Величина рн различных буферных смесей

Довольно часто применяют буферную смесь уксусной кислоты и уксуснокислого натра (pH 3,0—6,0). Это так называемый ацетатный буфер, для приготовления которого необходимо взять 11,445 мл ледяной уксусной кислоты и растворить ее дистиллированной водой в мерной колбе на 1 л. Получают 0,2 М раствор. Готовят другой раствор — ацетат натрия. Для этого 27,212 г ацетата натрия ( H3 00iN a-3H20) растворяют дистиллированной водой в мерной колбе на 1 л. Получают тоже 0,2 М раствор. Сливая эти два раствора в различных соотношениях, получают смеси с различной, но определенной величиной pH (табл. 3). [c.34]

Так как различные аминокислоты в данном буферном растворе могут обладать разным по величине и знаку зарядом, то скорость и направление их перемещения в электрическом поле также будут отличаться. Благодаря этому смесь аминокислот можно разделить на отдельные компоненты. Число компонентов и их соотношение в смеси определяют после специальной обработки бумажных полосок, на которых проводится разделение (электрофореграмм). В результате обработки на электрофореграмме появляются окрашенные полосы, каждая из которых соответствует определенному компоненту. [c.148]

В основе электрофоретического метода лежит различие величины заряда разных белков сыворотки. Поэтому, если нанести каплю сыворотки на полоску фильтровальной бумаги, смоченной буферным растворо.м, и пропускать через эту полоску электрический ток, то отдельные белки будут передвигаться в электрическом поле с различной скоростью. Сыворотка крови представляет собой сложную смесь, из которой до настоящего времени удалось различными методами выделить более четырех десятков индивидуальных белков. При помощи электрофореза на бумаге эту сложную смесь можно разделить на 5 основных групп альбумины, а-ь аг-, р- и -глобулины. При ряде заболеваний наблюдается изменение соотношений между этими фракциями, что может иметь диагностическое и прогностическое значение. [c.111]

Буферные растворы (англ. buffer, от buff — смягчать удар) — растворы с определенной устойчивой концентрацией водородных ионов смесь слабой кислоты и ее соли (напр., СНзСООН и СНзСООМа) или слабого основания н его соли (напр., NH3 и NH4 I). Величина pH Б. р. мало изменяется прн добавлении небольших количеств свободной сильной кислоты или щелочи, при разбавлении или концентрировании. Б. р. широко используют в различных химических исследованиях. Б. р. имеют большое значение для протекания процессов в живых организмах. Напр., в крови постоянство водородного показателя pH поддерживается буферными смесями, состоящими из карбонатов и фосфатов. Известно большое число Б. р. (ацетатно-аммиачный буферный раствор, фосфатный буферный раствор, боратный буферный раствор и др.). [c.29]

Очень часто разделение проводят на бумаге, пропитанной буферными растворами. Так, Тевари [126] использовал бумагу ватман № 1, пропитанную или 2%-ным раствором сульфата аммония с pH 5,7 (С)) или 2%-ным раствором хлорида аммония с pH 6,6 (Сг), а в качестве подвижной фазы — смесь изобута-нол — уксусная кислота — вода (10 1 2). В его статье приведены величины Rf 29 алкалоидов различных типов, полученные в этих системах, а также указаны цветные реакции (табл. 3.19). [c.130]

В работе [32] приведены величины Rf 26 производных пурина и 22 производных пиримидина, полученные при хроматографировании на целлюлозе с 6 различными растворителями. Для одномерного хроматографирования наилучшие результаты дали следующие системы изомасляная кислота—0,5 и. раствор аммиака (10 6) и смесь 0,1М фосфатный буферный раствор (pH 6,8) — насыщенный раствор сульфата аммония—н-пропанол (50 30 1). Холгин-Юэзо и Кардино [33] свели в таблицу величины Rf 60 пуриновых оснований и дезоксирибонуклеозидов и 29 пиримидиновых оснований и дезоксирибонуклеозидов для 6 различных растворителей. [c.120]

В табл. 3.5 (т. 1, гл. 3) уже были даны значения Rj группы производных адреналина, полученные с четырьмя различными растворителями на слоях силикагеля, обработанных и не обработанных буферным раствором. Вальди [120] переводил адреналин в триацетилпроизводное прежде, чем проводить хроматографию на слоях силикагеля G, применяя в качестве растворителя смесь хлороформа и метанола (9 1). Кроме того, для разделения можно использовать смесь циклогексан—хлороформ—метанол—уксусная кислота (3 5 1 1) с этой смесью получены следующие величины Rj триацетилпроизводных адреналин 0,36, норадреналин 0,26 и эфедрин 0,51. Для обнаружения [c.211]

Наряду с ионообменной хроматографией для разделения белков широко применяют зонный электрофорез, основанный на различной подвижности заряженных белковых молекул в поле постоянного тока. Обычно деление происходит при прохождепии тока через буферный раствор, содержащий смесь белков, причем используется как электрофорез в растворе так и электрофорез на носителях. Для быстрого предварительного анализа белковой смеси удобен бумажный электрофорез В препаративных целях используют электрофорез в блоке В качестве носителя в этом случае можно применять крахмал, стеклянный и целлюлозный порошки, поливинилхлорид. Наибольшей разрешающей способностью для белков обладает электрофорез в геле По-видимому, здесь играет роль не только заряд частиц, но и их величина, т. е. гель действует и как опорная среда, и как молекулярное сито. Наряду с крахмальным используют агар-агаровый и полиакриламидный гели. [c.20]

В специально сконструированных приборах удается наблюдать и отдельно собирать эти передвигающиеся с различной скоростью белковые фракции. Ученый Тизелпус одним из первых разработал оптический метод наблюдения н регистрации передвижения белков в электрическом поле в буферном растворе. Если исследуемый материал представляет собой смесь белков, то электрофорез выявляет два или больше компонентов, передвигающихся с раз-личныхми скоростями, а величина площадей под различными пиками на электрофореграммах указывает на то, в какой пропорции присутствует в смеси тот или иной компонент. [c.11]