Бактериологическая посуда

Посуда для бактериологических работ должна быть чистой, а для многих исследований — и стерильной, так как использование загрязненной, плохо вымытой посуды может привести к получению неправильных результатов. [c.11]

Организация лаборатории. В зависимости от назначения микробиологические лаборатории могут быть бактериологическими, паразитологическими, микологическими, вирусологическими, иммунологическими и специальными (для диагностики особо опасных инфекций). Как правило, микробиологическая лаборатория включает следующие помещения 1) препараторскую для подготовки лабораторной посуды, приготовления питательных сред и проведения других вспомогательных работ 2) моечную 3) автоклавную, в которой стерилизуют питательные среды и лабораторную посуду 4) комнату для взятия материала от больных и носителей 5) комнаты для микроскопических и микробиологических исследований, включающие один или два бокса 6) помещения для обеззараживания отработанных материалов. Лабораторные животные, используемые для биологических проб, содержатся в отдельном изолированном помещении (виварии). [c.441]

Бактериологическая посуда стерилизуется в сушильном шкафу при 160° С в течение 2 ч или в автоклаве при 120° С и давлении [c.286]

В лаборатории, наряду с обычной химической посудой (различными склянками, воронками, фарфоровыми и стеклянными стаканами, цилиндрами и т. п.), должна быть специальная так называемая бактериологическая посуда. Эта полуда предназначена прежде всего для выращивания микроорганизмов. К числу необходимой Посуды относятся [c.182]

Бактериологическая посуда стерилизуется в сушильном шкафу при 160° С в течение 2 ч или в автоклаве при 120° С и давлении 1,5 атм. Другие предметы обжигаются в пламени спиртовки. [c.276]

Вся бактериологическая посуда должна быть перед стерилизацией тщательно вымыта и высушена. [c.184]

Для улучшения адгезионных свойств поверхности из полистирола ее подвергают специальной обработке, в то время как бактериологическая посуда не обрабатывается. Рабочая поверхность этих двух типов посуды различается по силе поверхностного натяжения и смачиваемости бактериологическая — гидрофобна, культуральная — гидрофильна. По некоторым данным [16], наиболее пригодными для культивирования клеток могут быть поверхности, смачиваемость которых свыше 560 мкН/см, в то время как у полиамидных, полиэфирных и у некоторых других поверхностей эта величина не превышает [c.39]

Для бактериологического анализа проба воды отбирается в стерильную посуду и анализируется по возможности немедленно, так как бактериологическое население мол<ет измениться вследствие размножения или отмирания бактерий. [c.286]

Основным требованием бактериологической техники является необходимость работы в стерильных условиях, т. е. посуда не должна содержать ни одной жизнеспособной клетки. [c.286]

Посуду, используемую для санитарно-бактериологического анализа, тщательно моют и высушивают. Для закрывания пробирок и флаконов пользуются ватными пробками, обернутыми слоем марли к завязанными на свободном конце ниткой. Хорошо подобранные пробки заворачивают в бумагу и привязывают к горлышку флакона. На горлышко флаконов надевают бумажные колпачки и обвязывают ниткой. Флаконы и пробирки заворачивают в бумагу. Чашки Петри и пипетки также заворачивают в бумагу или укладывают в металлические пеналы. Концы пипеток, которые берутся в рот, затыкают ватой.. [c.386]

Пробы воды для санитарно-бактериологического исследования отбирают в стерильную посуду (обычные бутылки) емкостью на [c.117]

Вся лабораторная посуда (склянки, бутылки, флаконы, пробирки, пипетки, чашки), используемая в санитарно-бактериологических лабораториях, должна выдерживать стерилизацию. Перед стерилизацией посуда должна быть тш,а-тельно вымыта и высушена. [c.183]

По первому варианту центральные базы служб эксплуатации не предусматриваются. Для технологического и санитарного контроля работы сооружений проектируются лаборатории с отделениями для физико-химического и бактериологического анализа и вспомогательными помещениями (мойка посуды, весовая, кладовая и др.) [c.427]

Вся посуда, применяемая для бактериологического анализа, должна быть стерильной. Пипетки подбирают по объемам — 1, 2, 5 мл и т. д., закрывают небольшими ватными тампонами, помещают в специальные металлические пеналы или завертывают в бумажные пакеты. Пробирки закрывают ватными пробками, завертывают в бумагу или ставят в корзины из металлической сетки и обвязывают сверху бумагой, чашки Петри стерилизуют завернутыми по 4 шт. в бумагу или в металлических футлярах. Склянки закрывают ватными пробками, а поверх горлышка надевают бумажные колпачки, которые обвязывают шпагатом. Стеклянные пробки завертывают в бумагу и привязывают к горлышку склянки. Резиновые пробки завертывают в бумагу и стерилизуют в автоклаве. чУ Стерилизация сух им жаром. Приготовленную для стерилизации посуду и металлические предметы укладывают в сушильный шкаф и стерилизуют сухим жаром в течение 1 ч при 160 С. По окончании стерилизации обогрев прекращают, а после охлаждения шкафа до 60 С стерильную посуду выгружают и хранят в защищенном от пыли помещении (шкафу). [c.185]

Склянки и применяемая посуда должны быть абсолютно чистыми. Склянки и пробки тщательно очищают хромовой смесью. При сушке в них не должна попадать пыль. Для этой цели очень хорошо пользоваться сушильным шкафом (бактериологический шкаф для стерилизации сухим жаром). Если такового нет или пользоваться им невозможно, склянки следует ставить горлышком вниз в отверстия доски-сущилки. Запрещается сушить склянки на колышках. Перед анализом склянки желательно пропаривать. [c.57]

Место взятия (выемки) пробы определяют в зависимости от цели исследования и характера водоисточника. При отборе пробы из кранов водопроводных сооружений воду спускают при полностью открытом кране в течение не менее 10 мин. Посуду, в которую берут пробу, предварительно ополаскивают не менее двух раз водой, подлежащей анализу, затем наполняют водой до верха, а перед тем, как закрыть пробкой, сливают немного воды, оставляя под пробкой небольшой слой воздуха. При взятии пробы для санитарно-бактериологического анализа перед спуском воды стерилизуют водопроводный кран, обжигая его пламенем газовой горелки или протирая ватным тампоном, смоченным спиртом. Перед самым моментом взятия пробы вынимают склянку или пробирку из бумажного пакета. Пробы воды объемом 10 мл для определения общего числа бактерий и 400—500 мл для определения количества кишечных палочек должны быть исследованы не позднее чем через 2 ч после взятия пробы, а в крайнем случае через 6 ч, но при условии сохранения их при температуре от 1 до 5° С. [c.255]

Ниже приведен список основного оборудования и аппаратуры, которыми необходимо снабдить химико-бактериологическую лабораторию перегонный куб, автоклав, сушильный шкаф, два термостата, две муфельные печи, баня водяная, три электроплитки, весы аналитические, весы технические, микроскоп, мутномер, потенциометр, два фильтрационных прибора для мембранных фильтров, химическая посуда разная (набор). [c.442]

В частности, для этого использовались загрязнения, меченные (полученным из азотсодержащих соединений в ядерном реакторе). Меченые масла, жиры и воска различных типов также вводятся в загрязнения на ткани, причем является наиболее распространенной меткой для веществ этого типа вследствие большого периода его полураспада, относительно малой вредности и химической устойчивости в большинстве соединений. Для этой цели применяются также облученные естественные загрязнения. Радиоактивный фосфор был использован для мечения бактерий при разработке санитарных оценок процессов мытья [20]. Меченые бактерии применяются для исследования моющего действия как на ткани, так и на посуде, поскольку количество оставшихся после стерилизации бактерий значительно легче определить счетчиком активности, чем методом бактериологических культур. Наибольшее значение радиоактивные загрязнения имеют при исследовании процессов очистки твердых поверхностей, в частности.лри мытье посуды и очистке металла, где приходится определять малые количества остающихся загрязнений, что весьма затруднительно при использовании обычных методов. При изучении процессов очистки металла широко применяются меченые масла и жирные кислоты. Если эти загрязнения достаточно радиоактивны, то можно следить за их последовательным удалением с поверхности металла еще долгое время после того, как эта поверхность на вид становится чистой и полностью смачиваемой водой [21]. [c.357]

Для оценки относительной эффективности действия составов для машинной мойки были разработаны лабораторные методы, включающие визуальную оценку чистоты вымытой посуды, измерения прозрачности стеклянных изделий, определения степени очистки от загрязнений при помощи радиоактивных изотопов и бактериологические измерения [17]. Эти измерения показали, что относительно малые количества поверхностноактивных веществ значительно улучшают при мытье посуды действие щелочных составов, которые обычно выпускаются в виде порошков или в форме брикетов (имеются специальные брикетирующие машины) ]18]. Изменение концентрации моющего средства в ванне в течение процесса мойки определяется измерением электропроводности, но иногда применяются и индикаторы, изменяющие цвет, если щелочность раствора слишком сильно понижается [19]. [c.407]

Для выделения пресноводных цианобактерий (сине-зеленых водорослей) пробы из прудов, ручьев или водных резервуаров вносят в пробирки со средой BG-11 (разд. 8.5.8). Для выделения морских цианобактерий используют среду MN (разд. 8.5.32) если некоторые из них плохо растут на этой среде, то предпочтительнее пользоваться средой ASN-III (разд. 8.5.2). Всю стеклянную посуду следует вручную и хорошо прополаскивать водопроводной водой, концентрированной азотной кислотой и затем деионизованной водой. Накопительную культуру инкубируют в водяной бане на свету при 35 °С при этой температуре подавляется рост большинства водорослей. Пользуются флуоресцентной лампой или лампой накаливания с освещенностью 2000 — 3000 лк. Для некоторых цианобактерий освещенность следует снизить до 500 лк или ниже. Накопление культуры периодически контролируют до тех пор, пока не убеждаются, что начался рост цианобактерий. Тогда их высевают на поверхность среды, содержащей 2% агара бактериологической степени очистки. Чашки инкубируют в условиях постоянной освещенности (<500 лк) при 25 °С на воздухе или в атмосфере, слег ка обогащенной СОг для предотвращения испарения в качестве камер следует использовать прозрачные пластмассовые коробки, например из-под овощей. С помощью препаровальной лупы выявляют компактные, сильно пигментированные колонии неподвижных циано [c.289]

Для мытья посуды, предназначенной для бактериологических, фармакологических и биологических исследований, не следует использовать хромовую кислоту из-за биологического действия ионов хрома [6]. [c.34]

Техника безопасности. Ввиду того что возбудители туберкулеза обладают высокой контагиозностью (инфицирующая доза составляет менее 10 клеток) и устойчивостью к действию факторов внешней среды, при работе с материалом, содержащим микобактерии, и чистыми культурами существует опасность лабораторного заражения и распространения возбудителя. Поэтому необходимо выполнять исследование с особой предосторожностью. Пробирки и другую посуду тщательно укупоривают. Все манипуляции, при которых может образоваться аэрозоль, содержащий туберкулезные бактерии (открывание емкостей с материалом и культурами, прожигание бактериологических петель, пипетирование, центрифугирование жидкостей и др.), надо проводить по возможности в ламинарном боксе (при отрицательном давлении), использовать спецодежду и средства защиты органов дыхания (например, респиратор). Поверхности в лаборатории обрабатывают дезинфицирующим раствором и ультрафиолетом. Предпочтительно использовать одноразовые инструменты, петли прокаливать в специаль- [c.207]

Обработка посуды. Успех в эксперименте будет обеспечиваться не только составом используемого стекла, но и качеством подготовки посуды к работе. Посуда для культивирования клеток должна быть чистой физически, химически и бактериологически. Существует ряд общих этапов подготовки посуды для работы обеззараживание после контаминации микроорганизмами, обработка детергентом, стерилизация. [c.34]

Пекарские дрожжи S. erevisiae являются наиболее изученными в биохимическом и генетическом плане эукариотическими организмами. Это обусловлено тем, что для них применимо большинство методов, разработанных для манипуляций с бактериальными культурами. Дрожжи можно выращивать на простых питательных средах, в том числе агаризованных, в обычной бактериологической посуде и с использованием стандартного бактериологического оборудования. Методология работ с культурами клеток животных и растений существенно сложнее, и при этом необходимы специальные дорогостоящие питательные среды и оборудование. Кроме простоты культивирования дрожжи характеризуются высокой скоро- [c.286]

Бактериологическое исследование. Материалом для исследования служат фекалии, которые берут у больного трижды в первые сутки от начала болезни с интервалом 3 —4 ч, а также рвотные массы, промывные воды желудка и кишечника, кровь (при сепсисе), гной (при гнойно-воспалительных процессах), отделяемое слизистой оболочки зева, носа, моча, мокрота (при пневмонии) от трупов — содержимое кишечника, кровь, кусочки селезенки, легких и других органов. При подозрении на пишевую токсикоин-фекцию исследуют также остатки пищи, смывы с посуды и рук обслуживающего персонала, медикаменты, применяемые per os. [c.141]

Материалом для выделения возбудителей дизентерии служат испражнения больных, реконвалесцентов, носителей, реже — рвотные массы и промывные воды желудка и кишечника. Шигел-лы могут быть обнаружены в смывах с рук, посуды, различных предметов (игрушки, дверные ручки и др.), в молоке и других пищевых продуктах. Результаты микробиологического исследования во многом зависят от правильности взятия материала. Пробы кала (в первую очередь слизистые примеси) из судна (горшка) или тампоном (петлей) непосредственно из прямой кишки стараются отбирать до начала этиотропной терапии в посуду без следов дезинфицирующих средств. Если невозможно сразу произвести посев на плотные дифференциальные среды, взятый материал немедленно засевают на среды обогащения, помещают в термостат или хранят в глицериновом консерванте на холоде до отправки в лабораторию. Ввиду морфологического сходства шигелл с другими энтеробактериями световая микроскопия не применяется, основным методом диагностики является бактериологический. [c.153]

Для проведения бактериологических анализов требуется обашрное лабораторное оборудование, включающее стерилизатор, автоклав, инкубатор, склянки для проб, бродильные трубки с перевернутыми ампулами, склянки для разведения, чашки Петри и держатели для чашек, градуированные пипетки и держатели для них, металлическую ииоку-лирующую петлю, среды для посева культур и другие вспомогательные приспособления. Стерилизатор, представляющий собой горячевоздушную печь, используется для стерилизации стеклянной посуды, пустых склянок для проб, пипеток и чашек Петри. Нагревание до 160—180°С в течение 1,5 ч убивает микробные клетки и споры. Автоклав применя- [c.64]

Посуда и аппаратура для постановки серологических реакций. Посуда. Пробирки бактериологические или химические, агглютинационные, преципитационные и центрифужные. Колбы Эрленмейера и плоскодонные. Пипетки пастеровские и пипетки (без вредного пространства) объемом 10 и 5 мл с делениями по 0,1 мл пипетки объемом 1—2 мл с делениями по 0,01 мл. Градуированные цилиндры различной емкости. Посуда для серологических реакций должна быть чистой и сухой. Для обработки ее не должны применяться дезинфицирующие средства, кислоты и щелочи. Посуду кипятят в простой воде. Вымытые пипетки просушивают этиловым спиртом. Стерилизовать серологическую посуду не обязательно. [c.114]

Оборудование самой маленькой лаборатории водоочистной установки может состоять только из нефелометра, компаратора остаточного хлора, рН-метра и стеклянной посуды для определения жесткости и щелочности. Полностью оборудованная лаборатория для водопроводной станции, обслуживающей район какого-либо крупного города, включает инфракрасные, ультрафиолетовые и атомно-абсорбционные спектрофотометры, газовый хроматограф, амперометрический титратор и измеритель электропроводимости, а также лабораторные печи и стеклянную посуду. Для проведения бактериологических анализов необходимы термостаты, автоклавы, специальная посуда и среды для культур. Если выше по течению реки расположена атомная электростанция, возникает необходимость в радиохимическом надзоре и в приобретении некоторого специального оборудования. Лаборатории, обслуживающие крупные системы водоснабжения, обычно возглавляются химиком с университетским образованием или инженером-химиком. В штат лаборатории иногда входит еще несколько специалистов и два или три лаборанта (в зависимости от объема программы испытаний). Лабораторный персонал может также быть частично или полностью занят на очистных сооружениях, выполняя там функции контроля. Оменные операторы могут быть обучены проведению анализов, например на мутность, щелочность и остаточный хлор. Стандартный подсчет колиформ может также выполняться операторами, прошедшими соответствующее обучение. Преимущество обучения операторов лабораторным приемам состоит в том, что рабочая смена операторов продолжается целые сутки, тогда как лабораторный персонал работает только 8 ч в день. Круглосуточное наблюдение важно потому, что оно позволяет обнаружить внезапные изменения в качестве исходной воды. [c.234]

Пробы воды, по которым проводятся бактериологические анализы, отбираются в стерильную посуду, чаще специалистами-бак-териологами пробы, отобранные не специалистами, обычно дают повышенное содержание бактерий. [c.97]

Поскольку в воде шахтных и буровых колодцев, даже при неблагоприятной санитарной обстановке, трудно ожидать заметных активностей (исключая районы урановых или торцевых месторождений), работы по отбору проб должны выполняться особенно тщательно, не допуская никаких погрешностей, способных в какой-то мере привести к попаданию активностей в воду извне (тщательно проверенная посуда, пробка, батометр, ведро и т. п.). Объем пробы должен быть не менее 1 л. Одновременно отбирают пробы для санитарнохимического и бактериологического анализов. [c.27]

При невозможности комплектования лаборатории материалами на весь объем исследований можно производить мьггье, подготовку к стерилизации, стерилизацию посуды на месте (либо в автоклаве при (126 2) °С 30 мин, либо в сушильном шкафу при (160 5) °С в течение 1 ч). В этих случаях обеззараживание бактериологического материала проводят в автоклаве при (126 2) °С 30 мин или кипячением в течение 30 мин. [c.240]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология