Справочник химика 21

Химия и химическая технология

Статьи Рисунки Таблицы О сайте English

Лигирование

    Зачем рестрицированную плазмидную ДНК перед лигированием часто обрабатывают щелочной фосфатазой  [c.79]

    В этом случае реакция лигирования имеет биохимические особенности и ее эффективность ниже, чем при сшивке по липким концам. [c.117]

    Селективные маркеры дают возможность вводить в клетки мле-копитаюших любой ген, заранее лигированный с клонированным селективным маркером. [c.126]

    Можно синтезировать и другие олигонуклеотидные зонды, полностью соответствующие последовательности с мутантным 106-м нуклеотидом. При таком наборе зондов лигирование будет происходить в случае их отжига с мутантной ДНК-мишенью и не будет в случае отжига с нормальной мишенью. Таким образом, метод ПЦР/ЛОЗ различает две ситуации лигирование зондов и отсутствие лигирования. [c.198]


    Эту проблему решали разными путями. Например, сконструировали пакующую клеточную линию, содержащую Е1-область и ряд аденовирусных генов, которые не входят в состав трансдуцирующей ДНК и не попадают в клетки-мишени. Затем удалось добиться того, чтобы ни один из аденовирусных генов не включался в трансдуцирующую ДНК. Для этого линеаризовали плазмиду Е. соН (28 т. п. н.), которая обеспечивает экспрессию одного или большего числа терапевтических генов и не содержит аденовирусных генов, и пришили к ее концам фрагменты ДНК (по 4 т. п. п.), содержащие точку начала репликации аденовирусной ДНК, последовательность, ответственную за ее упаковку, и сигнал терминации. Длина продукта лигирования (36 т. п. н.) соответствует длине полноразмерного генома аденовируса. Затем полученным продуктом и аденовирусным гено- [c.494]

    На завершающих стадиях раунда репликации образуются две почти полные кольцевые молекулы, содержащие по одной недостроенной дочерней цепи и по одной полной (кольцевой) родительской цепи. При этом родительские цепи остаются зацепленными друг за друга (рис. 140). Затем происходит достаривание дочерних цепей и лигирование их концов. Образовавшиеся два ковалентно-непрерывных кольцевых дуплекса расцепляются при помощи клеточной ДНК-топоизомеразы И. Расцепление колец может происходить и до завершения синтеза дочерних молекул. [c.272]

Рис. 4.6. ДНК-лигаза Т4 образует фосфодиэфирные связи между 5 -фосфатными и 3 -гидроксильными группами в месте разрыва в остове двухцепочечной ДНК. А. Ли-гирование липких концов. Б. Лигирование тупьгх концов. Рис. 4.6. ДНК-лигаза Т4 образует <a href="/info/33459">фосфодиэфирные связи</a> между 5 -фосфатными и 3 -<a href="/info/5243">гидроксильными группами</a> в месте разрыва в остове двухцепочечной ДНК. А. Ли-гирование липких концов. Б. Лигирование тупьгх концов.
    Как уже было сказано, ряд фагов (фХ174, 04, М13 и др.) имеют однонитевой кольцевой геном. Вскоре после попадания такого генома в клетку он превращается в кольцевой ковалентно-непрерывный дуплекс (или, как говорят, в репликативную форму). Эго превращение включает ряд стадий 1) образование затравки 2) элонгацию комплементарной цепи, осуществляе.мую клеточной ДНК-полнмеразой П1 3) удаление РНК-затравки, которое производится, по-видимому, за счет 5 -экзонуклеазной активности клеточной ДНК-полимеразы I 4) достраивание комплементарной цепи 5) лигирование концов комплементарной цепи ДНК-лигазой и 6) внесение сверхспиральных витков в ковалентно-непрерывный дуплекс прн помощи гиразы. Обратим внимание, что все Арменты, обеспечивающие перевод родительского генома в репликативную форму, имеют клеточное происхождение. [c.272]


    Совр. методы хим. синтеза Н.к. позволяют получать крупные фрагменты ДНК, в т.ч. целые гены. Методич. основы хим.-ферментативных методов синтеза ДНК разработаны X. Кораной. Они включают 1) хим. сиитез комплементарных, взаимоперекрывающихся олигонуклеотидов, из к-рых затем в результате комплементационных взаимод. выстраиваются дуплексы-фрагменты молекулы синтезируемой ДНК с несовпадающими разрывами в обеих цепях 2) соединение (лигирование) таких олигонуклеотидов в составе дуплекса с помощью фермента Т4 ДНК-лигазы. Сборку протяженных ДНК из синтетнч. однотяжевых олигонуклеотидов проводят в неск. этапов (рис. 4). Сначала (а) [c.299]

    Один ИЗ важных этапов конструирования молекулы ДНК — лигирование (или сшивание) генов с помошью фермента ДНК-лигазы. Сшивание фрагментов ДНК, содержащих нужные гены, осуществляют двумя основными методами а) по липким концам б) с помощью искусственно достроенных липких концов. [c.116]

    Обычно банк клонов создают лигированием плазмидного вектора, подвергнутого исчерпывающему гидролизу с помощью ВатШ, с хромосомной ДНК, частично гидролизованной рестриктазой 5aw3AI. [c.79]

    Метод ПЦР применяется также для выявления спонтанных мутаций, внесения специфических мутаций in vitro, сборки полноразмерных генов из синтетических олигонуклеотидов, секвенирования ДНК. Во многих случаях возникает необходимость в клонировании ПЦР-продук-та. Однако прямое клонирование с помощью лигирования по тупым концам затруднено, по- [c.97]

    Слияние белков программируется на уровне ДНК лигированием кодирующих участков соответствующих генов. В самом простом виде векторная система слияния предусматривает включение гена-мишени или его сегмента в кодирующий участок клонированного гена-хо-зяина. Очень важно, чтобы РНК, транскрибируемая с клонированного гена-мишени, имела правильную нуклеотидную последовательность, [c.112]

    Другой подход основан на использовании синтетических ориентированных адапторов — коротких олигодезоксинуклеотидов, присоединенных к концам линеаризованной плазмидной ДНК и к концам фрагментов ДНК с клонируемым геном. При лигировании эти фрагменты располагаются только в одной ориентации. Описанная процедура технически значительно более проста, чем та, в которой используется рестрицирующая эндонуклеаза Aval кроме того, она не требует, чтобы в гене-мишени отсутствовали Aval- и соШ-сайты. [c.118]

    ДНК — матрицей. Одноцепочечные разрывы в новосинтезированной цепи зашиваются с помощью ДНК-лигазы Т4. По окончании синтеза и лигирования продуктами реакции трансформируют клетки Е. соН. Трансформантов отбирают по признаку устойчивости к ампициллину и чувствительности к тетрациклину. Примерно 90% из них содержат специфическую мутацию в клонированном гене. У остальных трансформантов клонированный ген не был изменен либо потому, что олигонуклеотид не гибридизо-вался с ним, либо потому, что он вытеснялся в ходе синтеза ДНК. Клетки, несущие мутантный клонированный ген, идентифицируют с помощью гибридизации. Все плазмиды, штаммы, ферменты, олигонуклеотиды (кроме того, который предназначен для изменения клонированного гена), а также буферы продаются в наборе, что облегчает работу. [c.163]

    Не все генетические нарушения, приводящие к появлению дефектных генов, сопровождаются утратой или изменением сайтов рестрикции, поэтому для обнаружения однонуклеотидных замен применяют и другие подходы. В одном из них объедине-ггы ПЦР и метод, основанный на лигировании оли-гощ клеотидггых зондов (ЛОЗ), ПЦР/ЛОЗ. [c.196]

    Лигирование олигонуклеотидных зондов, ЛОЗ (Oligonu leotide ligation assay) Метод выявления однонуклеотидных замен в гене-мишени с помощью коротких олигонуклеотидов, комплементарных противоположным цепям тестируемого отрезка ДНК. Если замена отсутствует, то оба олигонуклеотида полностью гибридизуются с ДНК, и после добавления в реакционную смесь ДНК-лигазы происходит их сшивание (лигирование). В противном случае сшивание оказывается невозможным. [c.552]

    Чтобы определить, произошло ли лигирование, 5 -конец зонда X метят биотином, а З -конец зонда V — дигоксигенином, низкомолекулярным соединением, связывающимся с соответствующим антителом. После гибридизации и лигирования проводят денатурацию ДНК для высвобождения гибридизовавшегося зонда и переносят смесь в небольшую пластиковую лунку, покрытую стрептавидином. Лунку промывают, чтобы удалить весь материал, кроме связавшегося со стрептавидином биотинилированного зонда. Затем добавляют в лунку антитела к дигоксигенину, предварительно соединенные со щелочной фосфатазой. После промывания, в ходе которого происходит удаление несвязанного конъюгата, добавляют бесцветный хромогенный субстрат. Окрашивание раствора в лунке свидетельствует о связывании антитела к дигоксигенину с зондом, меченным дигоксигенином, т. е. о том, что этот зонд был лигирован с зондом, меченным биотином. Если же окрашивания не происходит, значит лигирования не было. [c.198]

    Более простым, хотя и менее чувствительным вариантом ПЦР/ЛОЗ является метод лигазной цепной реакции. Тестируемую ДНК смешивают с избытком двух индикаторных зондов, описанных выше, в присутствии термостабильной ДНК-лигазы. Проводят лигирование при 65 °С, затем повышают температуру до 94 °С, чтобы произошла денатурация образовавшихся гибридов зонд-ДНК-мишень, и вновь понижают температуру до 65 °С для гибридизации свободных нелигированных индикаторных ЛОЗ-зондов с ДНК-мишенью. Этот цикл повторяют 20 раз. Если иггдикаторные ЛОЗ-зонды полностью комплементарны ДНК-мишени, то лигирование будет происходить в каждом цикле, и после 20 циклов накопится достаточно продуктов лигирования ( сшитых зондов X и Y) для того, чтобы их можно было обнаружить с помощью электрофореза или ELISA. Если комплементарность неполная, то лигирование не произойдет и никаких продуктов зарегистрировано не будет. [c.198]


    Методы ДНК-диагностики применяют также для обнаружения точковых мутаций в данном гене. Один из подходов заключается в лигировании двух олигонуклеотидных праймеров. При несоответствии всего одного нуклеотида в месте стыковки гибридизовавшихся олигонуклеотидов лигирования не происходит. [c.202]

Рис. 10.1. Структура генов ИФа.2, ИФаз и четырех гибридных генов. Сравнение нуклеотидных последовательностей генов ИФа и ИФаз обнаруживает наличие у них одинаковых сайтов для рестрицирующих эндонуклеаз (RE1, RE2, RE3). Рестрикция по этим сайтам и лигирование полученных фрагментов приводят к образованию раз-личньЕх гибридных генов. В нижней части рисунка представлены четыре из них. Рис. 10.1. <a href="/info/32797">Структура генов</a> ИФа.2, ИФаз и четырех <a href="/info/1345755">гибридных генов</a>. Сравнение <a href="/info/293261">нуклеотидных последовательностей генов</a> ИФа и ИФаз обнаруживает наличие у них одинаковых сайтов для <a href="/info/200438">рестрицирующих эндонуклеаз</a> (RE1, RE2, RE3). Рестрикция по этим сайтам и <a href="/info/1345836">лигирование полученных</a> фрагментов приводят к образованию раз-личньЕх <a href="/info/1345755">гибридных генов</a>. В <a href="/info/250522">нижней части</a> рисунка представлены четыре из них.
Рис. 12.20. Синтетический олигонуклеотид, послуживший основой для создания гена адгезивного белка, синтезируемого мидией М. edulis. Второй синтетический олигонуклеотид был синтезирован таким образом, чтобы после отжига с первым образовывался фрагмент двухцепочечной ДНК с липкими концами. Последующее лигирование с помощью ДНК-лигазы фага Т4 привело к образованию линейной ДНК, состоящей из представленных на рисунке повторов. Внизу дана аминокислотная последовательность полипептида, кодируемого этим повтором. Рис. 12.20. <a href="/info/200297">Синтетический олигонуклеотид</a>, послуживший основой для создания гена <a href="/info/199741">адгезивного белка</a>, синтезируемого мидией М. edulis. Второй <a href="/info/200297">синтетический олигонуклеотид</a> был синтезирован <a href="/info/461013">таким образом</a>, чтобы <a href="/info/677295">после отжига</a> с первым образовывался фрагмент двухцепочечной ДНК с липкими концами. Последующее лигирование с помощью ДНК-<a href="/info/586831">лигазы фага</a> Т4 привело к <a href="/info/735422">образованию линейной</a> ДНК, состоящей из представленных на рисунке повторов. Внизу дана <a href="/info/31042">аминокислотная последовательность</a> полипептида, кодируемого этим повтором.
    MOM без El-области и последовательности, ответственной за упаковку, провели котрансфекцию клетки-хозяина, экспрессирующей Е1-гены. Молекула ДНК аденовируса, дефектная по репликации и упаковке, поставляет гены для синтеза компонентов вируса, а продукт лигирования реплицируется и упаковывается в вирусные частицы. При этом около 99% высвобождаемых вирусных частиц содержат молекулу ДНК с терапевтическим геном (генами). С помощью центрифугирования их можно отделить от дефектных по репликации вирусов, которые все же образуются в незначительном количестве. ДНК-клонирующая емкость такой системы достигает 28 т. п. и. [c.496]

    Две из трех микрохромосом были получены усечением существующей хромосомы. В одном случае исходная центромера была сохранена, а в другом заменена трансфицированной центромерной областью. Третью, полностью искусственную микрохромосому получили лигированием in vitro трех трансфицированных [c.501]

    Метод репликации функциональной ДНК, включающий трансформацию в подходящих условиях соответствующих одноклеточных организмов с помощью функциональной ДНК с целью получения трансформантов, при этом функциональная ДНК получена in vitro следующим образом а) расщеплением вирусной или кольцевой плазмидной ДНК, совместимой с указанным одноклеточным организмом, с получением линеаризованного фрагмента, содержащего интактный репликон и концевой участок с заранее заданными свойствами б) объединением первого линеаризованного фрагмента со вторым, чужеродным по отношению к указанному одноклеточному организму и содержащим по меньщей мере один интактный ген и концевой участок, способный к лигированию с концевым участком первого линеаризованного фрагмента, причем по меньшей мере один из линеаризованных фрагментов содержит ген определенного фенотипического признака в условиях, подходящих для такого объединения, причем концевые участки первого и второго фрагментов объединяются с образованием функциональной ДНК, способной к репликации и транскрипции в указанном одноклеточном организме выращивание указанного одноклеточного организма в подходящей питательной среде и выделение трансформантов, обладающих данным фенотипическим признаком, проявление которого обусловливается У указанной функциональной ДНК.  [c.540]

    Лигирование (Ligation) Соединение двух молекул ДНК с помощью фосфодиэфирных связей. In vitro катализируется ферментом ДНК-лигазой фага Т4. [c.552]


Смотреть страницы где упоминается термин Лигирование: [c.376]    [c.107]    [c.116]    [c.107]    [c.116]    [c.58]    [c.73]    [c.74]    [c.74]    [c.86]    [c.98]    [c.98]    [c.113]    [c.138]    [c.189]    [c.197]    [c.197]    [c.207]    [c.221]    [c.337]    [c.471]   
Биохимия человека Т.2 (1993) -- [ c.39 , c.40 , c.51 ]

Биохимия человека Том 2 (1993) -- [ c.39 , c.40 , c.51 ]

Генная инженерия растений Лабораторное руководство (1991) -- [ c.54 , c.61 ]




ПОИСК





Смотрите так же термины и статьи:

Вставки ДНК лигирование вектора

Выделение и очистка рестрикционных фрагментов ДНК для лигирования

Лигирование ДНК, механизм реакции

Лигирование выделенных фрагментов с соответствующим вектором

Лигирование сшивание РНК

Лигирование тупых концов

Лигирование фрагментов ДНК с векторами для трансформации растений

Лигирование фрагментов вектора и эукариотической ДНК

Лигирование, получение космидных

Лигирование, получение космидных библиотек

Липкие концы, лигирование

Метод лигирования олигонуклеотидных

Неудачное лигирование или упаковка

Олигосахариды, лигирование

Пепсин лигирование пептидов

Пептиды лигирование

Реакция лигирования

Сайты рестрикции потеря при лигировании

Сплайсинг и транс-сплайсинг белков в лигировании пептидов

Трипсин лигирование пептидов

Триптофан-синтаза сшивание лигирование

Химико-ферментативный синтез в создании полусинтетических полипептидов лигирование синтезированных белков



© 2025 chem21.info Реклама на сайте