Этил метилированный

Окисление бромной водой превращает (+)-мальтозу в монокарбоновую о-мальтобионовую кислоту. Обработка последней диметилсульфатом и едким натром дает окта-О-метил-о-мальтобионовую кислоту. Гидролиз этой метилированный кислоты в кислом растворе приводит к двум продуктам 2,3,5,6-тетра-0-метил-о-глюконовой кислоте и 2,3,4,6-тетра-0-метил-о-глюкозе. [c.967]

Единственное модифицированное основание, обычно входящее в состав эукариотических ДНК,-это 5-метилцитозин (т С). В ДНК из разных типов эукариотических клеток метилированы от 2 до 7% остатков ци-тидина. (Единственное исключение-это ДНК Drosophila и некоторых других насекомых, которые практически не содержат т С.) Почти всегда т С встречается в составе динуклеотида pG частота метилирования С в паре СрО для различных организмов и типов тканей варьирует в пределах 20-80% (см. Дополнение 16.2). Этот динуклеотид представляет собой минипалиндром , в связи с этим метилирование в одной цепи всегда сопровождается метилированием соответствующего остатка С в комплементарной цепи. [c.226]

Соединение ХХХП1 и замещенные арильные аналоги претерпевают одновременное внутримолекулярное ацилирование в положение 1 и раскрытие тетразольного кольца с образованием 3-арил-5-азидо-1,2,4-триазолов [318, 319]. В противоположность этому метилирование соответствующих производ- [c.66]

В связи с этим метилирование диметилдихлорсилана приобретает существенное значение в процессах прямого синтеза, а суммарное количество триметилхлорсилана, образующегося по реакциям диспропорционирования и метилирования, может достигать 60—65%. Таким образом, при прямом синтезе метилхлорсиланов введение значительных количеств А1 или его соединений в контактную массу понижает выход диметилдихлорсилана и соответственно повышает выход триметилхлорсилана. [c.41]

Место, занимаемое нитрогруппами, устанавливается на основании результатов окисления обоих нитросоединений хромовой. кислотой в уксуснокислом растворе при этом метилированное ядро разрушается и образуется р-нитробензойная кислота. [c.228]

Сущность метода заключается в метилировании гидроксильных групп молекулы полисахарида (П 44) с последующим полным гидролизом полученного продукта (Я 45) образовавшиеся при этом метилированные моносахариды определяют методом хроматографии на бумаге. Метилированию подвергаются только свободные гидроксильные группы гидроксилы у атомов углерода, связывающих две молекулы сахара, не метилируются. Это можно продемонстрировать на примере метилирования целлюлозы. [c.294]

Эти метилированные вещества выделяются с мочой. [c.383]

Из приведенных формул видно, что карнозин и ансерин являются дипептидами, построенными из гистидина и Р-аланина. Ансерин — это метилированный карнозин, образуется из последнего путем перенесения метильной группы от 5-аденозилметионина (стр. 358). [c.409]

Еще один возможный механиз.м сохранения информации об активности генов в ходе клеточного деления — это метилирование ДНК- У прокариот метилаза узнает полуметилированный по одной цепи ДНК сайт после репликации и восстанавливает общую картину метилирования. Возможно, сходные механизмы действуют у эукариот. Ряд данных указывают на то, что ингибиторы метилирования ДНК активируют многие гены после одного или нескольких раундов репликации. В растительных клетках метилирование регуляторных участков некоторых генов приводит к их полному выключению на протяжении многих поколений. Это явление трудно отличить от истинной мутации. [c.258]

Метилированные производные, содержащие две или более свободные гидроксильные группы, образуются из моносахаридных остатков, у которых имеются точки разветвления полисахаридной цепи. Количественное определение этих метилированных продуктов позволяет установить степень разветвленности полисахарида и определить места ответвлений. В качестве примера ниже приводятся схематические формулы природного и метилированного глюкоман-нана кедра, а также продукты его гидролиза см. стр. 89). [c.88]

В связи с этим метилирование диметилдихлорсилана приобретает еущественнсе значение в процессах прямого синтеза, а суммарное [c.42]

Уже давно было известно, что в бактериальной ДНК среди миллионов обычных оснований (А, Т, G и С) встречаются основания, несущие дополнительные метильные группы. Биологическое значение этих метилированных оснований стало понятным в результате ряда важных открытий, которые оказали большое влияние на развитие генетики и, в частности, биохимической генетики. Для каждого вида бактерий характерна своя особая картина распределения метилированных оснований по ДНК, отличающая ее от ДНК других видов. Если ДНК какого-либо другого вида каким-то образом проникнет в живую бактериальную клетку, то она будет признана там чужеродной именно по отсутствию в ней специфической для данного вида картины распределения метилированных оснований, присущей ДНК клеток этого вида. В такой ситуации чужеродная ДНК будет разрушена специфической нуклеазой, которая расщепляет обе цепи ДНК непосредственно в том месте, где отсутствуют характерные для ДНК клетки-хозяина метилированные основания, или вблизи этого места. Таким образом чужеродные ДНК подвергаются рестрикции они разрушаются с помощью специфических ну-клеаз, вырабатываемых каждым видом бактерий. [c.880]

Из шести атомов водорода в В,Н( оказалось возможным заместить группами СНд только четыре атома в этих метилированных соединениях никогда не бывает двух групп СН , соединенных с данным атомом бора. Теория резонансных мостиков (но не теория структур с одноэлектронной связью) требует, чтобы на каждый атом бора всегда приходился по крайней мере один атом водорода. Таким образом, известно соединение В (СНд) , а не ВН (СНз)з или BHj (СНд), которые, очевидно, могли бы сконденсироваться с образованием BjHj ( Hg) и В,Н (СНд), соответственно. [c.571]

Гидролиз исчерпывающе метилированного полисахарида. Получение метилированных моносахаридных звеньев для их исследования проводится чаще всего метано-лизом — кипячением раствора в абсолютном метаноле, содержащем НС1 (гидролиз в водном растворе неосуществим вследствие плохой растворимости метили рованных полисахаридов в воде). При этом метилированные моносахаридные звенья превращаются в метилгликозиды, которые могут быть идентифицированы непосредственно методом газожидкостной хроматографии. [c.68]

Борогидрид урана представляет собой твердое вещество зеленого цвета, которое можно легко сублимировать в хорошем вакууме при комнатной температуре он имеет давление пара, равное 400 мм рт. ст. при 61,3° С. Это соединение является самым летучим из всех известных соединений урана (IV). Такой борогидрид умеренно устойчив на воздухе, при повышенных температурах разлагается с образованием UB . Как и ожидалось, U(BH4)4 энергично реагирует с водой и спиртами. Шлезингер, Браун и сотрудники [166] открыли метилпроизводные этого соединения и(ВН4)з(ВНзСНз) и и(ВНзСНз)4. По-видимому, эти метилированные производные обладают большей летучестью, чем борогидрид. [c.188]

Дуплет, который в отличие от этого метилирован только по одной из двух цепей, называют полуметилированным. [c.386]

Локализация гистонов относительно ДНК была установлена в работах А. Д. Мирзабекова и сотр. Для этого изолированные сердцевины или полные нуклеосомы обрабатывали диметилсульфатом в условиях, когда он реагировал с небольшим числом пуриновых оснований ДНК. При последующей обработке эти метилированные пурины отщеплялись, и освободившаяся альдегидная группа дезо-ксирибозы взаимодействовала с основными аминокислотами белка. ДНК при этом расщеплялась. В результате образовывался комплекс 5 -концевого фрагмента ДНК с белком, пришитым к его З -концу. Полученные ковалентно связанные комплексы ДНК и индивидуальных гистонов разделяли электрофорезом в полиакриламидном геле. Затем разрушали либо ДНК, либо белок и вели электрофорез в другом направлении. В результате можно было определить с высокой точностью природу гистона, вошедшего в комплекс, и длину ДНК от ее 5 -конца в нуклеосоме до места контакта с данным гистоном. [c.91]

В течение многих лет оставалось загадкой, почему в ДНК присутствует тимин, а не урацил, ведь оба основания спариваются с аденином. Единственное различие между ними - метильная группа тимина на месте атома водорода при С-5 в урациле. Почему это метилированное основание используется в ДНК, но не в РНК Напомним, что на метилирование дезоксиуридилата с образованием дезокситимидилата расходуется много энергии (разд. 22.16). Открытие сравнительно недавно активной системы, репа-рируюшей дезаминирование цитозина, служит убедительным ответом на эту загадку. Урацил-ДНК—гликозидаза не удаляет тимина из ДНК. Таким образом, метильная группа тимина служит меткой, позволяю-щей отличать его от дезаминированного цитозина. Если бы этой метки не было, урацил, стоящий на правильном месте, было бы невозможно отличить от урацила, образо- [c.36]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология