Цитратный буфер

Na-цитратный буфер (0,4 М Na-цитратный буфер [c.135]

Цитратный буфер — 0,01 М раствор, pH 4,0. [c.317]

Натрий-цитратный буфер, pH 3,3 (0,4 М по Na+) [c.125]

Фосфат-цитратный буфер — 0,2 М раствор Na2HP04, 0,1 М раствор лимонной кислоты. [c.318]

Методика опыта. В четыре колбы Эрленмейера емкостью 100 I отмеряют по 5 мл фильтрата. В каждую колбу добавляют по 0,025 ацетата кальция, перемешивают и нагревают смесь 15 мин на водя бане при 70° С. Следует строго следить за температурой, а поэто лучше пользоваться термостатом. Колебание температуры допускает не более 0,5° С. По окончании нагревания колбы быстро опуска в холодную воду или охлаждают под краном. В каждую колбу доба ляют по 5 мл цитратного буфера (pH = 5,6). В две контрольные ко бы добавляют по 20 мл реактива Фелинга (10 мл раствора 1 и 10 I раствора 2) и по 10 мл 2%-ного раствора крахмала и определя количество редуцирующих сахаров по Бертрану. [c.100]

К раствору карбобензилокси-Л-лейцина, полученному из 6,5 г Л-лейцина, ъ 4А мл 1 н. раствора едкого натра прибавляют 75 мл 2 н. раствора ацетата натрия, 150 мл цитратного буфера (pH 5), 6,5 мл анилина, 1,5 мл ледяной уксусной кислоты, [c.226]

Посторонние примеси. Проводят испытание, как описано в разделе Тонкослойная хроматография (т. 1, с. 92), используя в качестве сорбента силикагель Р1 и готовя мелкозернистый сорбент на фосфатно-цитратном буфере pH 6,0 ИР. В качестве подвижной фазы используют смесь 85 объемов хлороформа Р и 15 объемов метанола Р. Наносят на пластинку отдельно по 20 мкл каждого из 4 растворов в хлороформе Р, содержащих (А) 20 мг испытуемого вещества в 1 мл, (Б) 0,10 мг [c.317]

Молибдат аммония — цитратный буфер для витамина С. [c.476]

Роль активатора, который поддерживает достаточно большую концентрацию катализатора в растворе и одновременно сохраняет его каталитическую активность, играет аминоуксусная кислота в реакции гидролиза метиловых эфиров фенилаланина и других аминокислот [56]. Такую же функцию выполняет цитратный буфер, в среде которого протекают реакции гидролиза фторфосфатов [c.128]

И. X. применяется для разделения катионов металлов, напр, смесей лантаноидов и актиноидов, 2г и НГ, Мо и W, КЬ и Та последние разделяют на анионитах в виде анионных хлоридных комплексов в р-рах соляной и плавиковой к-т. Щелочные металлы разделяют на катионитах в водных и водно-орг. средах, щел.-зем. и редкоземельные металлы-на катионитах в присут. комплексонов. Большое значение имеет автоматич. анализ смесей прир. аминокислот на тонкодисперсном сульфокатионите.в цитратном буфере при повыш. т-ре. Аминокислоты детектируют фотометрически после их р-ции с нингидрином или флюориметрически после дериватизации фталевым альдегидом. Высокоэффективная И. X. (колонки, упакованные сорбентом с размером зерен 5-10 мкм, давление для прокачивания элюента до 10 Па) смесей нуклеотидов, нуклеозидов, пуриновых и пиримидиновых оснований и их метаболитов в биол. жидкостях (плазма крови, моча, лимфа и др.) используется для диагностики заболеваний. Белки и нуклеиновые к-ты разделяют с помощью И. X. на гидрофильных высокопроницаемых ионитах на основе целлюлозы, декстранов, синтетич. полимеров, широкопористых силикагелей гидрофильность матрицы ионита уменьшает неспецифич. взаимод. биополимера с сорбентом. В препаративных масштабах И. х. используют для вьщеления индивидуальных РЗЭ, алкалоидов, антибиотиков, ферментов, для переработки продуктов ядерных превращений. [c.264]

Кинетика установления равновесия при взаимодействии а-химотрипсина с Ы-ацетил-Ь-триптофаном. Условия опыта pH 2,3 (цитратный буфер) 25° С ионная сила 0,0Ш [Р о = 5,9410- М. Концентрация свободного фермента определялась титрованием его -нитрофениловым эфиром N-aцeтил-L-тpиnтoфaнa [c.155]

Образцы можно растворять в смеси НСООН — СН3СООН — НгО (7 5 13) или в фосфатно цитратном буфере (0,7 мл 0,2 М раствора Na2HP04 19,6 мл 0,1 М раствора лимонной кислоты вода —до 200 мл). [c.134]

Разделение проводят в камере для низковольтного электрофореза (с. 89). Кюветы заполняют цитратным буфером. Вырезают полосы хроматографической бумаги шириной 4—5 см и наносят на них тканевой экстракт и стандартные растворы нуклеотидов- свидетелей в количестве, соответствующем 0,1—0,15 мкмоль каждого нуклеотида Разделение проводят в течение 4—5 ч при градиенте напряжения 15— 20 В/см и силе тока 0,5 мА на 1 см поперечного сечения бумажной полосы. Местоположение нуклеотидов идентифицируют в ультрахемископе. [c.184]

Метанол - фосфашый буфер 0.0] М перхлората аммоиия-0.0001 М гидроксида натрия - метанол Ацетонитрил - цитратный буфер (рП=6) [c.268]

М перхлората аммония - 0.0001 М г и 1роксида натрия - метанол Цитратный буфер (р1 =7.3) [c.269]

Требуется определить, не содержит ли образец 6-метокси-8-аминохи-нолина большого количества загрязнений и каково точное значение его коэффициента распределения в данной системе растворителей (изопропиловый эфир — цитратный буфер [2]). Ход всей работы следующий [c.431]

РИС. 6-9. А. Зависимость скорости реакции, катализируемой дрожжевой гексокиназой в равновесных условиях (Ueq), от концентрации глюкозо-6-фосфата при постоянном отношении концентрации глюкозы к концентрации глюкозо-6-фосфата, равном 1/19 [37]. Реакционные смеси содержали 1—2,2 мМ АТР и 25,6 мМ ADP (pH 6,5). Б. Зависимость скорости реакции, катализируемой лактатдегидрогеназой из скелетных мышц кролика в равновесных условиях ( eq), от концентрации лактата при постоянном отношении концентрации пирувата к концентрации лактата, равном 1/35 [38]. Реакционные смеси содержали 1,7 мМ NAD, 30—46 мкМ NADH (трис-цитратный буфер, pH [c.34]

Прн работе на бумаге Шлайхера и Шюлля (589 с зеленой полоской) Rf 0,83 при использовании бумаги ватман № 3 Rf 0,66. Чистота продукта была доказана также методом противоточного распределения в системе 0,1 М раствора цитратного буфера (pH 5,0) и изоамилового спирта. Измерение производилось спектрофотометрически. Полученные данные согласуются с данными, рассчитанными для чистого соединения по методу Уэя и Беннетта [5]. Коэффициент распределения равен 0,046. [c.443]

ДИНИтродифеновой кислоты на колонке, заполненной крахмалом, при элюировании 1М цитратным буфером с pH 7,7 при 60°С. Наблюдаемая селективность разделения вполне удовлетворительна, но эффективность колонки очень умеренная. [c.111]

Выше рассмотрены основные закономерности хроматографии на силикагеле в нормально-фазовом режиме. Такой способ использования силикагеля — исторически первый, и с помощью его решено множество практически важных задач. Впоследствии силикагель в значительной степени был вытеснен обращенно-фазовыми сорбентами. Однако данные самого последнего периода свидетельствуют о том, что возможности силикагеля далеко не исчерпываются классической нормальнофазовой Хроматографией. Помимо относительно малополярных элюентов при хроматографии на силикагеле могут использоваться различные нетрадиционные подвижные фазы. При этом возможно получение хороших практических результатов даже для таких сорбатов, которые, как правило, рекомендуют разделять в обращенно-фазовом режиме. Механизм сорбции в таких случаях довольно сложен и изучен еще недостаточно. Обычно принято считать, что поверхность силикагеля слабокислая, и это иногда является причиной затруднений при нормальнофазовой хроматографии оснований. Установлено, однако, что современные марки силикагеля для ВЭЖХ, имеющие сферическую форму частиц, могут быть как кислыми, так и щелочными [128]. Это обстоятельство следует иметь в виду при разработке методик, так как высокое значение pH силикагеля может положительно сказаться на форме пиков оснований и селективности разделений. Аналогичен результат при применении буферированного силикагеля [343, 344]. Для получения этого материала силикагель пропитывали 0,1 М раствором соли или кислоты, после чего высушивали в вакууме и затем заполняли колонку суспензионным способом. В качестве подвижных фаз использовали обычные для нормально-фазовой хроматографии системы например, смеси гексана с диэтиловым эфиром в различных соотношениях. Пропитка силикагеля гидросульфатом натрия либо щавелевой, лимонной, винной кислотами способствовала существенному улучшению формы пиков изомеров гераниевой кислоты. Аналогичного эффекта для сорбатов основного характера — производных антраниловой кислоты — удалось добиться пропиткой фосфатно-цитратным буфером. Последний прием позволил также получить вполне симметричные пики ФТГ-производных аминокислот. [c.157]

Приготовление слоя окиси алюминия по Хонеггеру [81]. 25 г окиси алюминия G (фирма Mer k) смешивают с 50 мл дистиллированной воды или 0,1 М цитратного буфера pH 3,8. Полученную суспензию наносят на стеклянную пластинку размером 200X200 мм. После высушивания при комнатной температуре или при 110°С для получения нужной степени влажности (90—200%) слои, приготовленные из водной суспензии, опрыскивают подходящим буфером или, наоборот, слои, приготовленные из суспензии в буфере, опрыскивают дистиллированной водой. После нанесения образца проводят разделение. [c.161]

Для отделения Ni в виде соединения с диметилглиоксимом трехкратную экстракцию хлороформом проводят из цитратного буфера с pH 8,5—9, приготовленного соответствующим образом. Органическую фазу промывают разбавленным раствором аммиака, водой и реэкстрагируют 0,5 N раствором НС1. Водный слой промывают I4, добавляют в него цитратный буфер, регулируют pH до слабощелочной реакции и экстрагируют изоамиловым спиртом в виде соединения с диэтилдитиокарбаминатом. Спиртовый слой отделяют, фильтруют и колориметрируют при 368 ммк [1102]. [c.248]

М цитратном буфере рН=5,0, содержащем 0,003% Н2О. Планшеты выдерживали 15-50 мкл 4Н H2SO4. Оптическую плотность измеряли при длине волны 490 нм на автоматическом [c.275]

НЫЙ спиртовой раствор бромкрезолового пурпурного гидроксид натрия хлороформ 1 н. соляная кислота цитратный буфер с pH 3,5 (отвешивают 10,5070 г лимонной кислоты, переводят в мерную колбу на 500 мл, добавляют 100 мл 1 н. раствора гидроксида натрия и доводят объем до метки дистиллированной водой отмеривают 234 мл полученного раствора в мерную колбу на 500 мл, доводят объем до метки 0,1 н. раствором соляной кислоты и перемешивают) основной раствор гидрохлорида диэтиламина (отвешивают 15,59 г диэтиламина солянокислого или 10,44 г диэтиламина (основания), переводят в мерную колбу на 1 л и разводят водой до метки (если взят диэтиламин, предварительно добавляют 12 мл концептрироваиной соляной кислоты)) рабочий раствор гидрохлорида диэтиламина, содержащий 10 мг/л аминного азота (5 мл основного раствора разбавляют до 1 л) 0,1 и. раствор серной кислоты [c.452]

Рис, 4. Спектр ЭПР парамагнитного фосфорорганического ингибитора (й=10" М) без (1) и в присутствии (2) бутирилхолинэсгеразы Условия концентрация фермента 63 мг/мл 0,1 М фосфат-цитратный буфер pH 6,5 Тсоо 1 1 с Яи-=1,0 Э Р=10 мВт. Спектры записаны на лУаНап Е-Ю9 [c.104]

Цитозин- Р-О-арабинозид КЗЭ Цитратный буфер 40 мМ pH = 2,5 экстракция [c.365]

По собственному поглощению на пластинке в коротковолновом УФ-свете можно определить 3 цг кислоты, которая после непродолжительного нагревания до 120° при 365 ж fl флуоресцирует голубоватым светом. Нижний предел чувствительности с иодоплатинатом (желтоватое пятно на розовом фоне), фосфорномолибденовой кислотой (серо-синее пятно) и смесью молибдат аммония — цитратный буфер (голубое пятно) — величина того же порядка, а щелочной раствор нитрата серебра (реактив № 137) (серо-черное пятно) является менее чувствительным. В качестве специфичных растворов для опрыскивания упомхшаются также какотелин и хлорид титана (II), дающие фиолетовое и соответственно оранжевое окрашивание [34]. [c.247]

В ионообменном методе разделения смесь хлоргщов редкоземельных элементов подвергают бомбардировке не 1тронами, вследствие чего образуются радиоактивные изотопы. Смесь затем растворяют, прибавляя в раствор цитратный буфер, и пропускают через колонку с катионитом. Колонку непрерывно промывают новыми порциями буферного раствора и вытекающую жидкость направляют мимо окна счетчика Гейгера в приемник, собирающий жидкость фракциями. [c.272]

Рассчитать процентное содержание цвиттерионов и катионов глицина в цитратном буфере с pH 4,15, если [c.37]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология