Липиды аннулярные

Иммобилизация липидов может происходить в результате латерального фазового разделения, приводящего к образованию гелевой фазы, или при их взаимод. с белками. Предполагается, что интегральные белки окружены пограничным слоем липидных молекул (т. наз. аннулярные липиды), подвижность к-рых ограничена или, по крайней мере, нарушена в результате контакта с неровной пов-стью белковой глобулы. [c.30]

Функциональное значение аннулярных липидов обычно интерпретируют, исходя из экспериментальных наблюдений, согласно которым большая активность белков проявляется в менее вязком липидном окружении. Это показано, например, для цитохром-с-оксидазы, встроенной в искусственные липидные мембраны разного состава, или в случае АТФаз в мембранах ауксотрофных микроорганизмов. [c.59]

Термин пограничный липидный слой был введен в связи с появлением и развитием концепции о суп ествовании особого стационарного слоя липидов, связанного с поверхностью белковой молекулы, в котором физико-химические параметры липидов отличаются от таковых в основной части бислоя. Под стационарностью понимают отсутствие липидного обмена за время, сравнимое с временем оборота фермента ( 10" с). Пограничные липиды называют также аннулярными. В то же время нет убедительных экспериментальных доказательств различного поведения пограничных липидов и липидов основной части бислоя. Это связано с использованием разных методов исследования, для которых характерны неодинаковые временные интервалы изучения динамики липидных молекул. [c.59]

Фосфолипаза В катализирует отщепление гидрофильного спирта от фосфоглицеридов и сфингомиелинов. В результате отщепления полярных головок от молекул фосфолипидов могут нарушаться электростатические взаимодействия фермента с молекулами окружающих его фосфолипидов, в частности, кислого липида — фосфатидилсерина, являющегося, по-видимому, аннулярным липидом для ацетилхолинэстеразы. Фосфатидилсерин, а также фосфатидилэтаноламин локализованы преимущественно во внутренней половине липидного бислоя. Можно предположить, что гидролиз фосфолипидов и фосфатидилсерина не вызывает конформационных изменений молекул фермента, затрагивающих его активный центр, поэтому активность АХЭ при обработке мембран фосфолипазой практически не изменяется. Необходимо отметить, что обработка мембран фосфолипазой индуцирует изменения упаковки и подвижности фосфолипидов, вязкости и асимметрии липидной фазы, белок-липидных взаимодействий. Воздействие УФ-излучения на модифицированные мембраны приводит к нарушениям в функционировании мембраносвязанной АХЭ, отличающимся по направленности от таковых при облучении интактных мембран. Эти нарушения являются результатом изменения конформационного состояния продуктов гидролиза фосфолипидов в мембране при воздействии УФ-света. [c.162]

Изменения в функционировании мембраносвязанной Na% К+-АТФазы в УФ-облученных мембранах, предварительно модифицированных фосфолипазой D, являются, по-видимому, результатом изменения конформационного состояния аннулярных липидов, нарушения белок-липидных взаимодействий, ответственных за проявление каталитической активности фермента. [c.172]

Особенности межмолекулярных взаимодействий в мембранах. Физические основы внутримембранных взаимодействий. Липид-липидные, белок-липидные и белок-белковые взаимодействия в мембранах, их роль в функционировании биомембран. Понятие об аннулярных липидах. [c.282]

Аннулярные липиды по своему поведению и подвижности отличаются от суммарного липидного бислоя. Белковые молекулы ограничивают подвижность прилипающих к их поверхности липидов, и аннулярный слой оказывается более упорядоченным. [c.22]

Время обмена молекулами между аннулярным слоем и суммарным липидным фондом зависит также от структурированности мембраны, а значит, от температуры, жирнокислотного состава ее компонентов, характера взаимодействий молекул липидов друг с другом и т. д. Липиды способны образовывать упорядоченные области с общей системой координат — кластеры, в которых плотность упаковки может существенно отличаться от соседних с ними частей. Время жизни кластеров порядка 10 —10 с, количество молекул в кластере — от нескольких десятков до сотен, а межкластерные зоны могут образовывать зоны дефектов, облегчающих проникновение в бислой модификаторов. [c.31]

Результаты, указывающие на снижение подвижности аннулярных липидов относительно суммарной липидной фазы, получены разными методами. Флуоресцентный анализ свидетельствует о повышении микровязкости бислоя при внедрении в него белковых молекул. ЭПР-спектроскопия обнаруживает ограничение подвижности зондов в бислое с присутствующими в нем белками. Растворение мембранных белков неионными детергентами приводит к получению солюбилизированных белок-липидных комплексов. Вероятнее всего, это комплекс белка с аннулярными липидами. [c.41]

Это означает, что гидрофобное окружение белков не обязательно должно быть специфическим. Изучение подвижности аннулярных липидов в мембранных препаратах Са-АТФазы показало, что вокруг белка не существует долгоживущего слоя липидов, по крайней мере при температуре выше 7 кр, необходимой для функционирования мембранных ферментов теплокровных. Время обмена прочно связанных липидов с соседними молекулами составляет величину порядка —10 с это несоизмеримо меньше продолжительности одного ферментативного цикла. Следовательно, аннулярные липиды могут многократно обмениваться с общей липидной фазой уже в течение одного реакционного цикла и на его ход влиять не могут. [c.43]

Действительно, если контролировать солюбилизацию мембранных фосфолипидов детергентами с помощью высокочувствительных методов, можно убедиться, что повышение концентрации детергента экстрагирует из нативной мембраны все имеющиеся там липиды с одинаковой скоростью, не различая прочно связанные (аннулярные) и свободные липиды (рис. 19). Более того, использование спин-меченых фосфолипидов в процессе реконструкции различных мембранных ферментов позволило измерить скорость обмена молекул фосфолипидов между аннулярным слоем и окружающими липидами. Для разных белков обнаруживается своя доля иммобилизованного липида. По вытеснению метки из аннулярного слоя при добавлении немеченого липида можно определить сродство каждого липида к поверхности белка. Характерно, что значения стехиометрии связывания белком пограничных липидов, измеренные этим методом и рассчитанные из геометрических размеров молекулы белка, практически совпадали. [c.43]

Значит ли это, что характер пограничного слоя липидов вообще не влияет на функцию мембранных белков Хотя пограничные липиды и обмениваются с липидами всей мембраны, обмен осуществляется между липидами, имеющими определенную структуру полярной головы, длину жирнокислотного хвоста и характер его насыщенности. В каждый момент времени вокруг белка находятся специфические липиды, которые способны к тесному взаимодействию с белковой молекулой. Таким образом, аннулярный [c.43]

К аннулярному окружению относится различное количество липидных слоев в зависимости от условий среды. Так, кольцо аннулярных липидов с ростом температуры, по-видимому, сжимается, при понижении температуры оно возрастает, достигая максимума при 7кр, ниже которой оно изменяется мало. [c.45]

Что такое аннулярные липиды [c.55]

Аииулены 1/312, 313, 377, 378 3/390, 1243, 1250 4/767 Аннулярные липиды 3/52 Анодирование, см. Анодное оксидирование [c.549]

Липид-белковое взаимодействие в мембранах проявляется при образовании внутри мембран специфичного липидного окружения вокруг белковых молекул. Такие липиды называются связанными или аннулярными (от англ. annular — кольцеобразный). В настоящее время, однако, окончательно не решен вопрос о возможности формирования вокруг белков в жидкокристаллических мембранах (при Г > Гфп) специфического липидного окружения, характеризующегося сравнительно медленным обменом с остальными липидами. Тем не менее с помощью метода ЭНР доказано изменение подвижности и характера упаковки углеводородных цепей под влиянием белков. Более того, методами ЭНР, ЯМР, флуоресценции и другими показано, что пертурбирующее действие различных интегральных и периферических белков (цитохром-с-оксидаза, цитохром с, полилизин, миелин, родопсин, белки тилакоидных мембран и др.) распространяется вплоть до четвертого слоя липидов, окружающих молекулу белка. [c.59]

Что такое аннулярные липиды, в чем состоят особенности их структурно-функционального состояния и значение для функхщониро-вания мембран [c.62]

Функциональная активность мембранных белков определяется их высокой конформационной лабильностью. В основе этого свойства лежит способность белковой молекулы осуществлять конформационный переход из напряженного (tensed, Т) состояния в расслабленное (relaxed, R) и обратно R—Г-пере-ход. Это приводит к изменению третичной, а часто и четвертичной структуры белка и изменяет взаимодействие белковых молекул друг с другом. Энергия конформационного перехода белков в мембране зависит от плотности упаковки (микровязкости) мембранных липидов, состояния непосредственно окружающих белок аннулярных липидных молекул. [c.22]

Белки в бислое также весьма лабильны. Время вращательнойг диффузии для белка в бислое может составлять величины, меньшие 1 МКС. Латеральная подвижность белка определяется не только его свойствами, но и микровязкостью липидного окружения, фазовым состоянием липидов. Таким образом, подвижность белковых молекул и их ассоциация в мембране контролируются липидами. Слои липидов, примыкающие к белку (пограничные, или аннулярные, липиды), упорядочены, т. е. их подвижность (по сравнению со свободными липидами) ограничена временами порядка 10 — 10- с. Это на 2—3 порядка больше, чем подвижность липидов безбелковом бислое. [c.31]

Рис. 18. Влияние белка на фазовые переходы липидного бислоя, измеряемые с помощью различных методов А — дифференциальная сканирующая калориметрия смеси дипальмитоилфосфатидилхолина с бактериородопсином (молярное соотношение липид белок указано над термограммами) Т — температура предперехода, Гг — температура фазового перехода. Б — поляризация флуоресценции 1,6-дифенилгексатриена при разных молярных соотношениях белок липид. Стрелка указывает на область насыщения аннулярного слоя вокруг молекулы бактериородопсина (22 молекулы липида на 1 молекулу белка)

Однако в последнее время представления о существовании аннулярных липидов стали подвергаться критике. Оказалось, что делипидированные ферменты активируются аннулярными липидами (как по отдельности, так и в разных соотношениях) не более чем на 10—30%. Многие неаннулярные липиды оказывают луч- [c.42]

Чем следует руководствоваться, выбирая детергент для использования Экстракцию периферических белков из мембранных фрагментов легко осуществить изменением pH, ионной силы или применением хелаторов двухвалентных катионов. После этого внеклеточные фрагменты политопиче-ских белков можно отщепить протеолизом. Иногда для выделения мембраносвязанных белков используют органические растворители, если нет необходимости в получении белков в нативном состоянии. Для выделения комплексов белка с аннулярными липидами используются неионные детергенты, в то время как при использовании ионных детергентов можно получить белок— детергентные комплексы. [c.91]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология