомеров [26]. [c.164]

Простой метод, основанный на экстрагировании и перекристаллизации, предложен для выделения ликопина — главного пигмента томатов. Ликопин применяется в качестве эталона при спектрофотометрическом определении цвета различных продуктов, получаемых из томатов [332]. Разработаны условия хроматографического разделения стереоизомеров р-каротина на колонне, наполненной гидратом окиси кальция [312]. Отдельные фракции элюата анализируют колориметрически. С помощью этого метода при анализе люцерны было найдено, что около половины р-каротинов состоит из нео-р-каротинов В и 0. Эти последние имеют настолько низкую активность в качестве витаминов А но сравнению с алло-пграис-р-каротином, что, хотя и делается поправка на их присутствие, все же найденные величины активности могут оказаться выше истинных на 30% [313]. [c.169]