Смеситель Уоринга

Материал в количестве 75 г измельчался в течение 30 мин в смесителе Уоринга с 450 мл воды и 50 мл эфира. Затем материал центрифугировался и экстрагирование повторялось дважды. После этого материал нагревался 3 ч с обратным холодильником со 150 жл 1 %-ного раствора соляной кислоты на 1 г, промывался, высушивался и экстрагировался 30 ч в аппарате Сокслета этанолом — бензолом (1 2). Приготовленный таким образом материал применялся для стандартных определений содержания лигнина методом с 72%-ной серной кислотой. Результаты, полученные с соломой овса, выращенного в поле, приведены в табл. 3. [c.160]

Приготовление тиоколовой эмульсии начинают со смешения компонентов как масляной, так и водной фазы, которые затем подогревают до 43—49° С. Далее, оба состава пропускают через коллоидную мельницу, зазор в которой не должен превышать 75 мк. Эту операцию повторяют дважды, после чего состав выдерживают при комнатной температуре одни сутки. Затем пропускают состав через коллоидную мельницу третий раз, после чего эмульсию следует считать готовой. Вместо коллоидной мельницы можно использовать для эмульгирования смеситель Уоринга. [c.124]

Перегонка с паром летучих соединений сыра [58]. Пробу сыра (900 г) смешивают с дистиллированной водой в смесителе Уоринга. Суспензию переводят в круглодонную колбу и подвергают перегонке с паром до полу- [c.230]

Выделение продувкой [63]. Листья (100 г) измельчают в смесителе Уоринга и экстрагируют 0,001 н. соляной кислотой (1 л). Экстракт фильтруют, центрифугируют и подщелачивают раствором едкого натра. Через смесь Пропускают воздух для отгонки свободных оснований. Эти основания улавливают, барботируя воздух через 0,001 н. соляную кислоту в промывной склянке. Примерно спустя 1 час промывную склянку удаляют из воздушного потока и содержимое ее упаривают почти досуха. Объем доводят до 2 мл и отбирают порции по ЮО мкл для хроматографического анализа. [c.257]

Отделение от нейтральных составляющих [20]. Ткань (200 г) измельчают с водой (200 мл) в смесителе Уоринга в течение 5 мин и пульпу осветляют центрифугированием. Отбирают известное количество (100 мл) прозрачного водного раствора и добавляют к нему насыщенный раствор карбоната калия до щелочной реакции. Затем экстракт разливают в три круглодонные колбы на 100 мл и замораживают в сухом льде. Воду, амины и нейтральные соединения удаляют посредством лиофилизации при давлении 10— 50 ЦК рт. ст. в течение 6—10 час. Дистиллят нагревают и доводят pH разбавленной соляной кислотой до 2. Затем раствор замораживают и лиофилизируют снова для удаления нейтральных компонентов. В результате получают осадок — белое кристаллическое твердое вещество — в количестве [c.257]

Воду экстрагировали из пробы сухим метанолом в смесителе Уоринга. После оседания твердых частиц порцию осветленного метанольного слоя переносили в мерную колбу, куда добавляли избыток ДМП и 0,1 н. раствор метансульфокислоты. Содержимое колбы встряхивали, доводили до метки метанолом и аликвотную часть пробы анализировали методом газовой хроматографии, как описано Мартином и Кневелем [194]. [c.303]

Швекке и Нелсон [262] обрабатывали пробу с массой около 15 г в смесителе Уоринга сухим метанолом (100 мл), к которому добавляли несколько миллилитров e/nO/5-бутилового спирта. (Количество втор-бутилового спирта зависит от характера анализируемого продукта). Стакан смесителя закрывали навинчивающейся крышкой с герметизирующей прокладкой и в течение нескольких минут измельчали анализируемый продукт. Длительность этой операции зависит от природы образца. После смешения выдерживали 15 с для осаждения твердых частиц и отбирали 2 мкл отстоявшейся жидкости для газохроматографического анализа (см. табл. 5-16). Определяли отношение высот пиков воды и етор-бутилового спирта и вычисляли содержание воды с помощью градуировочного графика. [c.334]

Для анализа можно использовать только свежий, неувядший растительный материал, так как хранение сырья вызывает денатурацию пигментов. Если сырье нельзя обрабатывать непосредственно после сбора, его рекомендуется хранить в полиэтиленовых пакетах на холоду (ниже О С) в течение 1—2 сут или быстро заморозить смесью сухого льда в ацетоне, жидким воздухом или азотом. Листья или другое растительное сырье измельчают вручную в ступке с абразивом (кварцевый песок или порошок карборунда в количестве /з объема растираемого материала), а затем экстрагируют растворителем (в количестве, которое достаточно для насыщения гомогената) на холоду. Гомогенизация в охлажденном смесителе Уоринга или в другом аппарате с верхним приводом мешалки, или же в мацераторе с двойной системой цилиндров-ножей требует большого количества растительного материала и растворителя (примерно 20-кратного от веса ткани). Одно- и многоклеточные морские водоросли и фотосинтезирующие бактерии отделяют на центрифуге, а затем обрабатывают в поршневом или вибрационном гомогенизаторе с мелкими стеклянными шариками.. [c.268]

Для пористых окислов частицы размером вплоть до диаметра 60 ц легко получить обычным способом дробления или размола. Частицы меньшего размера диаметром порядка 1—о .I получают путем размола в шаровой мельнице. Перед таблети-рованием требуется тщательно перемешать компоненты, в противном случае из-за большого размера гетерогенных областей станет проявляться диффузионный критерий (15) (см. раздел П, Г, 3). Необходимая степень смешения может быть достигнута размолом в шаровой мельнице или при применении смесителя Уоринга. В исследовательских работах был избран последний метод, так как он позволяет осуществить чисто механическое смешение и уменьшить местные перегревы на границах раздела. Гомогенность проверялась при помощи оптического микроскопа. [c.30]

Как обычно, наиболее существенны смачиваемость пластинок, тщательная гомогенизация (в смесителе Уоринга) и дегазация смеси адсорбентов и использование специального прибора для нанесения слоя. Рекомендуется следующий состав исходной смеси 2 rDEAE -целлюлозы, 15 г целлюлозы и 100 мл воды этого достаточно для приготовления 8 пластинок размером 20 2и см с толщиной слоя адсорбента 0,25 мм. - Прим.peo. [c.276]

Фунгитоксичность соединений испытывали в агаре при концентрации 1 1000 и 1 10 000. Для приготовления дозировок 1 1000 2,5 г испытуемого соединения отвешивали в смесителе Уоринга и добавляли две капли неионогенного дисперсионного агента (тритон Х-171) и достаточное количество дистиллированной воды для доведения общего веса до 50 г. Смесь гомогенизировали на высоких скоростях и 1 г смеси из смесителя вносили в 50 г стерильного жидкого агара из картофельной декстрозы при 45°. Агар, содержащий испытываемое соединение в концентрации 1 1000, выливали в чашки Петри и давали застыть. Для получения испытываемого соединения в концентрации 1 10 000 10 г гомогенной смеси отвешивали в другом смесителе и доводили общий вес до 100 г добавлением дистиллированной воды. Смесь перемешивали и 1 г смеси вносили в 50 г стерильного агара, который затем наливали в 3 чашки Петри и оставляли застывать. Во всех случаях гомогенные смеси были хорошо распределены в агаре. [c.199]

Штейнхаус и Томпсон [1951] рекомендуют следующий метод приготовления инфекционного материала для полевого применения. Гусениц, которые начали разлагаться и вскоре стали полужидкими, растирают до густой гомогенной суспензии в смесителе Уоринга. Затем материал разбавляют в отношении [c.444]

С этой целью они смешивали культуры Hfr- и F -бактерий в соотношении 1 клетка Hfr-штамма на 10 Р -клеток (при плотности примерно 10 бактерий в 1 мл) и инкубировали смесь в течение различных периодов времени. Из инкубационной смеси брали пробы, разводили их и высевали на минимальный глюкозный агар, содержащий метионин и стрептомицин (для отбора рекомбинантов Thr+ Leu" Str ), или на минимальный га-лактозный агар, содержащий треонин, лейцин, метионин и стрептомицин (для отбора рекомбинантов Gal Str ). Полученный ими результат показан прерывистой линией на фиг. 110. Как видно из этого графика, число рекомбинантов возрастает прямо пропорционально времени, прошедшему с момента, когда родительские культуры были смешаны, и до образования плато, что наступает примерно через 1 ч, когда на 100 клеток Hfr насчитывалось 18 рекомбинантов Thr Leu" Str и 5 рекомбинантов Gal+ Str Это значение максимальной частоты рекомбинации, очевидно, b JIOO раз превышает те значения, которые были получены ранее Кавалли и Хейсом в скрещиваниях с Hfr-штаммами, и, следовательно, показывает, что более 10% клеток любой популяции Hfr способны переносить часть своего генетического материала в реципиентную F"-клетку. Сплошной линией на фиг. ПО показаны результаты примерно такого же-опыта по изучению кинетики переноса генов. Однако в этом случае в метод была внесена небольшая, но чрезвычайно важная модификация пробы из конъюгационной смеси клеток Hfr и F, так же как и в первом случае, разводили через определенные промежутки времени после начала контакта между родительскими клетками, но перед высевом на селективный агар разведенные пробы в течение 2 мин перемешивали в смесителе Уоринга. Под действием возникающего в жидкости срезывающего уси- [c.223]

Культуры бактерий Hfr и F- смешивали и в промежутки времени, отложенные на оси абсцисс, образ-ЦЫ либо высевали непосредственно на селективный агар (прерывистые кривые, /а и //а), либо встряхивали в течение 2 мин в смесителе Уоринга и затем высевали на селективный агар (сплошные кри вые, /б и //б). 1а и 16 — высевы производили на минимальный глюкозный агар, содержащий метионин и стрептомицин, и. следовательно, на ординате указана частота рекомбинантов Thr Leu Str , возникающих на селективном агаре в различные промежутки времени. Па и 116 — высевы делали на минимальный галактозный агар, содержащий треонин, лейцин, метионин и стрептомицин, и, следовательно, на ординате указана частота рекомбинантов Str, возникающих на селективном агаое [c.224]

В этом случае число рекомбинантов не увеличивалось линейно начиная с момента смешивания родительских штаммов, а рекомбинанты Thr Leu+ Str eooouifi не образовывались, если пробу конъюгационной смеси встряхивали в течение первых 8 мин после образования контакта между клетками, а рекомбинанты Gal+ Str не возникали, если встряхивание производили в течение первых 25 мин. Обработка образцов конъюгационной смеси в смесителе Уоринга в более поздние сроки вела к линейному возрастанию числа рекомбинантов, которое продолжалось до тех пор, пока наконец уровень частоты рекомбинаций не достигал того же плато, которое устанавливалось в первой части эксперимента, когда встряхивание в смесителе не проводили. [c.224]

В подтверждение предположения о динамически нестабильном соединении Андерсон показал, что сильное встряхивание смеси вз фаговой и бактериальной суспензий в смесителе Уоринга предотвращает заражение. Херши утверждает, что все эти факты буквально заставили его и Чейз выполнить их знаменитый опыт со смесителем в 1952 г. Благодаря этому опыту они установили, что ири заражении, так же как и под действием осмотического шока, фаговая ДНК покидает головку фага. ДНК является если и не единственным, то по крайней мере главным компонентом фага, который проникает внутрь клетки-хозяина при этом основная часть фагового белка остается с наружной стороны клеточной оболочки. Прежде чем перейти к подробному рассмотрению опыта Xepuni и Чейз, мы считаем нужным коротко остановиться на применении радиоакгивпых изотопов в исследоваиии фагов. [c.263]

Способность инфицированных бактерий давать фаговое потомство после обработки в смесителе Уоринга определяли методом подсчета стерильных пятен. Одновременно зараженные бактерии еще раз центрифугировали при низких скоростях и с помои1,ью счетчика определяли, какая часть общей радтюактивиости остается в иадосадочной жидкости, а какая переходит в осадок вместе с бактериями. Благодаря этому методу можно установить, какая часть метки Р или включившейся вначале в бактерии вместе с частицами инфицирующего фага, вновь освобождается в [c.263]

На оси ординат показан процент S и освобождаемых из клеток, зараженных меченым фагом Т2, и процент зараженных клеток, остающихся инфекционными центрами после того, как суспензию встряхивали в смесителе Уоринга в течение времени, указанного на оси абсцисс. / — инфицированные бактерии IJ — внеклеточное содержание S III — внеклеточное содержание Методика. Культуру . соИ заражают фагом, меченным S или Р, в забуференном солевом растворе, Через несколько минут, в течение которых происходит адсорбция фага, бактерии центрифугируют и ресуспендируют в воде, содержащей на 1 л 1 ммоль MgS04. 0.1 ммоль СаС г и 0,1 г желатина, для отделения их от неадсорбированного фага. Суспензию встряхивают в смесителе Уоринга при 10 ООО об/мин. Каждые 60 с суспензию быстро охлаждают в ледяной воде. Через определенные промежутки времени из суспензии отбирают пробы, определяют в них методом подсчета стерильных пятен число бактерий, способных давать урожай фага, и центрифугируют. После этого измеряют радиоактивность иадосадочной жидкости, чтобы определить долю радиоактивного изотопа, освобожденного из клеток. [c.264]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология