Карбонатные буферы

Молярный карбонатный буфер 2 10 130 65 198 233 0,66 0,28 [c.17]

В этой работе вы приготовите и испытаете карбонатный буфер. Вы сравните эффект добавления кислоты и основания к воде и к буферу. Учитель разделит вас на кислотную и основную группы. Прочтите методику и приготовьте таблицу данных. Данные расположите в таких колонках исходный pH, pH после 5 капель кислоты (основания), начальный объем основания (кислоты) в бюретке, конечный объем основания (кислоты) в бюретке, объем добавленного основания (кислоты). [c.459]

В некоторых случаях для получения требуемой величины pH можно смешать два буферных раствора, например карбонатный буфер с фосфатным буфером. [c.47]

Мол ярный карбонатный буфер 0,58 10 220 65 276 276 0,80 0,24 [c.17]

Карбонатный буфер плюс кислота [c.460]

Добавьте 40 мл 0,10 М раствора ЫаНСОз в чистую колбу Эрленмейера на 125 мл. С помощью чистой соломинки пропускайте выдыхаемый вами воздух (содержащий СО2) через раствор в течение 3 мин. Карбонатный буфер готов. [c.460]

Работал ли в вашем опыте карбонатный буфер Какие наблюдения подтверждают это [c.460]

Сравните объемы кислоты, необходимые для достижения одного и того же значения pH прн добавлении к воде и карбонатному буферу. Выполните такое же сравнение для оснований. [c.461]

Аммоний-бикарбонатный буфер 0,2 М или триэтиламмонийби-карбонатный буфер 0,05 М pH 8,0—8,1. [c.155]

Данные табл. 6 не совсем однозначны. Как указывают авторы, некоторые комплексы МА из-за плохой растворимости в условиях реакции находились частично в виде суспензии, и поэтому полученный ряд активности лигандов может быть в действительности несколько иным. Этой причиной объясняется, например, большая кажущаяся активность гистидина по сравнению с фенантролином. Кроме того, в работе [30] указывается на то, что применявшийся карбонатный буфер оказывает ингибирующее действие на [c.117]

W . ... Карбонатный буфер № 9 Насыщающий 1 10 [65]. [c.307]

В опытах с карбонатными буферами, в которых на каждую молекулу двуокиси углерода приходилось 1 ООО бикарбонатных ионов (и столько же, или даже больше карбонатных ионов), насыщение обычно наблюдалось примерно при том же, или даже более высоком, значении [ Og]. [c.309]

Так как эти опыты проводились в карбонатных буферах, наблюдаемые эффекты можно приписать либо изменениям [СОд], либо изменениям pH. , [c.326]

Иммуноанализ проводят следующим образом. Полистирольные пробирки (80X11 мм) покрываются антителами при обработке 1 мл раствора антител. Растворы антител разбавляют ОД М N a-карбонатного буфера (pH 9,8) или фосфатным (солевым) буфером. Пробирки с этими растворами оставляют на 3 ч при 37 °С для хранения раствор оставляют в пробирках на холоду. Перед определением необходимое число пробирок промывают 0,9%-ным хлоридом натрия, содержащим 0,05% твина 20. В каждую пробирку помещают 0,5 мл одного из следующих растворов 1) стандартный раствор иммуноглобулина G, 2) неизвестный образец, 3) буферный раствор. После этого добавляют 0,1 мл разбавленного конъюгата щелочной фосфатазы и иммуноглобулина G (приготовленного с помощью сщивапия глутаровым альдегидом). Для разбавления используют фосфатный (солевой) буферный раствор, содержащий 1% сывороточного альбумина человека и 0,02% азида натрия. Пробирки инкубируют при комнатной температуре в течение ночи (16 ч) на роторной мешалке так, чтобы поверхность, покрытая антителами, покрывалась 0,6 мл раствора, находящегося в каждой пробирке. Затем пробирки промывают три раза раствором Na l-твин. Количество фермента, присоединенного к иммуноглобулину G, связанному стенками пробирок, покрытых антителами, определяют, добавляя 1 мл 0,05 М Na-карбонатного буфера (pH 9,8), содержащего 1 мг/мл п-нитрофенилфосфата и 1 ммоль/л хлорида. магния. Через 30 мин реакцию останавливают, добавляя 0,1 мл 1 М ХаОН. Измеряют оптическую плотность при 400 нм и строят стандартный график зави-си.мости ферментативной активности (изменение оптической плотности в единицу времени) индивидуальных образцов от содержания в них иммуноглобулина G. [c.382]

Напишите уравнение, показываюшее, как карбонатный буфер крови противодействует. изменению pH при добавлении небольших количеств 0Н . [c.461]

Для определения Се в присутствии рзэ предложено множество методик, в которых используются в основном реакции окисления-восстановления при титровании или колориметрических измерениях (см. стр. 155, 192). Все они применимы для анализа смесей рзэ, однако нет надобности использовать, например, слишком чувствительные цветные реагенты для определения сравнительно больших количеств церия. Для этого удобно использовать реакцию образования пероксидного соединения в щелочной среде (карбонатный буфер, pH 10,5). При концентрации рзэ в растворе не более 2 мг1мл методика дает возможность с точностью до +2—3% определять от 0,01 до 0,6% Се в смеси по измерению поглощения при 304жл с с кюветой I 10 мм [142]. После окисления персульфатом в 0,Ш Н2504 подобная же спектрофотометрическая методика (Л, = [c.231]

В боратном или карбонатном буфере (при pH 10,5, установленном добавлением NaOH к борной кислоте или NaH Og) эта реакция заканчивается приблизительно за 2 чос.. Уменьшение тока второй волны фталевого альдегида в растворе, содержащем [c.386]

Иногда для приготовления буферного раствора применяют смесь кислой и средней солей, например так называемый карбонатный буфер NaH Og- - На2СОз. В этом случае ион НСОГ играет роль слабой кислоты, в то время как НвгСОд— соль этой кислоты. [c.204]

Было показано [80, 82], что Hormidium совсем не живет в карбонатных буферах клетки hlorella выносливее, но и на них влияют наиболее щелочные буферы Варбурга [89, 92]. В итоге все опыты, описанные до сих пор, не объясняют истинной роли карбонатных ионов в фотосинтезе. Происходящее иногда гювышечие [c.206]

Описанные выше эксперименты не обнаруживают какой-либо связи между обратимой абсорбцией двуокиси углерода у растений в темноте и восстановлением двуокиси углерода на свету. Теперь мы опишем опыты, которые указывают, что иная (хотя тоже обратимая и нефотохимическая) абсорбция двуокиси углерода тесно связана с фотосинтезом предположительно в качестве предварительной стадии этого процесса (как принималось в главе VII). Количество двуокиси углерода, участвующей в этой абсорбции, в 20—50 раз меньше, чем количество, учитываемое из равновесий двуокись углерода — бикарбонат, т. е. около 2 10- моль1л клеточного объема, или 5 10- % СОд на сухой вес клеток, или 0,5 мл углекислого газа на 10 г свежих клеток. С другой стороны, сродство к двуокиси углерода акцептора, обусловливающего эту абсорбцию, должно быть выше, чем у фосфатных или карбонатных буферов, так как его насыщение происходит при давлениях двуокиси углерода порядка 1 мм. Эта цифра получается из кривых зависимости фотосинтеза от концентрации двуокиси углерода. Эти кривые показывают полунасыщение при значениях [СОз] около 0,03°/о в воздухе. Одно из объяснений этого насыщения заключается в том, что кривые двуокиси углерода являются изотермами равновесия комплекса акцептор — двуокись углерода. Эти кривые могут быть искажены ограничениями притока и передачи, которые мешают равновесию карбоксилирования во время интенсивного фотосинтеза йли заставляют скорость процесса стать нечувствительной к концентрации двуокиси углерода задолго до полного насыщения комплекса СОд . Однако это искажение не меняет порядка величины концентрации двуокиси углерода, потребной для насыщения. Если комплекс СОд полунасыщен при концентрациях СОа в воздухе порядка 10- моль л, или 0,03%. то свободная энергия его образования должна быть порядка — 6 ккал при комнатной температуре (Рубен [119] определяет Д = — 2 ккал), т. е. это значительно более отрицательная величина, чем свободные энергии карбаминирования и карбоксилирования, приведенные в первой части настоящей главы, и даже бодее отрицательная, чем свободная энергия ассоциации двуокиси углерода с карбоангидразой. [c.209]

Водородные и гидроксильные ионы. Фотосинтез водорослей не особенно чувствителен к изменениям кислотности среды, но опыты с карбонатными буферами обнаружили некоторое вредное вдияние гидроксильных ионов. Уилмот [83] нашел, что фотосинтез у Elodea не изменяется при замене раствора угольной кислоты (pH в) бикарбонатным раствором (pH 9). [c.348]

Эмерсон и Грин [104] установили, что фотосинтез у hlorella не зависит от pH в фосфатных буферах (pH 4,6—8,9) и, вероятно также в умеренно щелочных карбонатных буферах. Карбонатно-би карбонатные буферы более высокой щелочности влияют на фото синтез даже такого устойчивого организма, как hlorella [107] Некоторые одноклеточные водоросли, например Hormidium, повреж даются любыми щелочными буферами [92]. [c.348]

Эти данные подтверждены более точными наблюдениями Эмерсона и Льюиса [24]. Они нашли, что у СЫогеИа поглощение кислорода в темноте значительно повышается после короткого освещения лучами с длиной волны 440—530 м] , с максимальным эффектом нри 470 Фиг. 81 иллюстрирует влияние света на поглощение кислорода. Клетки СЫогеИа (260 мм в 25 мл карбонатного буфера) до начала наблюдений находились около 75 мин. в темноте. Возрастание во времени общей скорости поглощения кислорода на свету (наблюдаемое при 480 Л д., а не при 485 или 560 M]i) показывает, что скорость дыхания постепенно растет за время освещения. При этом степень наблюдавшегося максимального увеличения скорости достигает 707о за время между 410 и 430 мин. Следует заметить, что интенсивность света в этих опытах была очень слабой. Суммарный газообмен (фиг. 81) никогда не превышает компенсационного пункта возможно, больший эффект будет наблюдаться при более интенсивном свете. [c.577]

Таким образом, мы вынуждены выбирать одно из двух или применять клетки, суспендированные в карбонатном буфере, работая при высоком нефизиологическом pH, или пользоваться кислым раствором с нефизиологически высоким содержанием двуокиси углерода, например фосфатным буфером, находящимся в равновесии с воздухом, содержащим 1—5% СО -, без такой высокой начальной концентрации запас двуокиси углерода в растворе, лишенном карбоната, будет на свету быстро исчерпан. [c.257]

Для многоклеточных объектов даже наличие сильно перемешиваемой среды с бикарбонатным буфером, повидимому, не всегда гарантирует от истощения двуокиси углерода. Вассинк [105], например, нашел, что фотосинтез 5-миллиметровых дисков, вырезанных из листьев, суспендированных в карбонатном буфере № 9 (7,9 10" моль/л СОд) и встряхиваемых в аппарате Варбзфга, все же был сильно лимитирован в отношении двуокиси углерода . Концентрация равновесия двуокиси углерода в атмосфере над этим буфером равняется 0,25 /q (см. табл. 18 и 21, т. I). Увеличивая начальное содержание двуокиси углерода в воздушном пространстве в некоторых случаях до 2 / о, а в других даже до 9°/о, Вассинк смог получить насыщение двуокисью углерода. Однако без точного знания размеров прибора трудно оценить конечную концентрацию двуокиси углерода и pH растворов в его опытах. [c.322]

Более эффективным средством обеспечения запасов двуокиси углерода in situ было бы непосредственное применение карбонатных буферов, впервые предложенное Варбургом. Однако при этом имеются некоторые затруднения, возникающие вследствие нефизиологической и изменяющейся щелочности этих буферов. От 0,1 Ж буфера № 1 (0,5-10" моль л СОд) к 0,1 Ж буферу № 11 (29-10" моль л СОд) pH уменьшается от 11 до 8,5. Так как все живые клетки более или менее чувствительны к избытку щелочности (хотя hlorella и кажется [c.322]

Другой источник искажения углекислотных кривых фотосинтеза был замечен Хаулзом (работа не опубликована) и Уиттингамом [120] в лаборатории Бригга. Они наблюдали, что фотосинтез hlorella в карбонатных буферах с низкими значениями [СОд] был зависим от времени, если клетки были перенесены в среду с недостаточным содержанием Og из среды с более высокой ее концентрацией (например, 4 /о). Начальная скорость была мала она увеличивалась в 3 раза за 2—3 часа и затем становилась постоянной. [c.325]

Когда б)грное выделение двуокиси углерода было нейтрализовано путем замены карбонатных буферов раствором углекислоты, Эмерсон и Льюис получили квантовые выходы порядка 0,1 независимо от режима предварительного освещения клеток, возраста культуры и состава воды, использованной для ее приготовления (некоторые микроэлементы, в особенности марганец, повидимому, все же оказывают влияние на квантовый выход). [c.528]

Эмерсон и Льюис не делали подсчета квантовых выходов по измерениям того типа, который представлен на фиг. 229 из оценки этих опытов они пришли к заключению, что у hlorella квантовый выход выделения кислорода (и потребления двуокиси углерода в тех случаях, когда бурное выделение СОд уже закончено) заметно не различается в кислом фосфатном буфере и щелочной карбонатной среде. Если это так, то абсолютные измерения квантового выхода лучше проводить в карбонатном буфере, где исключены все эффекты, связанные с обменом двуокиси углерода, и поэтому нет нужды в применении метода двух сосудов. Использование последнего метода зависит от сравнительно малых разностей измерения, и в соответствии с этим его точность невелика. [c.528]

Ряд определений квантового выхода у hlorella pyrenoidosa провели манометрическим методом Френч и Рабидо [35]. Эти определения должны были служить контролем к их измерениям с изолированными хлоропластами. Используя в качестве среды карбонатный буфер № 9, они нашли, что в красном свете (660—720 м 1.) значения Y лежат между 0,063 и 0,113, что соответствует 9—16 квантам на молекулу восстановленной двуокиси углерода. При этом не наблюдалось значительных колебаний в величине квантового выхода в пределах интенсивного света между 1,4 и 8 10 apzj Afi сек. [c.528]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология