Асептика

Химические методы стерилизации. Стерилизация растворами химических средств. Этот метод является вспомогательным, так как изделия нельзя простерилизовать в упаковке, а по окончании процесса их надо промыть стерильной жидкостью (например, питьевой водой), что нарушает правила асептики и может привести к вторичному обсеменению изделий. Эти методы применяют для изделий, которые нельзя стерилизовать другими методами (из-за термолабильности, конструкции и т.п.). Используют различные режимы стерилизации, например [c.440]

Основным условием приготовления глазных лекарственных форм является знание и обязательное соблюдение правил асептики и личной гигиены, необходимых при изготовлении стерильных лекарств. [c.432]

Одним из важнейших требований при изготовлении инъекционных лекарств является соблюдение правил асептики. [c.288]

Животных вскрывают с соблюдением правил асептики, используя только стерильные инструменты, которые меняют при вскрытии каждой полости, а также органа. [c.53]

Асептика — это определенный режим работы, комплекс организационных мероприятий, позволяющий свести к минимуму возможность попадания микроорганизмов в лекарственную форму, приготовляемую из стерильных материалов. [c.288]

Матвеев В. Е. Основы асептики и технологии чистых микробиологических препаратов.. М., Легкая и пищевая промышленность, 1981, 160 с. [c.276]

На практике важно различать между собой и отличать от дезинфекции асептику и антисептику. [c.436]

Соблюдение асептических условий обязательно при изготовлении всех инъекционных и глазных лекарств, в том числе лекарств, допускающих термическую стерилизацию. Стерилизация лекарства, приготовленного без соблюдения асептики и загрязненного вследствие этого микрофлорой, не освобождает его ни от тел погибших микроорганизмов, ни от выделенных [c.288]

Стерильность инъекционных растворов, приготовляемых в условиях аптеки, обеспечивается в результате неукоснительного соблюдения правил асептики, а также стерилизации этит растворов. [c.293]

В XIX столетии в глазной практике получили широкое внедрение методы асептики и антисептики как при хирургических операциях, так и в приготовлении глазных лекарственных форм. [c.682]

В практике приготовления глазных капель имеет значение не только строгая асептика, позволяющая избежать первичного инфицирования тканей глаза, но также и в некоторых случаях применение бактерио-статических средств, которые призваны препятствовать размножению микроорганизмов во время применения лекарств [43-45, 47]. [c.686]

Использование спор для окислительных реакций. Все предыдущие замечания касались использования вегетативных культур, применяемых в колбах, в которых они быстро прорастали после инокуляции небольшого количества спор или вегетативных клеток, причем большая часть материала относилась к промытым культурам. До сих пор эти два варианта техники работы[1] были наиболее распространены, однако более современным способом проведения ферментации, по крайней мере с точки зрения химика, является использование разного рода спор в непитательной среде, где они не могут прорастать и размножаться. В будущем пересылка спор и различных микроорганизмов станет коммерчески доступной. Их можно будет подобно химическим реагентам купить и положить на полку (или в холодильник), пока они не понадобятся, а затем смешать с возможным субстратом, уделяя минимум внимания вопросам асептики. [c.220]

Испытание проводят при строгом соблюдении правил асептики. [c.362]

Почвенные образцы анализируют в первые сутки. В случае необходимости допускается хранение их в холодном помещении (в холодильнике) в течение двух дней. Для большей однородности среднего образца, соблюдая все условия асептики, его тщательно перемешивают, вынимают корни растений, различные включения (камни). [c.146]

При открытых гнойных поражениях материал берут ватным тампоном после удаления верхнего слоя гноя, в котором могут находиться непатогенные стафилококки и другие микроорганизмы, попавшие с кожи или из воздуха. При наличии закрытых гнойных очагов делают пункцию и выливают гной из шприца в стерильную пробирку. Отделяемое слизистой оболочки снимают сухим тампоном. Мочу, мокроту собирают в стерильные пробирки и банки. Кровь (5 — 20 мл), взятую шприцем из локтевой вены, и спинномозговую жидкость с соблюдением правил асептики сеют у постели больного во флакон, содержащий 100 — 200 мл сахарного бульона (pH 7,2 —7,4), или на среду для контроля стерильности. Стафилококки хорошо размножаются и на простых средах, однако лучше использовать обогащенные среды, так как септицемия может быть вызвана не только стафилококками, но и прихотливыми микроорганизмами (стрептококками, анаэробами и др.). [c.104]

Как добавлять субстрат Если микроорганизм не загрязнен и хорошо растет, то прибавлять к нему субстрат можно несколькими способами. В том случае, когда не требуется специального оборудования, следует открыть колбу, добавить в нее субстрат и снова закрыть колбу, естественно соблюдая все условия асептики. Правда, риск внести загрязнение в этом случае много меньше, чем в начале выращивания культуры, вследствие того что питание уже истощено, а сильно разросшаяся культура будет подавлять рост любого другого организма. Жидкие субстраты вносятся как таковые, а твердые субстраты, тщательно очищенные, иногда могут быть добавлены и сами по себе, но чаще всего используются их растворы. К счастью, обычно нет необходимости подвергать субстрат стерилизации, поскольку большинство органических соединений неустойчиво в условиях автоклавирования. Тем не менее для уменьшения риска внести загрязнение при применении водных растворов используют стерильную воду. [c.219]

Материал для исследования гной, отделяемое ран, моча, спинномозговая жидкость, кровь, кал и др. Его берут по возможности до начала антибиотикотерапии или во время паузы между антимикробными воздействиями в соответствии с правилами асептики, не допуская контаминации. Если невозможно взять материал непосредственно из очага инфекции, исследованию подлежит отделяемое из очага (моча, мокрота и т.п.). [c.139]

Кусочки тканей и взятый тампоном материал из глубины раны сразу погружают в транспортную питательную среду (например, тиогликолевую). Гной можно пересылать в пробирке или шприце. Для приготовления и микроскопии мазков используют отдельные тампоны, которые помещают в стерильные сухие пробирки (если нет возможности сразу приготовить мазки). Кровь (5— 10 мл) берут из локтевой вены при строгом соблюдении правил асептики и сразу вносят в 50— 100 мл среды накопления. Отобранный материал доставляют в лабораторию в течение 1 ч. [c.191]

Культивирование клеток осуществляют в стеклянных или пластмассовых сосудах различной формы и размера, желательно одноразового пользования, при строгом соблюдении асептики на всех этапах. [c.260]

Отбор проб. Пробы отбирают с прямоугольного участка размером не менее чем 5 х 5 м из 5 точек ( метод конверта ). При этом в условиях асептики берут с глубины 20 — 25 см образцы для приготовления смешанной пробы весом 1 кг. [c.421]

Асептика. Асептика — это система профилактических мероприятий, направленных на предотвращение попадания микроорганизмов в рану, лекарственные препараты, питательные среды и [c.436]

Обязательными условиями являются полное погружение изделия в раствор (с заполнением каналов и полостей) и температура раствора не менее 18 °С. После стерилизации все манипуляции проводят, строго соблюдая правила асептики, (достают из раствора стерильным пинцетом или корнцангом, промывают стерильной жидкостью). Если изделия используют не сразу после стерилизации, то их помещают в стерильную коробку со стерильной простыней и хранят не более 3 сут. [c.440]

ЭТО широко не применяется, хотя реагент можно получать в удобное время и хранить вплоть до момента использования. Кроме того, при работе со спорами не требуется столь строгого соблюдения асептики, что позволяет использовать простое оборудование для ферментации [45]. [c.18]

Где находится продукт Продолжительность инкубации субстрата с момента его прибавления к микроорганизму может быть произвольной (например, 24, 48 или 72 ч), однако лучше контролировать протекание реакции, отбирая из сосуда небольшие пробы (соблюдая все правила асептики) с последующим их анализом (например, экстракцией и тонкослойной хроматографией). Ферментацию можно остановить, поместив колбу или ферментер в холодную комнату или холодильник. Здесь сосуд с суслом можно оставить стоять до того момента, как вы приступите к выделению продукта (продуктов) реакции. [c.220]

Асептика — совокупность мер, сводящая к минимуму вероятность попадания нежелательных организмов в культуру или ферментационную систему. [c.223]

Постулировано наличие Н-связей в некоторых асептиках. [c.370]

Асептика. Прежде всего культивирование фрагментов ткани или органа растения — эксплантов, а тем более отдельных клеток требует соблюдения полной асептики. Микроорганизмы, которые могут попасть в питательную среду, вьщеляют токсины, ингибирующие рост клеток и приводящие культуру к гибели. Поэтому при всех манипуляциях с клетками и тканями при культивировании in vitro соблюдают определенные правила асептики в ламинар-боксе или в асептических комнатах. В первом случае асептика достигается подачей профильтрованного стерильного воздуха, направленного из ламинкар-бокса наружу, на работающего. Асептические комнаты стерилизуют с помощью ультрафиолетовых ламп, а работают в таких помещениях в стерильной одежде. Рабочую поверхность столов в асептических комнатах и инструменты перед работой дополнительно стерилизуют спиртом. [c.160]

Однако соблюдение асептики приобретает особо важное значение при изготовлении лекарств, не переносящих термической стерилизации. Такими лекарствами являются, например, растворы с термолабильными веществами. В равной степени взвеси и эмульсии являются малоустойчивыми системами, в которых при нагревании резко усиливаются процессы рекристаллизации, флоккуляции (взвеси) и коалесценции (эмульсии). В этих случаях строжайшее соблюдение асептических условий — единственный путь получения лекарств, по состоянию весьма близких к понятию стерильных. По ГФХ это достигается тем, что растворитель или основу для мази, инструменты и посуду стерилизуют отдельно, а термолабильные лекарственные вещества асептически взвешивают и растворяют в стерильном растворителе (иногда с добавлением консервантов) или смешивают со стерильной основой стерильными инструментами и помещают в стерильную посуду. Нетермолабильные компоненты лекарства при этом также стерилизуют. Лекарства изготовляют в специальном блоке. [c.289]

В процессе приготовления глазных капель их стерильность обеспечивается термической стерилизацией (если стабильность лекарственного вещества позволяет это сделать) и соблюдением асептики. Но уже при первом же применении (сопряженном с открыванием склянки) капли обсеменяются микрофлорой. Наряду с термической стерилизацией в большинство глазных капель, приготовляемых в аптечных условиях, вводят антимикробные вещества для сохранения стерильности как при хранении,, так и при применении. К ним относятся мертиолат (0,005%), зтанолмеркурия хлорид (0,01%), цитилпиримидина хлорид (0,01%), хлорэтон (0,6%), нипагин (0,1%), левомицетин (0,15%), бензиловый спирт (0,9%). Наиболее активное антимикробное действие обеспечивается в присутствии борной кислоты. [c.309]

Навеску почвы, соблюдая условия асептики, переносят в колбу на 250 мл с 99 мл стерильной водопроводной воды. Смесь взбалтывают в течение 5 мин, не смачивая пробку. Стерильной пипеткой берут 1 мл суспензии, содержащей 10 г почвы, и перёносят в пробирку с 9 мл стерильной водопроводной воды. Пипетку неоднократно промывают водой из пробирки, чтобы максимально смыть клетки со стенок пипетки, и отставляют. Другой стерильной пипеткой берут из колбы еще 1 мл суспензии и помещают во вторую колбу, тоже содержащую 99 мл стерильной водопроводной воды, пипетку так же промывают и отставляют. Пробирку и вторую колбу взбалтывают 1 мин. В пробирке в 1 мл концентрация 10 г, а во второй колбе—10 г. Точно так же переносят стерильными пипетками по 1 мл суспензии из второй колбы во вторую пробирку с 9 мл и в третью колбу с 99 мл стерильной водопроводной воды, готовят суспензии, содержащие соответственно в 1 мл 10 и 10 г почвы. [c.67]

Отобранные простерилизованные семена помещают в чашку Петри с фильтровальной бумагой и оставляют в тонком слое стерильной воды. Посев проводят через сутки. К этому времени семена прорастают (длина проростков 3—5 мм). Расплавленной агаризованной минеральной средой с помощью стерильных пипеток заполняют пространство между предметными стеклами в подготовленной системе. После застывания агара в каждую систему помещают три проростка. Посев проводят асептически. Далее по две таких системы устанавливают в пробирки с жидкой минеральной средой. Через сутки семена и среДу инокулируют тремя каплями густой суспензии двухсуточной культуры клубеньковых бактерий. Для исследований под микроскопом через 4—5 суток после посева, соблюдая условия асептики, осторожно стерильным пинцетом вынимают одну систему. Бритвой разрезают нитки. Одно предметное стекло удаляют На агар наносят каплю воды, на нее помещают покровное стекло и корни просматривают под микроскопом. [c.187]

Пробы для исследования нужно брать, соблюдая правила асептики, чтобы предотвратить внесение посторонней микрофлоры и не инфицировать себя. Сохраняют пробы во влажном состоянии на холоде и пересылают в контейнерах с сухим льдом. Если пробы не использованы сразу, их следует заморозить, желательно при -70 °С. Такие материалы, как мазки из носоглотки и соскобы с пораженных участков кожи, погружают в стабилизирующую среду (нейтральный ИХН с белком и антибиотиками). Можно использовать также питательные среды или раствор Хенкса с добавлением 10 % инактивированной коровьей сыворотки и антибиотиков (для подавления сопутствующей микрофлоры). [c.262]

Для диагностики микозов применяются микроскопические (в том числе гистологические), микологические (культуральные), аллергические, серологические, экспериментальные, молекулярно-биологические и другие методы исследования. Ввиду морфологического многообразия грибов, а также их медленного роста ведущее значение в диагностике микозов имеют морфологические методы обнаружения и идентификации возбудителя. В зависимости от клинических проявлений болезни исследуемым материалом служат пораженные волосы, чешуйки кожи, кусочки ногтей, кожные и ногтевые скарификаты, гной, мокрота, пунктаты лимфатических узлов, костного мозга, внутренних органов, кровь, спинномозговая жидкость, желудочный сок, желчь, испражнения, кусочки тканей, полученные при биопсии или аутопсии, и др. Материал берут по возможности из очага инфекции при соблюдении правил асептики эпиляционным пинцетом, скальпелем, препаровальной иглой, лезвием бритвы, ножницами, ложечкой Фолькмана, пастеровской пипеткой и др. Тампонами материал стараются не брать. Чтобы лучше рассмотреть пораженный участок, можно пользоваться лупой, у больных микроспорией — люминесцентной лампой, в лучах которой пораженные волосы имеют изумрудно-зеленое свечение. При подозрении на поражение дерматофитами ногти обрабатывают 70%-м этанолом для инактивации и удаления наружной (сопутствующей) микрофлоры, состригают и в сухом контейнере доставляют в лабораторию. Патологический материал следует брать в количестве, достаточном для [c.311]

Из всего разнообразия способов проведения процессов биотехнологии наиболее сложными являются регулируемые ферментации с соблюдением условий асептики Реализация таких процессов рассчитана на использование ЭВМ при соответствутощем программном обеспечении Кроме того для проведения процесса в асептичных условиях необходимо введение дополнительных стадий, обеспечивающих стерилизацию питательных сред и подаваемого в ферментаторы воздуха [c.308]

Стерильную питательную среду в инокуляторе — посевном аппарате первой ступени (рис 95) засевают с соблюдением правил асептики через специальное устройство посевным материалом, который предварительно был выращен в колбах (в лаборатории) Технологи создают и померживают необходимые режимы в аппарате для размножения клеток продуцента (температуру, аэрацию и перемешивание), а микробиологи контролируют и оценивают развитие культуры При достижении требуемых стадий развития и количества биомассы посевной материал передавливают стерильным сжатым воздухом по посевному коллектору в посевной аппарат большей вместимости На этой второй ступени выращивания посевного материала стремятся получить больше биомассы клеток, чтобы в ферментаторе можно было создать необходимую для данного штамма продуцента исходную плотность популяции [c.308]

Культуры мицелиальных грибов не нашли до настоящего времени применения в качестве биодеструкторов афлатоксинов. Это объясняется низкой скоростью процесса биодеградации и необходимостью строгого соблюдения условий асептики. Многие грибы способны синтезировать метаболиты, вызывающие различные токсикозы. [c.390]

Если для проведения процесса ферментации культуру пересевают в жидкую среду, то инокулят может состоять из вегетативных (растущих) клеток или спор (остаточные клетки, в какой-то степени аналогичные посевному материалу). Вегетативные клетки обычно, как уже описывалось выше, соскребают с помощью петли со среды в культуральной пробирке в стерильную жидкую среду, помещенную в соответствующим образом закрытую культуральную колбу. По другому способу в культуральную пробирку наливают стерилизованную воду, полученную взвесь перемешивают стерильной петлей, а затем стерильной пипеткой или простой декантацией получившуюся жидкость пересевают в приемиик или ферментер. При этом, естественно, все операции должны быть проведены с соблюдением полной асептики, включая и обработку пламенем горлышек всех сосудов. Пересев в виде взвеси в жидкости обычно используют в случае микроорганизмов, легко дающих обильное спорообразование, поскольку споры могут быть легко пересеяны и без применения петли, причем их можно достаточно быстро с помощью пипетки иноку-лировать сразу в нескольких колбах. В большинстве случаев ферментация протекает лучше (и с минимальным риском загрязнения) при обильной инокуляции, т. е. при условии внесения в новую колбу или ферментер сразу большого числа необходимых для роста клеток. Для осуществления такого рода обильной инокуляции необходимо накопить достаточно большое количество организма это требует неоднократной инокуляции, поэтому обычно необходимо иметь хорошо растущие клетки свежей культуры в количестве до 5—10% от ферментационного объема. [c.217]

Наиболее часто причиной ошибочных результатов анализа является загрязнение пробы воды при отборе или порча ее вследствие продолжительного хранения и транспорти )ования в недопустимых условийх., Чтобы избежать таких ошибок, необходимо строго соблюдать правила асептики в процессе отбора пробы, предназначенной для бактериологического исследования, исключающие возможность загрязнения ее извне. Кроме того, результаты анализа во многом определяются деталями методики исследования., Поэтому при вьгаолиении таких анализов необходимо пользоваться стандартными питательными средами и выполнять все требования и условия методов, предусмотренных действующими ГОСТами.. [c.117]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология