Справочник химика 21

Химия и химическая технология

Статьи Рисунки Таблицы О сайте English

Сыворотка человека

    Альбумин Сыворотка человека Уц 61 500 [c.423]

    Форма полос преципитации позволяет судить о гомогенности или гетерогенности исследуемых белков. Гомогенные белки дают симметричные полосы преципитации правильной формы (например, среди сывороточных белков такую полосу преципитации дает альбумин). Гетерогенная популяция молекул обычно дает вытянутую асимметричную полосу преципитации. Это характерно для иммуноглобулинов нормальной сыворотки человека (IgG, IgM, IgA). [c.146]


    Этот метод весьма полезен, например, при диагностике недостаточности синтеза иммуноглобулинов какого-либо класса. В этом случае электрофоретическому разделению подвергают нормальную сыворотку человека, в зону абсорбирующих антигенов вносят сыворотку больного, а в зону иммунной сыворотки — антисыворотку к сывороточным белкам человека. В образовании полос преципитации с фракциями нормальной сыворотки человека принимают участие только те антиглобулиновые антитела, которые не встретили соответствующих им иммуноглобулинов в сыворотке больного, диффундируя из зоны антисыворотки в зону нормальной сыворотки. В результате появляются полосы преципитации, которые соответствуют отсутствующему классу иммуноглобулинов, например IgG, IgA или IgM. [c.152]

    Процентное содержание холестериновых эфиров в нормальной сыворотке человека (сравнение различных методов определения) [c.257]

    В. Для получения кроличьей антисыворотки к белкам сыворотки человека рекомендуется описанный ниже метод иммунизации, позволяющий приготовить, по-видимому, наилучшую иммунную сыворотку для выявления многих белковых компонентов, в том числе иммуноглобулинов. В этом методе совмещены две схемы иммунизации по Мильгрому и по Проому. [c.117]

Рис. 1.27. Иммуноэлектрофорез в геле (анализ белковых антигенов цельной сыворотки человека) Рис. 1.27. <a href="/info/150056">Иммуноэлектрофорез</a> в геле (анализ белковых антигенов цельной сыворотки человека)
    На рис. 59 приведена зависимость логарифма высоты ступеней от lg на полярограммах раствора альбумина сыворотки человека. Для обеих ступеней эта зависимость носит прямолинейный характер. [c.237]

    Получение и свойства альбумина сыворотки человека, выделенного из плацентарных экстрактов [428]. [c.230]

Фиг. 31. Разделение сыворотки человека на сефадексе 0-200 [46]. Фиг. 31. Разделение сыворотки человека на сефадексе 0-200 [46].
    Глобулин Сыворотка человека 0 90 ООО [c.423]

    Эйглобулин Сыворотка человека Уц 1 200 ООО [c.423]

    Подчеркнём, что фракцию медленно циркулирующей крови находят у пациентов с большой кровопотерей, тяжёлой послеоперационной сердечной недостаточностью и, тем более, шоком. Более того, у таких пациентов может возникнуть так называемая относительная гиповолемия, характерными признаками которой являются симптомы дефицита объёма циркулирующей крови (ОЦК) бледность кожи и видимых слизистых, исчезновение сосудистого рисунка на предплечьях и стопах, снижение центрального венозного давления. И действительно, при измерениях этого показателя плазменным индикатором (типа Ч-альбумина сыворотки человека) ОЦК может быть значимо снижен, тогда как общий объём крови (измерения с Сг-эритроцитами), представленный суммой ОЦК и медленной циркулирующей фракции эритроцитов, нередко находится в пределах нормы или даже превышает её верхнюю [c.416]


    Здесь были бы весьма полезны многократные исследования этого показателя. Но Ч-альбумин сыворотки человека для таких целей неприменим в силу известных обстоятельств. [c.417]

    Представле) ие дисульфидных связей в белках. а — система связей S—S в агглютинине зерна пшепнцы, повторяющаяся четыре раза одиоп полипептидной цепи. Инвариантные остатки Gly выделены. Четыре одинаковые пространствеиные формы обнаружены также в трехмерной структуре [316]. б — система связей S—S в альбумине из сыворотки человека [409]. Связи повторяются, но не очень точно аминокислотная последовательность также обнаруживает повторяющиеся участки. Тре мерная структура белка еще ие нзвестна. [c.159]

    Для ускорения количественного превращения эфиров в производные с целью их последующего ГХ-анализа широко используют переэтерификацию, особенно метанолиз. Весь процесс требует немного времени и позволяет отказаться от использования концентрированной щелочи, которая может вызывать частичную изомеризацию полиненасыщенных кислот. Для проведения метанолиза на эфир действуют метанолом, содержащим кислоту или основание в результате образуется метиловый эфир соответствующей кислоты. Для определения метиловых эфиров жирных кислот, полученных из липидов [47] и эфиров воска [48], использовали метанольный раствор хлористого водорода. При анализе эфиров, полученных из воска, спирты и метиловые эфиры разделяли с помощью колоночной хроматографии, а затем уже анализировали методом ГХ, причем спирты определяли в форме трифторацета-тов. Для определения метиловых эфиров жирных кислот от Си до Сго, выделенных из липидов сыворотки человека [49], использовали метанол и серную кислоту еще одним реагентом для анализа липидов является ВСЬ в метаноле [50]. В работе [51] описан удобный метод получения производных при комнатной температуре и без выпаривания. В этом методе раствор жира в бензоле переносят в закрытую колбу, добавляют в колбу 2,2-диметокси-пропан (ДМП), метанольный раствор хлористого водорода и оставляют на ночь. После нейтрализации порцию полученного раствора вводят в газовый хроматограф. Кроме пиков метиловых эфиров на получаемой хроматограмме присутствуют и пики изо-пропилиденгликоля, образованного из ДМП и глицерина. Эти пики являются удобными стандартами для определения времен удерживания. ДМП связывает воду и способствует тем самым полному прохождению реакции. [c.141]

    Белок Аминокислота Саль- МГШ Гистон (печень телен- ка) Казеин Альбумин (сыворотка человека) 7-ГлО- оулин (чело- века) Пепсин Инсу- лин Колла- ген [c.41]

    Приготовление антигена заключается в смешивании следующ,их компонентов 6,25 мл сыворотки человека (берется смесь сывороток нескольких доноров), 12,5 мл 0,9%-ного раствора Na l, 5,0 мл геля гидроокиси алюминия, 1,25 мл 5%-ного раствора фенола. 2,5 мл этой смеси вводят внутримышечно животным в два места раз в неделю в течение 6 нед. Через неделю после последней инъекции у кролика берут кровь и определяют титр антител. Если титр сыворотки ещ,е не достиг необходимой величины или если с ее помощью нельзя выявить желаемого числа антигенных компонентов, еженедельные инъекции повторяют до получения нужного эффекта. [c.118]

    В заменителе сыворотки человека заменен на 50% на раствор 0,154 М Mg lj. [c.373]

    Число линий преципитации на электрофореграмме зависит от используемой иммунной сыворотки. Например, хорошо себя зарекомендовавшая кроличья антисыворотка к белкам сыворотки человека фирмы Behringwerke (ФРГ) и аналогичная лошадиная антисыворотка института Human (Венгерская Народная Республика) позволяют идентифицировать примерно 20 белковых фракций сыворотки. Принципиальная возможность приготовления антисыворотки практически к любому белку значительно увеличивает применимость иммуноэлектрофореза. Кроме того, приготовив антисыворотки, специфичные к какому-либо одному-единственному белку (или небольшому числу белков), можно в смеси белков исследовать составляющие ее отдельные компоненты. Иммунные сыворотки, предназначенные для иммунохимического анализа отдельных белков плазмы человека, уже имеются в продаже. [c.21]

    Сначала кроликов иммунизируют по Мильгрому. Для этого из ушной вены животного берут 2 мл крови, смешивают с 0,5 мл 3,8%-ного раствора лимоннокислого натрия, осаждают эритроциты и трижды отмывают их пятью объемами физиологического раствора хлористого натрия. К осадку отмытых эритроцитов прибавляют два объема инактивированной сыворотки человека группы АВ и, периодически помешивая, инкубируют смесь в течение 1 ч при комнатной температуре. Затем эритроциты вновь трижды отмывают, доводят объем суспензии физиологическим раствором до 2 мл и вводят в вену тому же самому кролику. Эти инъекции повторяют каждые 3 дня, пока титр антиглобулиновых антител не достигнет 1 1000—2000 в реакции пассивной гемагглютинации с эритроцитами НЬ (О) +, сенсибилизированными неполными анти-О-антите-лами с титром 1 32. [c.117]

    В верхней части фиг. 28 представлена иммуноэлектрофоре-грамма сыворотки крови человека. С помощью схемы, приведенной ниже, можно ориентироваться в иммуноэлектро( юреграммах любой сыворотки человека на схеме показано относительное расположение белковых фракций, входящих в ее состав. [c.145]

    Последнее явление изучалось, чтобы использовать его как тест при злокачественной анемии [1821. Соединение Ф-ХХУ вызывает умеренное подавление деятельности прокаинэстеразы в кровяной сыворотке человека [183] и задерживает рост дрожжевых клеток [184]. Он неэффективен в качестве противосу-дорожного средства, как об этом сообщалось ранее [185]. Соединение Ф-ХХУ может меркурироваться до 2,5-диацетоксимеркурпроизводного [186]. Оно ингибирует самоокисление льняного масла [187] и некоторых производных бутадиена [188]. [c.546]


    Смесь оставляют на 10—15 мин при комнатной температуре, затем добавляют равный объем ИХН и центрифугируют 20 мин при 2000 об/мин. Осадок сенсибилизированных эритроцитов отмывают 2 — 3 раза 20-крат-ным объемом ИХН, затем рссуспензируют до концентрации 5% в стабилизирующем растворе, состоящем из равных объемов 30%-го раствора сахарозы и донорской сыворотки человека. [c.62]

    Среда Джонсона— Трассела пептона — 32 г, агар-агара — 1,6 г, цистеина солянокислого — 2,4 г, мальтозы — 16 г, печеночного экстракта — 320 мл, раствора Рингера — 960 мл, 1 М раствор NaOH — 13 мл. Смесь нагревают до расплавления агара, фильтруют, добавляют 0,7 мл 0,5 %-го раствора метиленового синего и доводят pH среды до 5,8 —6,0. Среду разливают в пробирки по 9 мл и стерилизуют. Перед посевом в каждую пробирку добавляют по 1 мл сыворотки человека или лошади и антибиотики (пенициллин и стрептомицин) для подавления роста сопутствующей микрофлоры. [c.366]

    Были проведены некоторые разделения белковых молекул с помощью хроматографии на бумаге, хотя, как правило, разделение происходит плохо, с перекрывающимися полосами. Франклин и Квостел [43], используя для проявления хроматограмм буферные водные растворы солей, разделили смесь папаина и казеина с помощью двухмерного метода. Эти исследователи в качестве индикатора использовали гемин. Присутствие комплекса белок — гемин на бумаге легко можно обнаружить с помощью-реактива бензидин — перекись водорода. Было показано, что сыворотка человека содержит от 6 до 10 фракций белка. [c.332]

    Состав системы растворителей на колонке с сефадексом G-25 можно изменить таким образом, что некоторые компоненты станут нерастворимыми и благодаря этому задержатся на колонке, в то время как растворимые компоненты будут элюироваться. Подобное явление имеет место, например, при дифференцировании по В. Эпштейну и М. Тану [152] так называемых эуглобулинов и псевдоглобулинов сыворотки человека. Если образец сыворотки в 1М поваренной соли поместить на колонку с G-25, уравновешенную предварительно очень разбавленным буфером, и элюировать тем же самым буфером, то вначале белки отделяются от соли. Хорошо растворимые в разбавленном растворе соли псевдоглобулины (главная часть белков сыворотки) элюируются с колонки гораздо раньше, чем Na l. Однако эуглобулины, отделившись от соли, становятся нерастворимыми. При дальнейшем элюировании они вновь растворяются в солевом растворе и так далее. В итоге они выходят с колонки вместе с фронтом поваренной соли. Порат [153] развил этот принцип дальше. Вначале в колонке с сефадексом G-100 создают возрастающий градиент концентрации соли (сверху вниз). Если теперь на колонку нанести смесь белков и элюировать водой, то компоненты смеси будут мигрировать быстрее, чем будет изменяться градиент соли. Таким образом, белки в соответствии с их растворимостью в солевых растворах выпадают в осадок в разных местах колонки, вновь растворяются по мере сдвига градиента и так далее. Таким путем (т. е. зонным осаждением) можно разделить белки одинаковых размеров, но с различной растворимостью. [c.200]

    Если бы удалось, например, осуществить метку альбумина сыворотки человека 1, предложенным Myers W.G. and Anger Н.О. в 1962 г., то такой РФП был бы, в связи с коротким периодом полураспада его радионуклида (13,3 часа) и весьма удобной для радиометрии энергией 7-квантов (159 кэВ, 82,9%), близким к идеалу индикатором оценки ОЦК. В самом деле, осуществлена же метка 1 гиппурана и хлорида Na, ранее широко использовавшихся вместе с По мнению Н.Ф. Тарасова (1989), ... из применяемых в диагностике радионуклидов иода, 1 обладает наилучшими ядерно-физическими характеристиками. Последние обеспечивают, в частности, 100-кратное, по сравнению с снижение тканевой дозы облучения на единицу активности, что принципиально важно для сцинтиграфии щитовидной железы . Но, к сожалению, является одним из самых дорогих однофотонных радионуклидов. [c.417]

    Stern H.S. et al. (1965) и др. пытались внедрить в клиническую практику модифицированные препараты " Тс-альбумина сыворотки человека. Конечно, 99 Тс в силу своих физических характеристик ещё более заманчив для этой цели даже в сравнении l. Но, к сожалению, относительно 99ттс-альбумина эти попытки оказались тщетными. В частности, при сопо- [c.417]

    Для всех этих измерений используют " Тс-альбумин сыворотки человека или " T -Sn-3pHTpoHHTbi. Прочность метки при использовании 99 Тс-Sn-эритроцитов обеспечивает возможность мониторинга фракции выброса левого желудочка и подвижности его стенок в условиях физического или фармакологического нагрузочного теста. В результате появляются условия суждения о резервных возможностях миокарда, что существенно важно для кардиологической и кардиохирургической клиники. [c.422]

    Отметим также, что в 70-е годы увлекались интракоронарными инъекциями Ч-макроагрегатов альбумина, микросферами альбумина сыворотки человека, мечеными 99" T и а также и Xe в физиологическом [c.423]

    Первые метаболизируемые радиоактивные частицы, которые нашли широкое применение в клинической практике, формировали из альбумина. В 1956 г. подобного рода агрегаты из альбумина сыворотки человека, предназначенные для исследования фагоцитоза, предложены Halpern B.N. et al. Величина частиц составляла около 10 микрон. Они не только быстро накапливались в купферовских клетках печени, фагоцитах селезёнки и костного мозга, но и сравнительно быстро выводились из организма, что явилось их большим преимуществом перед частицами, сформированными из углерода, двуокоси тория, сахарата окиси железа, фосфата хрома и коллоидного золота, которые неопределённо долго оставались в захвативших их клетках. [c.430]


Смотреть страницы где упоминается термин Сыворотка человека: [c.160]    [c.160]    [c.142]    [c.58]    [c.614]    [c.85]    [c.147]    [c.142]    [c.155]    [c.173]    [c.290]    [c.337]    [c.312]    [c.414]    [c.414]    [c.420]    [c.431]   
Смотреть главы в:

Гликопротеины Том 2 -> Сыворотка человека


Хроматография белков и нуклеиновых кислот (1985) -- [ c.160 ]




ПОИСК







© 2025 chem21.info Реклама на сайте