Ультрахемископ

Для обнаружения на хроматограммах люминесцирую-щих веществ используют специальный ультрахемископ. Прибор состоит из ртутно-кварцевой лампы низкого давления, светофильтра и люминесцирующего экрана компактен и удобен в обращении. [c.124]

Выпускают много источников УФ-излучения с эмиссионными максимумами при 365 и 254 нм, т. е. с длинно- и коротковолновым излучением (ультрахемископ УН-1, настольный УФ-осветитель КП-1 и др.). [c.138]

Для обнаружения веществ, поглощающих ультрафиолетовые лучи, удобен ультрахемископ Е. Н. Брумбер- [c.98]

Рис. 36. Схема ультрахемископа Брумберга для анализа хроматограмм

Бумагу освобождают от люминесцирующих примесей с помощью спирта и бензола и помещают в раствор исследуемой смолы. Смола, содержащая различные углеводороды, разделяется на отдельные фракции, располагающиеся в разных участках бумаги. Исследование хроматограммы проводят в ультрахемископе Брумберга. По специфичности свечения пятен хроматограммы судят [c.125]

Подготовленную и пропитанную спирто-бензольной смесью бумажную полоску опускают в 0,0017о-ный раствор исследуемой смолы в такой же смеси спирта и бензола (1 1), налитый на дно сосуда, предназначенного для хроматографирования. Полоску закрепляют в штативе в вертикальном положении и один конец ее опускают в сосуд так, чтобы полоска касалась дна сосуда. Через 12—14 ч бумагу вынимают и дают растворителю полностью улетучиться. Сухую бумажную полоску помещают на стекло ультрахемископа Брумберга, включают прибор в сеть и наблюдают свечение. Смолы, содержащие парафинонафтеновые углеводороды, светятся голубым свечением, чистые смолы, а также смолы с примесью ароматических углеводородов — желтым свечением. Для анализа рекомендуется брать смолы, извлеченные из нефти или нефтяных масел хроматографическим методом на силикагеле. [c.125]

Используемые в работе пластины покрыты слоем полиамида с обеих сторон. Они полупрозрачны, что делает возможным нанесение на одну сторону пластины смеси аминокислот- свидетелей , а на другую — анализируемого образца. После проведения хроматографии пластины просматривают под ультрахемископом и идентифицируют пятна, обладающие подвижностью, одинаковой с подвижностью ами-нокислот- свидетелей . [c.152]

В одном из углов пластины на расстоянии 1 см от краев наме-чают простым карандашом точку старта. Такую же точку ставят с противоположной стороны пластины. Необходимо, чтобы эти точки совпадали. В точку на одной стороне пластины наносят смесь стандартов, а в точку на другой стороне — анализируемый образец. Образец и стандарты наносят в минимальном объеме — 5—10 мкл, постоянно подсушивая место нанесения струей теплого воздуха. Наносят от 0,5 до 3 нмоль дансилированных аминокислот. Пластину ставят в маленькую хроматографическую камеру, следя за тем, чтобы она не касалась стенок камеры, и хроматографируют в растворителе I. Пластины высушивают в струе теплого воздуха в течение 30 мин и хроматографируют в перпендикулярном направлении в растворителе 2. После высушивания пластины просматривают под ультрахемископом. Обычно описанная процедура обеспечивает разделение почти всех ДНС-аминокислот (рис. 23). [c.153]

Разделение оснований ДНК проводят методом нисходящей хроматографии (с. 126). Растворитель заливают в камеру и оставляют на ночь для насыщения. На линию старта наносят по 0,05—0,1 мл гидролизата ДНК. На эту же хроматограмму наносят растворы оснований- свидетелей в количестве 0,05—0,07 мкмоль. Процесс разделения длится от 20 до 40 ч. Локализацию азотистых оснований проводят в ультрахемископе. Расположение оснований в порядке удаления от [c.178]

Проведение хроматографического разделения. На пластинки на расстоянии 4 см от нижнего края и 1,5 см друг от друга наносят капилляром растворы свидетелей (по 0,05—0,07 мкмоль) и гидролизат ДНК (по 20—50 мкл). Все растворы следует наносить маленькими порциями и подсушивать теплым воздухом. Пластинку помещают в камеру, насыщенную растворителем. Хроматографическое разделение длится 4—б ч. Пластинку высушивают на воздухе и определяют локализацию азотистых оснований в ультрахемископе. Если разделение произошло недостаточно четко, хроматографический процесс повторяют. Для количественного определения оснований пятна на пластинках обводят простым карандашом и целлюлозу осторожно соскабливают скальпелем или бритвой в пробирки. Приливают в них по 2— [c.179]

На полоски хроматографической бумаги шириной 4—5 см на линию старта наносят ш,елочной гидро лизат РНК (10—20 мкл) и растворы нуклеотидов- свидетелей по 0,1—0,15 мкмоль каждого. Электрофорез проводят в течение 5 ч при силе тока 0,5 мА на 1 см поперечного сечения бумаги. Для определения времени окончания электрофоретического разделения можно использовать окрашенный маркер, например 1%-ный раствор ксиленцианола, который движется быстрее самого подвижного компонента смеси. Локализацию рибомононуклеотидов проводят в ультрахемископе. Подвижность нуклеотидов от катода к аноду возрастает в ряду цитидиловая, адениловая, гуаниловая и уридиловая кислоты. Для количественного определения участки электрофореграмм, поглощающие в ультрафиолетовой области, очерчивают простым карандашом, вырезают, измельчают и элюируют нуклеотиды 4—5 мл 0,01 н. раствора НС1 в течение 4—5 ч. В элюатах определяют поглощение на спектрофотометре при длине волны, характерной для каждого нуклеотида (см. Приложение, с. 499), рассчитывают количество их в микромолях и в процентах по отношению к сумме всех нуклеотидов в щелочном гидролизате РНК. [c.181]

Разделение проводят в камере для низковольтного электрофореза (с. 89). Кюветы заполняют цитратным буфером. Вырезают полосы хроматографической бумаги шириной 4—5 см и наносят на них тканевой экстракт и стандартные растворы нуклеотидов- свидетелей в количестве, соответствующем 0,1—0,15 мкмоль каждого нуклеотида Разделение проводят в течение 4—5 ч при градиенте напряжения 15— 20 В/см и силе тока 0,5 мА на 1 см поперечного сечения бумажной полосы. Местоположение нуклеотидов идентифицируют в ультрахемископе. [c.184]

На пластинку на расстоянии 1,5—2 см от нижнего края наносят с интервалом в 1—1,5 см исследуемый раствор и растворы нуклеотидов- свидетелей по 2—4 нмоль каждого нуклеотида. Растворы наносят капиллярами и подсушивают в токе холодного воздуха. Пластинку помещают в сосуд с плоским дном, куда слоем в 1 см наливают растворитель изопропанол — вода — аммиак (7 2 1,5) °. Когда фронт растворителя поднимется до верхнего края пластинки, ее вынимают, высушивают под тягой и положение нуклеотидов на хроматограмме определяют с помощью ультрахемископа. [c.185]

Применение метода люминесценции очень облегчается, если для открытия на хроматограммах люминесцирующих веществ использовать специальный ультрахемископ Е. М. Брумберга [10]. Прибор состоит из ртутно-кварцевой лампы низкого давления, светофильтра и люминесцирующего экрана, компактен и удобен в обращении. [c.261]

Весьма удобным для получения люминесценции на бумаге является ультрахемископ Брумберга [10]. [c.273]

На ультрахемископе устанавливают место расположения 5-фтор-урацила (темное пятно с Rf=Ofi i—0,65). Вырезают этот участок бумаги и измеряют скорость счета на торцовом счетчике. Оставшиеся части хроматограммы разделяют на участки 1,5 см и измеряют для каждого из них скорость счета. Для определения относительной активности компонентов необходимо просуммировать скорость счета отрезков бумаги, превышающих фон в два раза, н отнести скорость Счета каждого нз них к сумме скоростей счета всей хроматограммы. Измерение удельной активности препарата проводят с помощью общепринятой методики. [c.58]

Под лампой ультрахемископа отмечают светящееся пятно витамина Bj (желто-зеленая флуоресценция ) иа хроматограммах и рассчитывают Rf. Хроматограммы разрезают иа куски длиной не более 1,5 мм и измеряют скорое ь счета каждого прямоугольника. [c.87]

Конечную точку при титровании Се устанавливают также фотометрическим [17], потенциометрпческиы [6] или амперометрическим [18] методами, у Например, при титровании сульфата церия (IV) конечную точку устанавливают с использованием ультрахемископа [17] по изменению светопоглощения раствора в УФ-областп спектра. [c.167]

Еще в одном методе церий (IV) титруют раствором аскорбиновой кислоты, устанавливая конечную точку (при помощи ультрахемископа) по изменению светопоглощения раствора в УФ-области спектра [16]. [c.242]

В другом методе элементный иод титруют [74] раствором аскорбиновой кислоты, устанавливая конечную точку (нри помощи ультрахемископа) по изменению светопоглощения раствора в УФ-области спектра. [c.246]

На предметное стекло (7,5X 2,5 см) с тонким слоем ЭКТЭОЛА-целлюлозы наносят на расстоянии 2,5 сл1 от малого ребра по 0,005 мл смеси и свидетелей (около 0,1 мкмоль). Пробы подсушивают и пластинку помещают в камеру — высокий бюкс, на дне которого находится вата, смоченная 0,01 и. H L Пластинка опускается в вату на ребро, вблизи которого нанесены исследуемые вещества (восходящая хроматография). По мере продвижения жидкости по пластинке происходит разделение смеси. Когда фронт жидкости достигнет верхнего края пластинки, ее вынимают и высушивают. Для обнаружения компонентов исследуемой смеси используют способность этих веществ поглощать свет в ультрафио-.летовой области спектра (Я = 260 нм). Для этого используют ультрахемископ, облучающий пластинку ультрафиолетовым светом. Вещества, поглощающие свет в этой области спектра, обнаруживаются в виде темных пятен. Этот метод позволяет быстро определять примеси АДФ, АМФ и других нуклеозидфосфатов или нуклеиновых оснований в препарате АТФ. [c.131]

А. Г. Зайцевым на бумаге той же марки М при восходящем способе хроматографии с детектированием положения пятен по их флуоресценции в ультрахемископе УИ-1 получены следующие данные на полосах бумаги 32 X 1,5 слг в трех системах растворителей из спиртового раствора соответствующего сульфаниламида в системе н. бутанол, этанол, диэтиламин, вода (90 10 0,1 97) значения Rf для стрептоцида белого 0,52 сульфацила растворимого 0,16 этазола 0,61 сульфапиридина 0,76 [c.13]

Для открытия на хроматограммах веществ, поглощающих ультрафиолетовые лучи или флуоресцирующих в них, чрезвычайно удобен ультрахемископ Е. М. Брумберга , снабженный ртутной лампой и светофильтром, пропускающим ультрафиолетовые лучи с длинами волн от 410 до 240 ммк (рис. 30). [c.131]

После электрофореза или хроматографии полосы хроматографической бумаги сушат в горизонтальном положении и просматривают в ультрахемископе. Пятна нуклеотидов обводят карандашом и после сравнения со свидетелями элюируют 5 мл [c.50]

Реактивы и оборудование 1) 60—72%-ная, H IO4, 2) изопропиловый спирт, 3) концентрированная НС1, 4) препарат ДНК, 5) спектрофотометр СФ-4, 6) хроматографическая камера с лодочками, 7) ультрахемископ Брумберга, 8) стеклянные пробирки (0,6X6 см), 9) хроматографическая бумага (ленинградская М ). [c.102]

Элюция и спектрофотометрия. Слегка подсушенные хроматограммы просматривают на ультрахемископе и отмечают простым карандашом пятна оснований. Элюцию пятен проводят [c.103]

Брумберг Е. М. Прибор для хроматографии и химического анализа в ультрафиолетовых лучах (ультрахемископ). ДАН СССР, 1950, 72, № 5, с. 885—888. Библ. 8 пазв. 837 Брумберг Е. М. Применение ультрафиолетовых лучей в хроматографии. Успехи физ. наук, 1951, 43, вып. 4, с. 600—619. Библ. 25 назв. 838 [c.39]

Ультрафиолетовые лучи в аналитической химии 837, 3201—3204 в хроматографии 837—842 селективное рассеяние ультрафиолета как метод анализа химич. структур 7114 Ультрахемископ 837 Умножители электронные каскадные, см. фотоумножители Уравнение Ильковича. коэффициент диффузии 999 Уран [c.394]

Флюоресцентное титрование. Наблюдение момента оконча-1НИЯ реакций при ультр афиолетовом титровании М Ожно проводить при помощи простых осветителей и флк>ореоцирующих экранов. Примером такой установки может служить простой прибор—ультрахемископ, сконструированный Е. М. Брумбергом. [c.497]

Положение веществ на хроматограмме обнаруживают с помощью ультрахемископа. Уверенно выявляется 0,5—10 мкг. При этом вещества в большинстве случаев не изменяются и могут [c.320]

В, 60, 2,7-дихлорфлуоресцеин и морин. Хроматограммы опрыскивали 0,05%-ным раствором родамина В, пластинка равномерно окрашивалась в розовый цвет, а под ультрахемископом появлялись фиолетовые флуоресцирующие пятна фосфолипидов на розовом фоне, которые обводили препаровальной иглой. При опрыскивании хроматограмм 2,7-дихлорфлуоресцеином использовали 0,2%-ный раствор в 967о-ном этаноле. Под ультрафиолетовой лампой на зеленоватом фоне появлялись фиолетовые флуоресцирующие пятна. Пятна необходи.мо отмечать сразу же после опрыскивания, так как при испарении спирта флуоресценция исчезала, но появлялась вновь при повторном опрыскивании 2,7-дихлорфлуоресцеином. Вместо 2,7-дихлорфлуоресцеина с равным успехом можно использовать 3,6-дихлорфлуоресцеин. Несколько более слабое свечение пятен фосфолипидов дают флуо-ресцеин и родамин 60. [c.31]

Родамин В. 0,5 г родамина В растворяли в 100 мл этанола. Силикагель окрашивается в ярко-розовый цвет, пятна фосфолипидов обнаруживали при помощи ультрахемископа. Розоватые флуоресцирующие пятна на малиновом фоне. [c.46]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология