Антитела кроличьи

Клетки фиксировали формальдегидом, обезвоживали и подвергали воздействию антител, полученных путем иммунизации кроликов белком микротрубочек. Затем клетки обрабатывали флуоресцирующими антителами козы, специфичными. в отношении кроличьего у-глобулина (дополнение 5-Е), и [c.277]

Обработанные БСА фильтры инкубировали с кроличьими антителами к искомому инсектициду. [c.336]

Рис. 14-63. Иммунологический метод идентификации белков плазматической мембраны, участвующих в межклеточной адгезии. На этапе 1 получают антитела (обычно кроличьи) к исследуемым клеткам или к их изолированным плазматическим мембранам. На этапе 2 выделяют и тестируют моновалентные фрагменты, чтобы получить препарат антитела, блокирующий межклеточную адгезию. (Используются моновалентные фрагменты, пол ченные с помощью протеаз - см. разд. 18.2.4), так как они не сшивают клетки и, таким образом, не вызывают ложной адгезии.

Для реакции преципитации необходимо оптимальное соотношение концентраций антигена и антител. В избытке антигена преципитат частично или полностью растворяется в результате бывает невозможно оценить реакцию или же эта оценка может быть ошибочной. В то время как преципитаты, образованные кроличьими антителами, растворяются только при избытке антигена, преципитаты, образованные антителами лошади, часто могут растворяться в избытке как антигена, так и антител. [c.17]

Овцы, как н кролики, дают хорошие титры антител к Ig человека всех классов. От овец получены преципитирующие антисыворотки, специфичные к подклассам IgG человека, что, по-видимому, свидетельствует о способности этих животных распознавать тонкие структурные различия иммуноглобулинов других млекопитающих. Обычно от овцы и кролика получают одинаково хорошую антисыворотку к изотипам иммуноглобулинов крыс и мышей, а кроме того, как от филогенетически отдаленных видов, и к иммуноглобулинам друг друга. Например, в методах с использованием первых антител кроличьего происхождения вторыми антителами могут быть иммуноглобулины овцы к иммуноглобулину кролика, и наоборот. Очищенные с помощью аффинной хроматографии кроличьи и овечьи антитела стабильны при хранении. В дополнение ко всему вышесказанному Fab- и Р( аЬ)2-фрагменты могут быть получены из овечьих и кроличьих антител по хорошо описанной и легко воспроизводимой методике [И], [c.42]

Стрептококковые групповой специфичности полисахаридные антитела из кроличьей гипериммунной сыворотки [c.290]

Возможность образования циклических структур зависит в основном от размера и формы молекул антигена и антитела и от относительной ориентации этих молекул в образовавшемся агрегате. Можно начать рассмотрение с основного случая, когда одна молекула антигена взаимодействует с одной молекулой антитела, и взять реальный пример—взаимодействие альбумина бычьей сыворотки с кроличьим антителом. По Лоу, антиген имеет молекулярный вес около 70 ООО и (если его форма в растворе не отличается от кристаллической) представляет собой призму длиной [c.690]

ИЗ которых с молекулярным весом около 90 ООО, несет оба места присоединения. Поскольку свойства лошадиного антитела, изучавшегося Беккером, сходны со свойствами дифтерийного антитоксина (и отличны от свойств кроличьих антител), места присоединения этого антитела могут быть аналогично распределены асимметрично. [c.692]

В противоположность кроличьим антителам, а также антителам большинства других видов, определенные антитела лошадиной антисыворотки, и в частности дифтерийный антитоксин, не образуют осадка с антигеном, когда антитело имеется в большом избытке. [c.692]

Отношение между числом молекул антитела и антигена в осадках, образованных альбумином бычьей сыворотки и кроличьи- [c.692]

Если к кроличьим антителам добавить антиген ЛМ, который мы вводили кроликам, и получить положительную серологическую реакцию (специфическую преципитацию), то мы не будем знать, обусловлена ли эта преципитация реакцией между М и анти-М или между Л и анти-Л или той и другой одновременно. Если же присоединить диазотированную метаниловую кислоту к белкам сыворотки курицы [c.19]

БСГ — бычий сывороточный глобулин. В опыте 1 использовались лошадиные антитела, в остальных — кроличьи. Ат — антитело Аг — антиген Г — гаптен. [c.170]

Иммунологические исследования тоже свидетельствуют о филогенетических связях между организмами. Если белки, содержащиеся в сыворотке крови, ввести в кровь животных, у которых этих глобинов нет, то они действуют как антигены, т. е. побуждают организм вырабатывать соответствующие антитела в результате возникает реакция антиген-антитело. Эта иммунная реакция обусловлена способностью жи-вотного-реципиента распознавать присутствие в сыворотке чужеродных белков. Человеческая сыворотка, введенная кроликам, сенсибилизирует их и вызывает у них образование антител к сывороточным белкам человека. Если спустя некоторое время к пробе сенсибилизированной сыворотки кролика добавить сыворотку человека, то произойдет образование комплексов антиген-антитело, выпадающих в осадок (преципитат), количество которого можно измерить. Если добавлять к пробам кроличьей сыворотки, содержащей антитела против сыворотки человека, сыворотки различных животных, то образуются разные количества преципитата. Предполагая, что количество преципитата находится в прямой зависимости от количеств чужеродного белка , этот метод можно использовать для оценки степени родства между разными группами животных (табл. 26.8). [c.304]

В полистироловую пробирку вносят по 100 мк раствора кроличьих антимышиных антител и Na-фосфатного буфера 0,4 М. К смеси добавляют 1 мКи 1—Nal. При непрерывном перемешивании добавляют 50 мкл раствора хлорамина Т. Инкубируют в течение 1 мин. Реакцию останавливают добавлением 200 мкл тиосульфата Na. Дауэкс суспендируют в 0,15 М Na l и помещают в 1—2 мл колонку. Через колонку пропускают 1 мл кроличьей сыворотки для предотвращения неспецифического связывания антител. Реакционную смесь пропускают через колонку с Дауэксом для удаления несвязавшегося 1. Промывают колонку 1 мл 0,15 М Na l. Раствор меченых антител (1 мл) смешивают с 1 мл 3%-ного раствора БСА в фосфатном буфере и хранят при 4°С. [c.324]

Источником антител служила кроличья антисыворотка к сывороточным белкаи человека производства фирмы Behringwerke AG (ФРГ). [c.144]

Ингвал и др. [324] применилн принцип радиоиммуноанализа, описанный для определения кроличьего иммуноглобулина G однако вместо меченных радиоактивным изотопом антигенов они конъюгировали последние с ферментом — щелочной фосфатазой. Основой конкурентного иммуноаналнза является разделение свободных и связанных с антителами антигенов, так чтобы антигены можно было определить количественно. Это разделение можно облегчить фиксацией антител на твердой фазе путем физической сорбции на стенках полистирольных пробирок. [c.382]

Кроличью антисыворотку против БСА и человеческого сывороточного альбумина (ЧСА) вводили анестезированным собакам одновременно, при разбавлениях, при которых антисыворотка связывает 957о соответствующих ей антигенов. Для анти-БСА — это разбавление 1 520, а для анти-ЧСА— 1 270. После уравновешивания в течение 12 мин. микросферы БСА вводили в экстракорпоральное кровообращение. Специфическое уменьшение количества БСА-сзязываю-щих антител у четырех собак обнаружено в течение первых 15 мин после введения микрокапсул БСА, в последующие 60 мин содержание антител уменьшалось значительно меньше. За те же интервалы времени количество анти-ЧСА оставалось постоянным. Для доказательства того, что наблюдаемое снижение связывающей способности БСА не является следствием отщепления БСА от микрокапсул в ходе эксперимента, жизненно важные органы и сыворотку крови собак анализировали на присутствие g конце экспериментов. Никакой суше- [c.384]

Недавно Смит и др. (Smith et al., 1955) определили, что во всех кроличьих антителах против пневмококковых полисахаридов типа I, П1, VIII и XIV содержание аспарагиновой и глютаминовой кислот, глицина, аланина, лейцина, тирозина, гистамина, лизина, аргинина и триптофана было (в пределах ошибки опыта) одним и тем же. Некоторые отклонения в количествах других аминокислот, вероятно, связаны с различием глубины гидролиза молекулы антитела, скоростью отщепления и разделения аминокислот. [c.687]

ЭТИХ антител заметно крупнее большинства кроличьих и человеческих антител. Однако то, что эти агрегаты не связывают комплемент, нельзя отнести только за счет размера молекул антитела, так как и агрегаты, образованные полисахаридами с бычьими антителами, имеют такие же размеры, но связывают комплемент (Kabat, 1939). [c.690]

Беккер (Be ker, 1952) определил константу седиментации ком-плекса, образованного избытком альбумина бычьей сыворотки с кроличьим антителом, и нашел ее равной 8,85. Он нашел, что константы седиментации соединений, образованных лошадиными антителами, были выше образованных кроличьими антителами. Беккер считал, что это происходит вследствие различия расположения мест связи в этих двух типах молекул антител. Предположение Беккера вполне правдоподобно, поскольку места присоединения одного из лошадиных антител (дифтерийного антитоксина) располагаются на молекуле асимметрично. Автором показано, что при обработке протеолитическимй энзимами, при pH около 4,0, молекула расщепляется на две части, одна [c.691]

Итак, мы располагаем прекрасным примером взаимодействия между генами, лежащими в хромосомах, и цитоплазматическими частицами, которые скорее нужно рассматривать как особый вид вируса. В том же самом экспериментальном материале Соннеборн нашел также и другие очень интересные примеры взаимодействия между генами и цитоплазмой. Речь идет об антигенах, содержащихся в ресничках парамеции. Если парамеций определенного клона (который размножается вегетативным делением) ввести в кровь кролика, то у кролика в крови образуются антитела. Если после этого кроличью сыворотку добавить в культуру парамеций того клона, который был использован для инъекции кролику, то реснички парамеций будут парализованы. Та же сыворотка, использованная на другом клоне, дает отрицательную реакцию. В своем материале Соннеборн нашел 8 различных групп парамеций, различающихся по серологическим реакциям. Эти группы (которые обозначаются буквами А, В, С... и т. д.) в известном смысле соответствуют группам крови у высших животных. [c.366]

Специ )ич. способность антител вступать в реакции с антигенами обусловлена двумя относительно небольшими участками молекулы антитела — активными центрами размером в 3—5 аминокислотных остатков полипептидной цепи. При действии протеолитич. ферментов на антитела удается получить иммунохимически активные фрагменты с мол. весом ок. 50 ООО. Активные фрагменты с мол. в. 50 ООО и даже 13 ООО, выделенные из ферментативного гидролизата кроличьих антител, содержат повышенное количество триптофана. Эти, а также нек-рые другие данные дают основание для предположений о важной роли остатков триптофана в активном центре антител. [c.112]

Электрофорез окажется, повидимому, наиболее полезным в области биохимии в качестве метода очистки белков, антител, ферментов, гормонов, вирусов и т. п. При изучении антител, концентрация которых допускает их наблюдение на диаграммах, можно установить расположение и концентрацию антител путем сравнения изображений, полученных до и после осаждения антител специфическими антигенами. Этот случай изучали ва гиперим-мунной лошадиной и кроличьей сыворотках [55—57]. Однако в большинстве случаев концентрация антител лежит ниже предела чувствительности прибора. В таких случаях необходимо прибегать к исследованию выделенных проб (см. стр. 360) при помощи методов дополнительной фиксации, агглютинации, нейтрализации и т. п. [58—60]. [c.377]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология