Асептика стерилизация

Соблюдение асептических условий обязательно при изготовлении всех инъекционных и глазных лекарств, в том числе лекарств, допускающих термическую стерилизацию. Стерилизация лекарства, приготовленного без соблюдения асептики и загрязненного вследствие этого микрофлорой, не освобождает его ни от тел погибших микроорганизмов, ни от выделенных [c.288]

Стерильность инъекционных растворов, приготовляемых в условиях аптеки, обеспечивается в результате неукоснительного соблюдения правил асептики, а также стерилизации этит растворов. [c.293]

Химические методы стерилизации. Стерилизация растворами химических средств. Этот метод является вспомогательным, так как изделия нельзя простерилизовать в упаковке, а по окончании процесса их надо промыть стерильной жидкостью (например, питьевой водой), что нарушает правила асептики и может привести к вторичному обсеменению изделий. Эти методы применяют для изделий, которые нельзя стерилизовать другими методами (из-за термолабильности, конструкции и т.п.). Используют различные режимы стерилизации, например [c.440]

Обязательными условиями являются полное погружение изделия в раствор (с заполнением каналов и полостей) и температура раствора не менее 18 °С. После стерилизации все манипуляции проводят, строго соблюдая правила асептики, (достают из раствора стерильным пинцетом или корнцангом, промывают стерильной жидкостью). Если изделия используют не сразу после стерилизации, то их помещают в стерильную коробку со стерильной простыней и хранят не более 3 сут. [c.440]

Как добавлять субстрат Если микроорганизм не загрязнен и хорошо растет, то прибавлять к нему субстрат можно несколькими способами. В том случае, когда не требуется специального оборудования, следует открыть колбу, добавить в нее субстрат и снова закрыть колбу, естественно соблюдая все условия асептики. Правда, риск внести загрязнение в этом случае много меньше, чем в начале выращивания культуры, вследствие того что питание уже истощено, а сильно разросшаяся культура будет подавлять рост любого другого организма. Жидкие субстраты вносятся как таковые, а твердые субстраты, тщательно очищенные, иногда могут быть добавлены и сами по себе, но чаще всего используются их растворы. К счастью, обычно нет необходимости подвергать субстрат стерилизации, поскольку большинство органических соединений неустойчиво в условиях автоклавирования. Тем не менее для уменьшения риска внести загрязнение при применении водных растворов используют стерильную воду. [c.219]

Уничтожение микроорганизмов-один из необходимых элементов микробиологической работы и основа консервирования пищевых продук , тов поэтому стоит остановиться на нем подробнее. Освобождение какого-либо материала от живых микроорганизмов или их покоящихся форм называют обеспложиванием или стерилизацией. От стерилизации следует отличать частичное обеспложивание (пастеризацию), а также консервирование. Если стерильная среда или микробная культура загрязняется случайно попавшими в нее микроорганизмами, то говорят о контаминации, или загрязнении. Такие понятия, как дезинфекция (уничтожение всех патогенных микроорганизмов), асептика и антисептика, а также инфекция, употребляются главным образом в гигиене, а не в микробиологии. [c.207]

КО в том случае, если стационарное состояние культуры удается поддерживать в течение нескольких дней, недель или даже месяцев. Все это время культуру надо перемешивать, подавать непрерывно стерильную питательную среду и воздух и часть ее постоянно удалять. Температура должна поддерживаться постоянной обычно регулируется и pH среды. Нужно периодически отбирать пробы для контроля постоянства условий и чистоты культуры. При промышленном производстве условия асептики могут быть соблюдены только в специальных сложных установках. В их конструкции должна быть учтена необходимость стерилизации перед началом каждого производственного цикла. Это касается также работы любого датчика или пробоотборника, встроенного в ферментер для непрерывного наблюдения и контроля всех параметров культуры. [c.118]

Примечание. Если требуется агаровая среда со значением pH 6,0 или ниже, сначала готовят и стерилизуют среду с величиной pH выше этого значения, иначе агар в процессе нагревания будет гидролизоваться и потеряет способность затвердевать при последующем охлаждении среды. Сразу же после стерилизации среды и охлаждения ее до 45—50 °С к ней добавляют с соблюдением правил асептики достаточное для получения необходимого значения pH количество стерильной кислоты. Для того чтобы экспериментально определить точное количество кислоты, которое необходимо добавить к основному раствору, полезно приготовить дополнительную порцию среды. [c.358]

Ферментер можно сделать кустарным способом в мастерской, причем особое внимание следует уделить устройствам для перемешивания, аэрации и стерилизации, имеющимся в продаже. Необходимо также иметь гарантии асептики покупаемых блоков [12, 20, 31, 39]. Имеющиеся в продаже ферментеры (табл. 10.2) способны обеспечить хорошую аэрацию и перемешивание довольно густых культур. Ферментеры обычно оборудованы крышкой с рядом отверстий, через которые вводят датчики pH и растворенного кислорода, а также трубки для отбора проб и введения необходимых питательных веществ. [c.389]

Метод 3. Фильтровальную бумагу разрезают на полоски и опускают в слегка подогретый насыщенный раствор щавелевой кислоты. При охлаждении на полосках образуются кристаллы кислоты. Полоски тщательно высушивают (стерилизация нагреванием необязательна) и перед инкубацией помещают их с соблюдением правил асептики в пробирку с культурой. Полоски не должны соприкасаться со средой, их следует изогнуть так, чтобы они были прижаты к стенке пробирки и оставались около ее отверстия при закрывании ватной пробкой или завинчивающейся крышкой. Положительная реакция окрашивание в процессе роста культуры бумажной полоски в розовый или красный цвет. [c.28]

Важнейшим элементом приготовления питательных сред является соблюдение требований асептики. В зависимости от жесткости принятых в этом отношении решений возникает необходимость либо только в создании заданного значения pH, обеспечивающего подавление посторонних микроорганизмов, либо в полной стерилизации всех подаваемых в биореактор потоков и самого биореактора. В последнем случае для стерилизации газовых потоков, в первую очередь воздуха, используют процесс фильтрации через специальные волокнистые фильтры с последовательно расположенными фильтрующими элементами, каждый из которых обеспечивает заданную степень снижения концентрации клеток в газовом потоке. Общее количество фильтров определяется необходимым уровнем (так называемым критерием) стерилизации нужная производительность по газовому потоку достигается установкой ряда параллельно работающих фильтрующих элементов. Основным требованием к фильтрующему материалу является в этом случае допустимость его периодической стерилизации, обычно осуществляемой подачей острого пара в отключенный фильтр через заданные промежутки времени. [c.13]

К 10 мл стерильного расплавленного на водяной бане мясо-пептонного агара добавляют, соблюдая правила асептики, 2,5—3 мл снятого стерильного молока. Содержимое пробирки тщательно перемешивают и выливают в чашку Петри. Среду используют без дополнительной стерилизации, так как совместная стерилизация молока с агаром неприменима вследствие свертывания казеина с образованием хлопьев. [c.355]

Наиболее распространенным является термический метод стерилизации насыщенным водяным паром (при избыточном давлении 1,1 кгс/см и температуре 120°С или давлении 2 кгс/см и температуре 132°С), который осуществляют в паровых стерилизаторах различного типа. Использование текучего пара с целью стерилизации растворов для инъекций не должно иметь места, так как не гарантирует стерильности объектов. В промьшшенности в отдельных случаях допускается стерилизация при 100°С в сочетании с предварительной фильтрацией раствора через микрофильтры в условиях асептики. Под влиянием водяного пара происходит набухание белка клетки, а затем его свертывание под воздействием высокой температуры, что приводит к гибели микроорганизмов. [c.148]

Распространению госпитальных инфекций немало способствуют антисанитарные условия пребывания больных в стационарах, погрешности медицинских работников в асептике и антисептике. Часто медицинский инструментарий и аппаратура не подвергаются достаточной дезинфекции и стерилизации, иногда условно-патогенные бактерии можно обнаружить даже на перевязочном и шовном материале, в готовых лекарственных формах. [c.302]

При внугрисосудистом введеннии лекарств резко вшрастает опасность введения несовместимых с кровью лекарств, а также закупорки сосудов и инфицирования организма, поэтому при их приготовлении и введении особое внимание следует уделить проверке совместимости лекарств, процессам фильтрования, соблюдению асептики, стерилизации и контролю. [c.133]

Однако соблюдение асептики приобретает особо важное значение при изготовлении лекарств, не переносящих термической стерилизации. Такими лекарствами являются, например, растворы с термолабильными веществами. В равной степени взвеси и эмульсии являются малоустойчивыми системами, в которых при нагревании резко усиливаются процессы рекристаллизации, флоккуляции (взвеси) и коалесценции (эмульсии). В этих случаях строжайшее соблюдение асептических условий — единственный путь получения лекарств, по состоянию весьма близких к понятию стерильных. По ГФХ это достигается тем, что растворитель или основу для мази, инструменты и посуду стерилизуют отдельно, а термолабильные лекарственные вещества асептически взвешивают и растворяют в стерильном растворителе (иногда с добавлением консервантов) или смешивают со стерильной основой стерильными инструментами и помещают в стерильную посуду. Нетермолабильные компоненты лекарства при этом также стерилизуют. Лекарства изготовляют в специальном блоке. [c.289]

В процессе приготовления глазных капель их стерильность обеспечивается термической стерилизацией (если стабильность лекарственного вещества позволяет это сделать) и соблюдением асептики. Но уже при первом же применении (сопряженном с открыванием склянки) капли обсеменяются микрофлорой. Наряду с термической стерилизацией в большинство глазных капель, приготовляемых в аптечных условиях, вводят антимикробные вещества для сохранения стерильности как при хранении,, так и при применении. К ним относятся мертиолат (0,005%), зтанолмеркурия хлорид (0,01%), цитилпиримидина хлорид (0,01%), хлорэтон (0,6%), нипагин (0,1%), левомицетин (0,15%), бензиловый спирт (0,9%). Наиболее активное антимикробное действие обеспечивается в присутствии борной кислоты. [c.309]

Из всего разнообразия способов проведения процессов биотехнологии наиболее сложными являются регулируемые ферментации с соблюдением условий асептики Реализация таких процессов рассчитана на использование ЭВМ при соответствутощем программном обеспечении Кроме того для проведения процесса в асептичных условиях необходимо введение дополнительных стадий, обеспечивающих стерилизацию питательных сред и подаваемого в ферментаторы воздуха [c.308]

Если конечный продукт можно стерилизовать, то полная асептика ионообменных систем не является абсолютно необходимой, хотя чистота и свобода от пирогенных примесей гарантируются такими процессами. В некоторой степени такого же эффекта удается добиться, проводя ионообмен при низкой температуре (О—10°) и соблюдая некоторые условия необходимо тщательно вымытое оборудование, сохранение оборудования между операциями в условиях, обеспечивающих минимальный рост бактерий или полное его отсутствие, тщательная промывка оборудования и ионита перед работой, аккуратная регенерация и хранение ионита. Простота конструкции оборудования для ионообмена с точки зрения его очистки и способности к стерилизации нагревом, где это нужно, являются лучшей гарантией успеха. Само по себе обращение с ионитами представляет некоторые проблемы. [c.628]

В практике большое значение имеет борьба с Г. при хранении пищевых продуктов. При консервировании продуктов либо уничтожается гнилостная микрофлора путем стерилизации, применения антисептических в-в и использования микробов антагонистов (брожение), либо соадатотся условия, неблагоприятные для процесса Г. (высушивание, замораживание и др.). Разработаны также методы консервирования древесины (пропитывание специальными веществами, покрытие лаками и т. д.). В медицине борьба с гнилостными микроорганизмами на поверхности ран производится различными методами асептики и антисептики. При нек-рых технологич. процессах микроорганизмы, разлагающие белки, играют положительную роль, напр, в кожевенном произ-ве при удалении волосяного покрова кожи и т. д. Большую роль играют гнилостные микроорганизмы в процессе образования перегноя. [c.491]

После стерилизации к среде добавляют, соблюдая правила асептики, 500 мкг путресцииа и 100 мкг стерилизоваи-ного фильтрованием NAD. [c.245]

После стерилизации к среде добавляют с соблюдением правил асептики 200—400 мг NaaS-9HaO, 168 мг NaH Os и 410 мг ацетата иатрия или 320 мг метилового спирта (общий объем 1 л). [c.249]

Доводят pH до 7,0. Для получения первичной накопительной культуры среду используют без стерилизации. Чтобы получить среду, используемую для посева разливом в чашки, готовят среду двойной концентрации, но без агара, доводят ее pH до указанного значения и стерилизуют фильтрованием (положительное давление). Отдельно готовят 4%-ный раствор агара в свежедистиллированной прокипяченной воде и стерилизуют его кратковременным автоклавированием. Температуру среды двойной концентрации и расплавленного агара доводят до 45—50°С и с соблюдением правил асептики смешивают их в равных объемах. [c.348]

Собранный стеклянный ферментер стерилизуют и загружают стерильной питательной средой с заранее внесенной в нее в асептических условиях трансформирующей культурой. Особое внимание уделяют соблюдению асептики во всех операциях. Стерилизацию в зависимости от объекта осуществляют автокла-вированием питательной среды при ПО—120°С в боксах, освещаемых бактерицидными лампами. Операции по загрузке, отбору проб проводят в пламени газовой горелки. Загрузка питательной среды в ферментер, как правило, осуществляется передавливанием стерильным сжатым воздухом. Время роста культуры микроорганизма-трансформатора определяется появлением максимальной трансформирующей активности и может колебаться от нескольких часов для одних культур до нескольких суток для других. Для многих культур-трансформаторов характерна максимальная трансформирующая активность в период снижения удельной скорости роста культуры. [c.99]

Соблюдение и выполнение строгих правил асептики обязательны для работы как аптечных учреждений, так и фармацевтических предприятий, произюдящих лекарства офтальмологического назначения. Это касается и случаев, когда технологический процесс приготовления лекарств включает стадию стерилизации, так как стерилизация не осюбождает лекарства ни от мертвых микроорганизмов, ни от вьщеленных ими токсинов, которые в большинстве случаев достаточно стойкие к высоким температурам. Особенно повышается роль асептики при приготовлении глазных лекарственных форм, которые в дальнейшем не будут подвергаться термической обработке (присыпки, содержащие термолабильные лекарственные вещества эмульсии и суспензии, в которых при нагревании резко усиливаются процессы рекристаллизации, флокуляции, коа- [c.197]

Открытие Пастера нашло прямое практическое применение и способствовало развитию консервной промышленности. В промышленности и медицине сразу после исследований Пастера стали применять стерилизацию, под которой понимаются различные физические и химические методы уничтожения микроорганизмов. Исследования Пастера сыграли решающую роль во всем дальнейшем развитии медицины, в частности легли в основу асептики и антисептики в хирургии. Работы Пастера убедительно показывали невозможность зарождения существующих форм жизни из неживого. Однако идеалисты сделали из опытов этого ученого вывод, которого сам Пастер не делал. Невозможность самопроизвольного зарождения истолковывалась ими так, что живое вообще никогда ие могло возникнзпгь из неживого. Утверждалось, что жизнь существует вечно. [c.218]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология