Анализ бродильной

Таблица 7. Приборы для анализа продуктов пищевой и бродильной промышленности

Бродильный метод — посев воды в глюкозо-пептонную среду (Эйкмана) для накопления микробов группы кишечной палочки к установления их присутствия в воде. Результаты анализа выражаются в виде коли-титра, т. е. наименьшего объема воды в миллилитрах, содержащего кишечную палочку. [c.121]

Государственным общесоюзным стандартом, помимо метода мембранных фильтров, предусмотрено на равном основании выполнение анализа двухфазным бродильным методом. [c.135]

Этот метод предложен М. Г. Киченко и введен в ГОСТ 5216-50 в 1955 г. вместо классического трехфазного метода постановки бродильных проб. Он включает два этапа анализ длится 24—36 часов. [c.136]

В том случае, когда не требуется особой срочности в производстве анализа, пересев с глюкозо-пептонной среды на РДА можно делать не через 7—12 часов,, а позднее, но не позже чем через 24 часа. Если пересев с глюкозо-пептонной среды на РДА делается через 16—18 часов, то дальнейшее выдерживание бродильных сосудов с ГПС в термостате не производится. [c.137]

Проведение анализа трехэтапным бродильным методом [c.147]

Вторичная бродильная проба при анализе минеральных вод инкубируется в течение 24 часов при 37°С. [c.169]

При определении качества воды необходимо вычислить количество присутствующих колиформных бактерий, чтобы определить, отвечает ли вода установленным стандартам. Для подсчета положительных колиформных анализов (предположительных, подтверждающих и фекальных) используется (Множество бродильных трубок. При подсчете применяют метод статистической обработки результатов анализов, проводимых с последовательным разбавлением пробы. Результаты исследований представляют в виде наиболее вероятного числа колиформных бактерий (НВЧ). Например, НВЧ 10 означает, что на 100 мл воды приходится 10 колиформных бактерий. [c.70]

Кроме определения сахара и сухих веществ в разнообразных пищевых продуктах (для которого предназначаются описанные выше рефрактометры РПЛ), весьма большое практическое значение имеют рефрактометрические методы анализа полупродуктов и продуктов бродильной и масло-жировой промышленности. Специально для анализа таких объектов предназначаются выпущенные Киевским заводом контрольно-измери-тельных приборов рефрактометры повышенной точности прецизионный пивной рефрактометр РПП и масличный рефрактометр РМ (рис. 89). Основные данные этих приборов приводятся в табл. 15. [c.213]

Посев. После записи результатов второго этана анализа, материал из подозрительных колоний на среде Эндо пересевается в бродильные пробирки с разве,денной 1 1Q средой Эйкмана. Пересеваемые колонии дол.кны быть хорошо изолированы и чисты. [c.392]

Бродильная проба анализа почвы на фекальное загрязнение состоит из 3 этапов. [c.568]

Посев почвы на бродильные среды проводят следующим образом. Навески в 1,0, 0,5 и 0,1 г вносят непосредственно в пробирки со средой. Посев меньших количеств почвы делают из соответствующих разведений почвенной суспензии. При анализе чистых почв нецелесообразно брать более слабые разведения (1 100 и 1 1000). При работе с загрязненными почвами используют более сильные разведения, вплоть до 1 1 ООО ООО. [c.568]

В наших опытах при сопоставлении бродильных проб, сделанном с целью установления фекального загрязнения почвы при температурах 37 и 42°, было найдено, что как при той, так и при другой температуре результаты анализа практически равноценны. [c.569]

Недавним примером применения изотопного разбавления может служить анализ бродильной культуры гиббереллиновой кислоты [63]. Работа была предпринята с целью улучшения производства этого стимулятора роста. В качестве изотопного индикатора использовали дейтерий. Он был введен в молекулу гиббереллиновой кислоты очень просто — при обработке дейтероуксусной кислотой в присутствии платинового катализатора. Вода, полученная при сожжении образца кислоты, выделенной из бродильной культуры, использовалась для определения распространенности изотопа. [c.114]

Анализ газов, образующихся при брожении в сточных водах, посредством газовой хроматографии. Часть 8. (.Анализ бродильного газа метантенков.) [c.240]

Второй день анализа. 1. Произвести подсчет колоний, выросших на МПА при 37°С, записать результаты в журнал анализов. 2. Учесть результаты посева на глюкозо-пептонной среде и независимо Ът признаков роста из всех бродильных сосудов произвести йСресев на розоловый. дифференциальный агар (РДА). [c.122]

Учесть результаты постановки вторичной бродилЬной, пробы.. Данные записать в журнал анализов. Зыразить резз Л ьтаты анализа, в виде коли-индекда и внести их в журнал. Оформить результат анали-з а исследуемой воды. [c.123]

Учетом результатов вторичной бродильной пробы исследование воды методом мембранных фильтров заканчивается (рис. 22). Окончательные результаты анализа выражаются в виде коли-индекса. Для этого суммируют количество колоний кишечных палочек, выросших на мембранных фильтрах. Церечисляя это количество на количество их в 1 л воды, высчитывают коли-индекс. [c.134]

Для проведения бактериологических анализов требуется обашрное лабораторное оборудование, включающее стерилизатор, автоклав, инкубатор, склянки для проб, бродильные трубки с перевернутыми ампулами, склянки для разведения, чашки Петри и держатели для чашек, градуированные пипетки и держатели для них, металлическую ииоку-лирующую петлю, среды для посева культур и другие вспомогательные приспособления. Стерилизатор, представляющий собой горячевоздушную печь, используется для стерилизации стеклянной посуды, пустых склянок для проб, пипеток и чашек Петри. Нагревание до 160—180°С в течение 1,5 ч убивает микробные клетки и споры. Автоклав применя- [c.64]

Колиформная группа бактерий определяется как совокупность аэробных и факультативно-анаэробных, неспорообразующих, грамотри-цательных палочек, вызывающих брожение лактозы с образованием газа в течение 48-часовой инкубации при 35°С. Первоначальный анализ на колиформы — предположительный, он основан на выделении газа из лактозы. Десятимиллилитровые порции водной пробы переносят с помощью стерильных пипеток в подготовленные бродильные трубки. Трубки содержат лактозу или лауриновую триптозу, бульон и перевернутые ампулы (сборники газа). Инокулированные трубки помещают в термостат с температурой 35 0,5°С. Рост бактерий с выделением газа, обнаруживаемого по появлению пузырьков в перевернутой ампуле, считается положительным анализом, показывающим, что колиформные бактерии могут присутствовать. Отрицательная реакция (отсутствие роста или рост без газа) исключает присутствие бактерий колиформной группы. [c.66]

Так называемый подтверждающий анализ проводят для подтверждения или отрицания присутствия колиформ в пробе, предварительный анализ которой дал положительный результат. При этом используют одну из двух процедур, показанных на схеме на рис. 3.5. Проволочную петлю применяют для пересева колоний из лактозной трубки с положительным результатом после 24- или 48-часовой инкубации в бродильную трубку, содержащую бульон из бриллиантовой зелени, лактозы и желчи. Если рост бактерий с выделением газа происходит в пределах 48 ч при 35°С, присутствие колиформ подтверждено. Если газ не выделяется, анализ считается отрицательньш. Другая методика проведения подтверждающего анализа заключается в штриховом посеве культуры из пробы с положительным предположительным анализом на среду Эндо или ЭМГ в чашках Петри с помощью стерильной проволочной петли. Инокулированные чашки подвергают инкубации в течение 24 ч при 35°С. Колонии бактерий, развивающиеся на поверхности твердых сред и отличающиеся зеленым блеском, считаются типичными колиформными ко- [c.66]

Рис. 3.6, Предположите.аьный и подтверждающий анализы на колиформную труппу. Показаны бродильные трубки (слева направо) трубки со стерильнЫ(М ла1Ктозным бульоном рост с выделением газа (положительный анализ) трубки со стерильным бульоном из бриллиантовой зелени, лактозы и желчи рост без выделения газа (отрицательный анализ). В чашке Петри (слева)—стерильный Эндо-агар в чашке справа видны типичные колонии колиформ

Методику анализа, схематически показанную на рис. 3.7, нельзя использовать для непосредственной изоляции колиформ из воды, но ее применяют как подтверждающую после предположительного анализа. Сначала лроязводят посев замеренного объема пробы в бродильные трубки, содержащие лактозу или лауриново-триптозный бульон. Трубки, в которых наблюдается рост бактерий с выделением газа спустя 24 или 48 ч, используют для инокуляции культуры в среду, содержащую бульон ЕС. В этой среде пробу подвергают инкубации в водяной ванне при температуре 44,5 0,2°С, погружая трубку до верхнего уровня среды. Из-за жестких требований к температурному режиму, необходимому для проведения анализа на фекальные колиформы, стандартные термостаты, обычно используемые в бактериологических анализах, неприемлемы. Рост с выделением газа говорит о присутствии фекальной колиформной группы если же газ не выделяется, то это свидетельствует об отсутствии последней. [c.69]

Обычно при определении НВЧ используют стерильные пипетки с делениями, соответствующими 0,1 мл, стерильные склянки для разведения с навинчивающимися крышками, содержащие 99 мл воды, и стеллаж, в каждом из шести рядов которого устанавливают по пять бродильных трубок с лактозным бульоном. На рис. 3.8 показана подготовка анализа. Порции пробы объемом 10 мл помещают с помощью стерильной пипетки в каждую из пяти бродильных трубок, затем вводят по 0,1 мл испытуемой воды в каждую трубку второго набора. Для следующего, более высокого разведения (третьего), требуется только 0,01 мл пробы, которую точно отмерить иипеткой невозможно. Поэтому 1,0 мл пробы помещают в склянку для разведения, содержащую 99 мл стерильной воды, и перемешивают. Теперь порции объемом 1,0 мл, содержащие 0,0] мл пробы исследуемой воды, могут быть перенесены пипеткой в третий ряд трубок. В трубки четвертого ряда вводят по 0,1 мл из той же самой склянки для разведения. Далее 1,0 мл пробы из первой склянки для разведения переносят во вторую склянку, содержащую 99 мл стерильной воды, для еще одного 100-кратного разведения. Порции из этой склянки вводят с помощью пипетки в пятый и шестой ряды трубок. После инкубации в течение 48 ч при температуре 35°С трубки исследуют на появление газа и регистрируют число положительных реакций для каждого из последовательных разведений. [c.70]

Метод состоит в пропускании замеренного объема воды через фильтрующую мембрану, достаточно тонкую, чтобы задержать бактерии, и последующего помещения фильтра на питательную среду в чашку Петри. Каждая бактерия, задержанная на фильтре, вырастает и образует небольшую колонию. Для определения количества колиформ, присутствующих в отфильтрованной пробе, подсчитывают количество колоний и выражают это значение в числовых единицах на 100 мл воды. Методика с применением мембранного фильтра широко распространена при исследованиях качества воды, так как она требует намного меньше лабораторного оборудования, чем стандартная методика с использованием множества бродильных трубок. Разработана конструкция нормативного мембранного фильтровального прибора для проведения анализов на ко-лнформы в полевых условиях. [c.72]

При анализе проб воды объемом 10 мл, проводимом по методике определения содержания колиформ в бродильных трубках, не более чем в 10% проб (в любой месяц года) может быть отмечено присутствие бактерий колиформной группы. Если испытуемые пробы имеют объем 100 мл, то положительные результаты анализов (наличие колиформ) должны наблюдаться не более, чем в 60% всех проб. Когда используется методика определения содержания колиформ с помощью мембранных фильтров, то среднее арифметическое плотности колиформ из всех стандартных образцов, испытанных в течение месяца, не должно превышать 1 на 100 мл. [c.118]

В качестве примера можно упомянуть изделия и полуфабрикаты бродильной промышленности спиртованные соки, пиво, брагу, настойки, вина, ликеры. Перечисленные продукты с достаточным приближением можно считать тройными смесями спирта, воды и сухого вещества (экстрактивных веществ, сахара). Быстрое определение этих компонентов производится рефрактоденсиметрическими методами (путем измерения показателя преломления и плотности). Расчет производится так же, как для типичных тройных систем, графически или с помощью систем линейных уравнений [88—92, 99, 101, 103]. Для рефрактоденсиметрического анализа полупродуктов и продуктов бродильной промышленности имеются подробные расчетные таблицы [92] и официальные инструкции [94—97]. [c.49]

Для усксре п я санитарно-бактериологического анализа разработаны приемы, позволяющие учитывать результат до образования колоний, видимых невооруженным глазом, или появления признаков роста в жидких средах, М, Г. Киченко (1948) было предложено при исследовании воды на наличие БГКП бродильным методом делать высевы из сред накопления через 5—6 ч до помутнения среды и газообразования. [c.65]

Двухфазный бродильный метод с применением розо-лового дифференциального агара (РДА) (по М. Г. Киченко). Не требует специальных приборов и позволяет значительно сократить время исследования метод определения БГКП с использованием РДА. Этот оригинальный, простой метод был разработан М. Г. Киченко (1948, 1962). Метод щнроко использовался в практике контроля качества воды в нашей стране (ГОСТ 5216-55). Анализ продолжается 19 ч. [c.119]

Метод мембрагшых фильтров устраняет многие недостатки и затруднения при анализе воды. Время анализа сокраш,ас1ся на сутки благодаря исключению этапа накопления бактерий в жидких средах. Окончательный результат вместо 3—4-х суток (трехэтаиный бродильный метод) может быть получен через 24 ч, а в ускоренном варианте с разработкой соответствуюш,их сред с повышенными питательными и дополнительными дифференцирующими свойствами — через 10—12 ч. Дальнейшее сокращение времени исследования может быть достигнуто путем микроскопического наблюдения зачаточных микроколоний. В этом случае посевы выращивают всего 5—8 ч, затем фильтры снимают с питательной среды и обрабатывают так же, как препараты для прямого счета по Разумову с окраской эритрозином и последующим подсчетом колоний под лупой и.ли микроскопом (А. С. Разумов, 1933 К. К. Барсов, 1937 Е. Ю. Зуйкова, 1959, и [c.122]

Ускоренный одноэтапный метод определения лактозоположительных кишечных палочек. После широкой проверки рекомендован к использованию ускоренный одноэтапный метод определения лактозоположительных кищечных палочек, который сокращает продолжительность исследования на 6—24 ч, а по сравнению с Меледународ-ными стандартами (1973) —на 48 ч. Помимо сокращения времени анализа, метод существенно его упрощает (под-тверлсдающая бродильная проба на лактозе заменена экспрессным оксидазным тестом). Введение оксидазного [c.133]

Выполнение анализа. 0,1 мл бродильного сока вьшаривают на часовом стекле досуха (водяная баня). Сухой остаток растворяют в 10 каплях смеси 0,5 мл уксусного ангидрида и 2,5 мл пиридина. В присутствии лимонной кислоты появляется карминовокрасное окрашивание. i [c.538]

Примечание, Перегрев термошага свыпте ведет и гибели анализа. Запись результатов. Через 24 часа бродильные сосуды с испытуемо водой проверяются, и полученные результаты регпстрпруютсн в журнале [c.392]

Наличие газа и. мути в бродильных сосудах, в случае анализа воды, иодаваем-уй в сеть, требует перехода к следующему этапу анализа. [c.392]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология