Нуклеотидные единицы

Рис. 27-5. Структура ковалентного остова ДНК и РНК, в которой следующие друг за другом нуклеотидные единицы (в ДНК эти нуклеотидные единицы закрашены) соединяются между собой фосфодиэфирными мостиками. Обратите внимание на то, что остов, состоящий из чередующихся остатков пентозы и фосфатных групп, представляет собой сильно полярную часть молекулы, тогда как основания-это неполярные, гидрофобные компоненты молекулы.

Каждый оборот спирали включает примерно десять нуклеотидных единиц. Диаметр цилиндра 20А. [c.736]

Нуклеотидные единицы ДНК и РНК содержат специфические основания и нентозы [c.855]

Молекулы транспортной РНК относительно невелики (около 70 нуклеотидных единиц) и поэтому подвижны в клеточной среде. Они содержат два важных активных центра 1) связывающий центр, который специфичен для данной аминокислоты, и 2) последовательность из трех остатков оснований антикодон), способную образовывать водородные связи с тремя комплементарными остатками кодон) информационной РНК. [c.282]

РНК, полученная одним из упомянутых выше методов, представляет собой сложную смесь полинуклеотидов с цепями различной длины и продуктов их распада, или олигонуклеотидов. (Олигонуклеотидами считают обычно небольшие полинуклеотиды, содержащие от 2 до 7 нуклеотидных единиц.) Часто возникает необходимость в дальнейшем фракционировании этой сложной [c.41]

Выяснение последовательности, в которой нуклеотидные единицы расположены вдоль полинуклеотидной цени,— одна из наиболее важных проблем биохимии нуклеиновых кислот. Однако существенных успехов в данной области нока еще не сделано. Это объясняется отчасти небольшим числом различных мономерных единиц, с которыми приходится иметь дело, отчасти трудностью получения гомогенных образцов РНК. В настоящее время наиболее подходящим материалом для такого рода исследований [c.51]

Особая одноцепочечная форма ДНК обнаружена в сочетании с дрожжевой лактатдегидрогеназой. Она содержит 33 нуклеотидные единицы на одну частицу фермента [52]. [c.73]

Число нуклеотидных единиц в цепи ДНК может составлять от 3000 до 10 ООО ООО. [c.620]

Число нуклеотидных единиц в цепи ДНК может составлять от 3000 до 10 ООО ООО. Последовательность пуриновых и пиримидиновых оснований в цепях не установлена, но набор этих оснований независимо от происхождения ДНК во всех случаях в точности одинаков. Так, число адениновых (А) групп равно числу тиминовых (Т), а число гуаниновых (Г) групп равно числу цитозиновых (Ц) (т. е. А=Т и Г=Ц). Суммарный процентный состав оснований в каждом данном соединении постоянен, но варьирует в широких пределах при переходе от ДНК одного типа к другому. [c.137]

Этот метод в настоящее время разработан [574]. Разделение продуктов позволяет обнаружить присутствие последовательности пуриновых звеньев длиной до 8 (возможно, и больше) нуклеотидных единиц. [c.439]

Без резкого подъема чистоты состояния генетических атомов, позволяющих сообщить неразличимость нуклеотидным единицам, которые близки к генному состоянию, но еще не влились в него, пределы разрешения заведомо меньше. Тривиальная внешняя оценка процесса, без привлечения полной картины индуцированного химического мутагенеза, приводит к ошибочным представлениям о прямом преобразовании химического состояния в генное по химическим образцам, которые не нуждаются в аппарате квантовой статистики. [c.64]

Метод протонного магнитного резонанса на уровне моно- и олигонуклеотидов позволяет получить много ценной информации о таких особенностях строения нуклеиновых кислот, как СТЭКИНГ и спаривание оснований, взаимная ориентация оснований и сахаров и т.п. В случае полимеров с большой молекулярной массой ситуация усложняется тем, что нуклеиновые кислоты состоят преимущественно из четырех нуклеотидных единиц, каждая из которых встречается в молекуле много раз. Поэтому соответствующая часть спектра представляет собой результат наложения сигналов от оснований данного типа, расположенных на разных участках цепи. Кроме того, возникает обычная для жестких макромолекул проблема значительного уширения линий. [c.165]

Следует иметь в виду, что, хотя карта, приведенная на рис. 15-1, про-калибрирована в минутах, в недалеком будущем генетическую карту удастся, вероятно, представить непосредственно в микрометрах длины ДНК (общая ее длина составляет приблизительно 1100 мкМ) или в ты- сячах нуклеотидных единиц, называемых часто килобазами (кЬ). Общая длина ДНК составляет приблизительно 3800 кЬ ). [c.192]

На рисунке 186 приведен фрагмент нуклеоти киой цепи жирной линией выделен ее остов, который включает в себя втомы 0(5 ), С(5 ), С(4 ), С(З ), О(З ) и Р. Остальные атомы углеводных оствтков и гетероциклические основания рассматриваются квк боковые группы. В основной цепи можно выделить повторяющуюся единицу. Если выбрать в качестве начала отсчета атом С(З ) основной цепи, тогда такой единицей будет последовательность атомов С(3 ) —0(3 ) —Р —0(5 ) —С(5 )"—С(4 ) —С(З ), включающая в себя шесть различных связей а, р, У1 f С Соответствующие торсионные углы обозначают так же. Выбор начала отсчете может быть и другим, но использованный здесь является одним из наиболее простых. Повторяющаяся едииица основной полинуклеотидной цепи называется нуклеотидной единицей. [c.331]

В конформационном анализе производных нуклеиновых кислот иногдв используется концепция жесткой нуклеотидной единицы. Согласно этой концепции нуклеотиды имеют более жестко фиксированную конформацию, чем нуклеозиды. Конформациоиная гибкость полинуклеотидов в основном обусловлена легкостью враше- [c.334]

Уменьшение расстояния между основаниями и большвя ком-пвктность спирали обусловлены тем, что угол, соответствующий связи С(З )—С(4 ) в В-форме, имеет конформвцию i (X)-эндо, тогда квк в А— [С(3 )-эндо]. Гранс-конформация этой связи приводит к увеличению длины нуклеотидной единицы по сравнению с -конформацией. [c.340]

Вероятно, в основе их лежнт конформациоиная гибкость фураноз-ного цикла нуклеотидной единицы, способной к переходу от С 2 )-эидо- к С(3 )-.чн<) 7-конформации, и наоборот. Подобные переходы, в свою очередь, сказываются на торсионных углах фосфодиэфирных и N-гликoзидиыx связей и приводят к таким эффектам, как изменение перед плавлением и дыхание полинуклеотида. [c.346]

Вторичная структура ДНК представляет собой лвойнук> спираль, состоящую из двух переплетенных цепей ДНК (рис. 12.26). В полный виток каждой спирали укладывается около десяти нуклеотидных единиц, и две цепи выстраиваются в противоположных направлениях так, чтобы могло произойти спаривание оснований. [c.280]

Добавление некоторого ограниченного числа нуклеотидных единиц к концу молекулы имеющегося полирибонуклеотида не может рассматриваться как полинуклеотидный синтез. Тем не менее эта реакция близка к нему, имеет большое значение и хорошо сейчас изучена. В 1956 г. было показано, что в присутствии фосфорилирующей системы Р -аденозин-5 -мопофосфат целиком включается в РНК в цитоплазме печени крыс [149]. После гидролиза диэстеразой змеиного яда был получен меченый 5 -АМФ, а после щелочного гидролиза — меченые цитидип-2 - и цитидин-З -монофосфаты. Это говорит о том, что в РНК АМФ преимущественно присоединяется к ЦМФ. Подобные наблюдения на различных биологических объектах были проведены многими исследователями. Эти данные наряду с данными о том, что основная часть включенного аденина освобождается после щелочного гидролиза в виде нуклеозида, свидетельствуют о том, что АМФ присоединяется к концу цепи РНК. На важность этих наблюдений впервые обратили внимание Замечник, Хоглэнд и их сотрудники [150—152] в Бостоне, работавшие с растворимой, т. е. транспортной, РНК (s-PHK) цитоплазмы печени крысы. s-PHK отличается от РНК рибосом или микросом своеобразной способностью акцептировать нуклеотиды, присоединяясь к ним своей концевой группой, Такое присоединение нуклеотидов к концу цепи РНК обязательно предшествует прикреплению аминокислот в процессе биосинтеза белка. Все s-PHK из тканей животных, дрожжей и бактерий ведут себя в этом отношении одинаково. [c.251]

В ряде опытов был изучен фосфоролиз, т. е. обращение реакции полимеризации [158, 166, 168]. Для этого используемый полинуклеотид инкубировали с ферментом в присутствии избытка неорганического фосфата, что приводило к образованию нуклеозиддифосфатов в результате последовательного отщепления моно-нуклеотидных единиц. Оказалось, что легко фосфоролизируются не только полимеры, полученные путем биосинтеза, но и обладающие затравочной активностью олигонуклеотиды. Динуклеотиды же и динуклеозидмонофосфаты, как и следовало ожидать, не поддаются фосфоролизу. РНК вируса табачной мозаики и высокополимерная РНК дрожжей могут легко подвергнуться фосфоролизу, но если дрон<жевую РНК предварительно обрабатывают щелочью, то фосфоролиз протекает медленно. Медленно протекает и фосфоролиз многочисленных тяжей, образованных, например, из поли-А и поли-У. Неполностью (па 20—30%) протекает фосфоролиз транспортной РНК клеточной цитоплазмы, что можно объяснить особенностями вторичного строения s-PHK. По-видимому, фосфоролиз затрагивает преимущественно концевые группы. [c.256]

Изучение ферментативного (стрептодорназой) гидролиза дезоксирибонуклеиновых кислот показывает, что большая часть нуклеотидов присутствует в виде пиримидиновых звеньев длиной до 10 нуклеотидных единиц, чередующихся с соответствующими участками пуринов [357]. [c.439]

Информационные РНК составляют лишь малую часть всех РНК, присутствующих в протоплазме клетки. Большую часть составляют транспортные и рибосомные РНК. Информационные РНК непрерывно разрушаются и возобновляются. Они полидисперсны по молекулярной массе, которая изменяется в пределах от 200 000 до 500 000 и более. Рибосомная РНК — преобладающий тип РНК клетки. В бактериях она может составлять до 80% от общего содержания РНК. В зависимости от того, из какой ри-босомной субъединицы она получена, молекулярная масса ее может составлять от 560 000 до 1000 000. Молекулы тРНК состоят всего из 77—85 нуклеотидных единиц (молекулярная масса порядка 28 000—30 000) и поэтому представляют собой наиболее удобные объекты для исследования с помощью ЯМР, поскольку дипольное уширение в их спектрах минимально. В ходе дальнейшего обсуждения (см. разд. 15.6.2) мы рассмотрим строение тРНК детально. [c.400]

Для получения полинуклеотидов с чередующимися тринуклеотидными последовательностями проведена поликонденсация разнообразных защищенных тринуклеотидов и их З -О-ацетильных производных в молярном отношении 4 1 в среде сухого пиридина в присутствии мезитиленсульфохлорида или триизопропилбензолсульфохлорида При этом выделены полидезоксирибонуклеотиды, содержащие от 5 до 18 нуклеотидных единиц, с выходами 18—3% в зависимости от степени полимеризации и типа применяемых нуклеотидов. [c.407]

При оценке положения нуклеотид-аналогов внутри генов нельзя не вспомнить еще о том, что вне мутагенного вмешательства генный материал проявляет дискретные черты, далекие от микрофизических. Приведем в качестве примера отношение между различными аллеломорфами одного гена, т. е. отличия в структуре генных единиц, расположенных в гомологических точках конъюгирующей пары хромосом. Пара таких аллеломорфов соизмеряется между собой почти так же тесно, как и два тождественных аллеломорфа. В аналогичных условиях парного и взаимного притяжения неодинаковых членов аллеломорфного ряда отчасти играет роль их собственное сродство, а отчасти крупномасштабный фактор их положения в системе огих других гомологических генов в той же хромосоме. Между двумя электронами, с которыми мы здесь сравним внутригенные триплетные или нуклеотидные единицы, невоможны отношения, типичные для несходной пары аллеломорфов, находящихся на близких, но различных уровнях. В аллеломорфных ступеньках мы встречаемся не с примером отсутствия квантового отбора, а с другими его правилами, отвечающими усложнению квантовых закономерностей соответственно прогрессу природного строения. В случае индукционного механизма включения нуклеотид-аналогов это распространяется на больший масштаб терпимости к включенному квази-генетическому материалу, чем в других дискретных системах. В генной системе нет свойств сильного взаимодействия, и основное преимзгщество связано с новизной ее нормы квантового отбора, использующей способность нуклеотидов приобретать в контакте с матрицей равную ей высокую упорядоченность, чем в лимитированной степени пользуются и аналоги. [c.57]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология