Справочник химика 21

Химия и химическая технология

Статьи Рисунки Таблицы О сайте English

Буфер карбонатный

    Молярный карбонатный буфер 2 10 130 65 198 233 0,66 0,28 [c.17]

    Какой буфер карбонатный или ацетатный лучше взять для приготовления буферной смеси с pH 6,0  [c.32]

    Количество углекислоты, которое может выделить карбонатный буфер. Карбонатные буферные растворы могут поддерживать концентрацию углекислоты на определенном уровне при постоянном поглощении ее листом лишь ограниченное время. В зависимости от соотношения [c.27]


    В этой работе вы приготовите и испытаете карбонатный буфер. Вы сравните эффект добавления кислоты и основания к воде и к буферу. Учитель разделит вас на кислотную и основную группы. Прочтите методику и приготовьте таблицу данных. Данные расположите в таких колонках исходный pH, pH после 5 капель кислоты (основания), начальный объем основания (кислоты) в бюретке, конечный объем основания (кислоты) в бюретке, объем добавленного основания (кислоты). [c.459]

    В некоторых случаях для получения требуемой величины pH можно смешать два буферных раствора, например карбонатный буфер с фосфатным буфером.  [c.47]

    Мол ярный карбонатный буфер 0,58 10 220 65 276 276 0,80 0,24 [c.17]

    Карбонатный буфер плюс кислота [c.460]

    Добавьте 40 мл 0,10 М раствора ЫаНСОз в чистую колбу Эрленмейера на 125 мл. С помощью чистой соломинки пропускайте выдыхаемый вами воздух (содержащий СО2) через раствор в течение 3 мин. Карбонатный буфер готов. [c.460]

    Работал ли в вашем опыте карбонатный буфер Какие наблюдения подтверждают это  [c.460]

    Сравните объемы кислоты, необходимые для достижения одного и того же значения pH прн добавлении к воде и карбонатному буферу. Выполните такое же сравнение для оснований. [c.461]

    Аммоний-бикарбонатный буфер 0,2 М или триэтиламмонийби-карбонатный буфер 0,05 М pH 8,0—8,1. [c.155]

    Данные табл. 6 не совсем однозначны. Как указывают авторы, некоторые комплексы МА из-за плохой растворимости в условиях реакции находились частично в виде суспензии, и поэтому полученный ряд активности лигандов может быть в действительности несколько иным. Этой причиной объясняется, например, большая кажущаяся активность гистидина по сравнению с фенантролином. Кроме того, в работе [30] указывается на то, что применявшийся карбонатный буфер оказывает ингибирующее действие на [c.117]

    Концентрирование. Для концентрирования водных проб в 500—5000 раз обычно используют низкотемпературную вакуумную дистилляцию <35 °С). Сточные воды после первичной очистки концентрировали в 1000 раз, после вторичной очистки — до более высокой степени — примерно в 3000 раз. После концентрирования в вакууме остаток обрабатывали уксусной кислотой, чтобы разрушить карбонатный осадок и вновь растворить осажденные им органические вещества. Затем раствор центрифугировали, чтобы удалить неорганические соли. Осветленную жидкость замораживали и лиофилизировали. Высушенный замораживанием осадок помещали в хроматографический буфер [c.129]

    Эмерсон и Грин [104] установили, что фотосинтез у hlorella не зависит от pH в фосфатных буферах (pH 4,6—8,9) и, вероятно также в умеренно щелочных карбонатных буферах. Карбонатно-би карбонатные буферы более высокой щелочности влияют на фото синтез даже такого устойчивого организма, как hlorella [107] Некоторые одноклеточные водоросли, например Hormidium, повреж даются любыми щелочными буферами [92]. [c.348]


    Напишите уравнение, показываюшее, как карбонатный буфер крови противодействует. изменению pH при добавлении небольших количеств 0Н . [c.461]

    Буферные растворы для проведения ИФА. Буфер сенсибилизации — 0,05 М натриево-карбонатно-бикарбонатный буфер (КББ, pH 9,5 — 9,7) для сорбции АГ или АТ на твердом носителе. Состав буфера 1,18 г Na2 Oj 3,47 г NaH Oj 200 мг NaN03. Объем буфера доводят до 1 л дистиллированной водой. Возможно использование фосфатного буфера (см. буфер инкубации). [c.78]

    Устойчивость к изменениям pH называется буферным действием раствора, а раствор НАс и NaA представляет собой ацетатный буфер. Буферные растворы широко используются для поддержания устойчивого pH в лабораторных экспериментах, в химической промышленности они часто встречаются и в живых организмах. Карбонатная буферная система в крови человека, включающая реакцию [c.241]

    Роль буфера в крови выполняет главным образом гемоглобин. Однако важное значение имеет и система H2 O3-H OJ, Вычислите отношение [НСО ]/[Н СОз] в крови (pH = 7,4). К чему устойчивее pH этой карбонатной смеси-к добавлению кислоты или же к добавлению основания  [c.138]

    Для определения Се в присутствии рзэ предложено множество методик, в которых используются в основном реакции окисления-восстановления при титровании или колориметрических измерениях (см. стр. 155, 192). Все они применимы для анализа смесей рзэ, однако нет надобности использовать, например, слишком чувствительные цветные реагенты для определения сравнительно больших количеств церия. Для этого удобно использовать реакцию образования пероксидного соединения в щелочной среде (карбонатный буфер, pH 10,5). При концентрации рзэ в растворе не более 2 мг1мл методика дает возможность с точностью до +2—3% определять от 0,01 до 0,6% Се в смеси по измерению поглощения при 304жл с с кюветой I 10 мм [142]. После окисления персульфатом в 0,Ш Н2504 подобная же спектрофотометрическая методика (Л, = [c.231]

    Методика проведения ИФА в лунках планшета. Первый этап ИФА — сорбция соответствующего разведения АТ или АГ (в концентрации 10 — 20 мкг/мл) в карбонатно-бикарбонатном буфере (в объеме 0,1 мл) на твердую фазу в течение 1 - 2 ч при 37 °С и 10 — 12 ч при 4 °С (сенсибилизация). Затем отмывают лунки (для удаления несорбированного на носителе АТ или АГ) водопроводной водой, отмывочным буфером с 0,05 % твина-20 в течение 5 мин (два раза) при комнатной температуре. После этого вносят в каждую лунку (твердую фазу) по 0,1 мл 1%-го раствора БСА (бычьего сывороточного альбумина) на КББ и инкубируют в течение I ч при 37 °С для закрытия участков поверхности лунок, оставшихся свободными после сенсибилизации. Лунку отмывают от несвязанного БСА и вносят исследуемый материал (АГ или АТ) по 0,1 мл в разведениях на фосфатно-солевом растворе (pH 7,2) с 0,05 % твина-20. Каждое разведение материала вводят в две лунки и помещают в термостат на 1 — 3 ч при 37 °С. Отмывают непрореагировавшие в иммунной реакции АГ или АТ и вносят по 0,1 мл коньюгированных АТ против исследуемого АГ или АТ в рабочем разведении на фосфатно-солевом растворе с 0,05 % твина-20. Затем их инкубируют в течение 2 ч при 37 °С. Несвязанный конъюгат трижды отмывают буфером. [c.79]

    Иммуноанализ проводят следующим образом. Полистирольные пробирки (80X11 мм) покрываются антителами при обработке 1 мл раствора антител. Растворы антител разбавляют ОД М N a-карбонатного буфера (pH 9,8) или фосфатным (солевым) буфером. Пробирки с этими растворами оставляют на 3 ч при 37 °С для хранения раствор оставляют в пробирках на холоду. Перед определением необходимое число пробирок промывают 0,9%-ным хлоридом натрия, содержащим 0,05% твина 20. В каждую пробирку помещают 0,5 мл одного из следующих растворов 1) стандартный раствор иммуноглобулина G, 2) неизвестный образец, 3) буферный раствор. После этого добавляют 0,1 мл разбавленного конъюгата щелочной фосфатазы и иммуноглобулина G (приготовленного с помощью сщивапия глутаровым альдегидом). Для разбавления используют фосфатный (солевой) буферный раствор, содержащий 1% сывороточного альбумина человека и 0,02% азида натрия. Пробирки инкубируют при комнатной температуре в течение ночи (16 ч) на роторной мешалке так, чтобы поверхность, покрытая антителами, покрывалась 0,6 мл раствора, находящегося в каждой пробирке. Затем пробирки промывают три раза раствором Na l-твин. Количество фермента, присоединенного к иммуноглобулину G, связанному стенками пробирок, покрытых антителами, определяют, добавляя 1 мл 0,05 М Na-карбонатного буфера (pH 9,8), содержащего 1 мг/мл п-нитрофенилфосфата и 1 ммоль/л хлорида. магния. Через 30 мин реакцию останавливают, добавляя 0,1 мл 1 М ХаОН. Измеряют оптическую плотность при 400 нм и строят стандартный график зави-си.мости ферментативной активности (изменение оптической плотности в единицу времени) индивидуальных образцов от содержания в них иммуноглобулина G. [c.382]

    Тщательно отмытые от питательного раствора водоросли помещают в сосудик с 5—7 мл 0,1 М карбонатно-бикарбонатного буфера, который создает в манометрическом сосудике насыщающую фотосинтез концентрацию углекислоты 78,7X10 жл в водной фазе и около 0,3% в воздушной. Известно, что насыщающей для большинства растений является концентрация СО2, равная 0,3%, и что pH 9,4 и осмотическая сила буфера не изменяют интенсивности фотосинтеза (Рабинович, 1953). Таким образом, буфер представляет собой достаточно благоприятную среду для того, чтобы на время опыта помещать водоросли непосредственно в буфер. Плотность суспензии водорослей не должна превышать 20 млн. кл/мл при толщине слоя 1,0 см. Испытываемые вещества вносятся или непосредственно перед измерением в сосудик, или в опытные колбы с водорослями, откуда отбирается определенное количество водорослевых клеток, которые отмываются от питательного раствора и помещаются в буфер. Для установления темнературного равновесия, т. е. [c.229]


    В боратном или карбонатном буфере (при pH 10,5, установленном добавлением NaOH к борной кислоте или NaH Og) эта реакция заканчивается приблизительно за 2 чос.. Уменьшение тока второй волны фталевого альдегида в растворе, содержащем [c.386]

    На рис. 2.2,г представлена типичная кривая титрования относительно жесткой подземной воды, имеющей первоначальную величину pH = 7,8. Изгибы кривой около значений рВ=4,5 и 8,3 показывают, что первичным буфером является бикарбонатно-карбонатная система. Неправильности и отклопения от идеальной бикарбонатно-буферной [c.16]

    Требуемое количество геля замачивают для набухания в 10 М соляной кислоте 10 М соляную кислоту используют также для промывки геля в течение 15 мин. 1 г лиофильно высушенного геля набухает до объема 3,5 мл. Гель рекомендуется промывать в несколько приемов, используя на 1 г сухого геля 200 мл раствора. Сразу же после промывки добавляют раствор аффинного лиганда, который необходимо привязать к сефарозе. Оптимальные условия для связывания аффинного лнганда (pH, состав буфера и температура) зависят до определенной степени от характера лиганда. Как правило, реакция связывания наиболее эффективна при pH 8—10, но можно использовать и более низкие значения pH, если этого требует природа связываемого лигапда. Аффинный лиганд присоединяется в достаточных количествах даже и при этих pH, если увеличить количество бро.мциана при активации и количество лиганда при связывании. Аффинный ли1анд, в особенности белкового характера, растворяют в буфере с высокой ионной силой (около 0,5) для предотвращения неспецифической адсорбции. Высокая ионная сила облегчает затем последующую промывку.. Можно использовать карбонатный и боратный буферы с добавка.ми хлорида натрия. [c.190]

    Кроме карбонатного и фосфатного буфера, большое значение в регулировании pH крови имеют белковые буферные системы, состоящие из белка и протеинатов щелочных металлов. Белки — альбумин, глобулин — являются слабыми кислотами, в то время как их соли со щелочными металлами хорошо диссоциируют и обладают основным характером. [c.216]

    Иногда для приготовления буферного раствора применяют смесь кислой и средней солей, например так называемый карбонатный буфер NaH Og- - На2СОз. В этом случае ион НСОГ играет роль слабой кислоты, в то время как НвгСОд— соль этой кислоты. [c.204]

    Было показано [80, 82], что Hormidium совсем не живет в карбонатных буферах клетки hlorella выносливее, но и на них влияют наиболее щелочные буферы Варбурга [89, 92]. В итоге все опыты, описанные до сих пор, не объясняют истинной роли карбонатных ионов в фотосинтезе. Происходящее иногда гювышечие [c.206]

    Описанные выше эксперименты не обнаруживают какой-либо связи между обратимой абсорбцией двуокиси углерода у растений в темноте и восстановлением двуокиси углерода на свету. Теперь мы опишем опыты, которые указывают, что иная (хотя тоже обратимая и нефотохимическая) абсорбция двуокиси углерода тесно связана с фотосинтезом предположительно в качестве предварительной стадии этого процесса (как принималось в главе VII). Количество двуокиси углерода, участвующей в этой абсорбции, в 20—50 раз меньше, чем количество, учитываемое из равновесий двуокись углерода — бикарбонат, т. е. около 2 10- моль1л клеточного объема, или 5 10- % СОд на сухой вес клеток, или 0,5 мл углекислого газа на 10 г свежих клеток. С другой стороны, сродство к двуокиси углерода акцептора, обусловливающего эту абсорбцию, должно быть выше, чем у фосфатных или карбонатных буферов, так как его насыщение происходит при давлениях двуокиси углерода порядка 1 мм. Эта цифра получается из кривых зависимости фотосинтеза от концентрации двуокиси углерода. Эти кривые показывают полунасыщение при значениях [СОз] около 0,03°/о в воздухе. Одно из объяснений этого насыщения заключается в том, что кривые двуокиси углерода являются изотермами равновесия комплекса акцептор — двуокись углерода. Эти кривые могут быть искажены ограничениями притока и передачи, которые мешают равновесию карбоксилирования во время интенсивного фотосинтеза йли заставляют скорость процесса стать нечувствительной к концентрации двуокиси углерода задолго до полного насыщения комплекса СОд . Однако это искажение не меняет порядка величины концентрации двуокиси углерода, потребной для насыщения. Если комплекс СОд полунасыщен при концентрациях СОа в воздухе порядка 10- моль л, или 0,03%. то свободная энергия его образования должна быть порядка — 6 ккал при комнатной температуре (Рубен [119] определяет Д = — 2 ккал), т. е. это значительно более отрицательная величина, чем свободные энергии карбаминирования и карбоксилирования, приведенные в первой части настоящей главы, и даже бодее отрицательная, чем свободная энергия ассоциации двуокиси углерода с карбоангидразой. [c.209]

    Водородные и гидроксильные ионы. Фотосинтез водорослей не особенно чувствителен к изменениям кислотности среды, но опыты с карбонатными буферами обнаружили некоторое вредное вдияние гидроксильных ионов. Уилмот [83] нашел, что фотосинтез у Elodea не изменяется при замене раствора угольной кислоты (pH в) бикарбонатным раствором (pH 9). [c.348]

    Эти данные подтверждены более точными наблюдениями Эмерсона и Льюиса [24]. Они нашли, что у СЫогеИа поглощение кислорода в темноте значительно повышается после короткого освещения лучами с длиной волны 440—530 м] , с максимальным эффектом нри 470 Фиг. 81 иллюстрирует влияние света на поглощение кислорода. Клетки СЫогеИа (260 мм в 25 мл карбонатного буфера) до начала наблюдений находились около 75 мин. в темноте. Возрастание во времени общей скорости поглощения кислорода на свету (наблюдаемое при 480 Л д., а не при 485 или 560 M]i) показывает, что скорость дыхания постепенно растет за время освещения. При этом степень наблюдавшегося максимального увеличения скорости достигает 707о за время между 410 и 430 мин. Следует заметить, что интенсивность света в этих опытах была очень слабой. Суммарный газообмен (фиг. 81) никогда не превышает компенсационного пункта возможно, больший эффект будет наблюдаться при более интенсивном свете. [c.577]


Смотреть страницы где упоминается термин Буфер карбонатный: [c.379]    [c.28]    [c.215]    [c.50]    [c.217]    [c.68]    [c.205]    [c.112]    [c.113]    [c.161]    [c.90]    [c.201]    [c.218]    [c.129]    [c.83]    [c.376]    [c.205]    [c.207]    [c.208]    [c.310]   
Аналитическая химия (1994) -- [ c.112 ]




ПОИСК





Смотрите так же термины и статьи:

Карбонатный ИСЭ



© 2025 chem21.info Реклама на сайте