Фотосинтезирующая ткань

К липидам, при полном гидролизе которых образуются только глицерин, фосфорная кислота и жирные кислоты, относятся фос-фатидилглицерин[ % 1-0-(5п-фосфатидил-3 )-5п-глицерин —важный компонент фотосинтезирующих тканей, где он частично ассоциирован с 16 1 3 ки лoтoй, и дифосфатидилглицерин[20 ди-0-(5п-фосфатидил-3 )-5п-глицерин, кардиолипин], который обычно в основном содержит остатки линолевой кислоты и яВ яяется основным липидным компонентом митохондрий. Эти со- [c.74]

Дикват и паракват в применяемых дозах настолько быстро убивают активную фотосинтезирующую ткань, что ферментные системы сразу выходят из строя, и разложения препаратов не происходит [192—194]. Паракват и дикват активно разлагаются на поверхности листьев на прямом солнечном свету, особенно под действием ультрафиолетовых лучей (290—310 мкм) [195]. Дикват подвергается фотохимическому разложению гораздо бы- [c.63]

Анатомия фотосинтезирующей ткани у С4-растений [c.304]

Основная фотосинтезирующая ткань. Хлоропласты способны перемещаться к свету [c.255]

Фотосинтезирующие ткани высших растений могут прекращать свою фотохимическую активность по разным причинам Наиболее известны две из них — старение листьев осенью и со- [c.364]

Внешним проявлением полезного использования квантов света хлоропластами является поглощение углекислого газа и эквивалентное ему выделение кислорода, а также увеличение веса фотосинтезирующих тканей за счет фотосинтетического образования органических веществ в соответствии с уравнением [c.98]

Синтез каротиноидов в хлоропластах. В фотосинтезирующих тканях каротиноиды локализованы в хлоропластах весьма вероятно, что они и синтезируются в этих органеллах. Этиолированные проростки и выращенные в темноте культуры Euglena gra ilis синтезировали лишь небольшие количества каротиноидов, главным образом ксантофиллов. В ответ на кратковременное освещение нормальные хлоропластные каротиноиды синтезируются по мере образования функционирующих хлоропластов. Полагают, что действие света опосредовано фитохромом. Каротиноиды представляют собой неотъемлемую часть самой структуры хлоропластов, и регуляция их синтеза тесно взаимосвязана с синтезом хлорофилла и других компонентов хлоропластов (гл. 10). [c.82]

Фосфолипиды - это диэфиры ортофосфорной кислоты. В фотосинтезирующих тканях растений найдены различные глицерофосфолипиды, которые можно рассматривать как эфиры фоофатидовых кислот (фосфатиды), этерифицированные хо-лином, глицерином, этаноламином, инозитом (см. схему 14.17, б). Глицерофосфолипиды могут образовьгаать комплексы с белками (липопротеиды). [c.535]

Зеленые ткани растений своей окраской обязаны фотосинтетическому пигменту хлорофиллу, который в высоких концентрациях содержится в хлоропла-стах. Поглощение света хлорофиллом запускает в хлоропластах процессы переноса электронов, которые сопряжены с переносом протонов через мембраны тилакоидов и, как следствие, с запасанием энергии в биологически полезной форме (в виде молекул АТР) и восстановительных эквивалентов (в виде NADPH). Полученные таким путем АТР и ШОРН в свою очередь используются хлоропластами для превращения СО2 в сахара (см. гл. 9). При этом синтетическая активность хлоропластов такова, что позволяет фотосинтезирующим тканям экспортировать большие количества органических веществ во все остальные части растения. Эти вещества в основном представлены дисахаридом сахарозой, поэтому жидкость, заполняющая ситовидные трубки (флоэмный сок) содержит обычно от 10 до 25% сахарозы [c.178]

Фотосинтезирующая ткань, но содержащая меньше хлоропластов, чем столбчатая [c.255]

Фотосинтезирующая ткань (в основном листьев) [c.129]

Фотосинтезирующую ткань листа пронизывают многочисленные жилки , или проводящие пучки, состоящие из клеток ксилемы и флоэмы. По этим клеткам вода и минеральные вещества поступают в лист, а продукты фотосинтеза выводятся из него. Все эти проводящие пучки связаны в конечном счете со срединной жилкой листа, проходящей сквозь его черешок и соединяющейся с главной сосудистой системой растения. [c.97]

Последовательность реакций, в которых диоксид углерода связывается в процессе фотосинтеза, была впервые предложена в 50-х годах Кальвином ее часто называют циклом Кальвина или фотосинтетическим циклом восстановления углерода (см. схему 4). В отличие от световой реакции, свойственной только фотосинтезирующим тканям, синтез углеводов из диоксида углерода имеет много общего с реакциями, используемыми для синтеза углеводов в нефотосинтезирующих организмах. Тем не менее поражают масштабы этого процесса в зеленых растениях по самым минимальным оценкам растения ежегодно связывают около 35-10 кг углерода, причем для получения каждого грамма связанного углерода растение должно переработать более 6250 л воздуха. Хотя 99 % диоксида углерода, усваиваемого растениями из воздуха, связывается в процессе фотосинтетических реакций на свету, существуют и процессы темнового карбоксилирования [2], отличающиеся высокой скоростью и вносящие значительный вклад в общее количество связываемого углерода некоторых растений, в особенности суккулентов (сем. rassula eae). [c.398]

Два образца одного и того же вещества, находящиеся в разных условиях, могут иметь несколько разные максимумы поглощения, а также несколько разные интенсивности поглощения, но эта разница столь мала, что ее трудно заметить при изучении этих спектров по отдельности. Однако вариации в этих величинах гораздо легче уловить, если один из образцов использовать в качестве стандарта, против которого снимается спектр другого образца. Получаемые при этом дифференциальные спектры являются очень высокочувствительным средством, с помощью которого обнаруживают небольшие изменения в светопоглощающих свойствах. Например, дифференциальные спектры свет — темнота , в которых сравнивают поглощение света освещенным образцом и образцом, содержащимся в темноте, оказались чрезвычайно ценными при выявлении незначительных изменений этой величины, которые имеют место при освещении фотосинтезирующих тканей или частиц. Дифференциальные спектры окисленных и восстановленных форм были использованы для получения информации об участии цито-хромов в цепи переноса электронов и об окислительно-восстановительном состоянии отдельных цитохромов в определенных условиях. С помощью этого основного метода и многих его изощренных модификаций мы узнали очень много нового о физических состояниях пигментов и их функционировании в фотосинтезе и транспорте электронов. [c.26]

Из-за жестких клеточных стенок растения не могут питаться таким же способом, как животные. Поэтому растениям приходится использовать органические вещества, вырабатываемые их собственными фотосинтезирующими тканями. У зеленых растений фотосинтез происходит в хлоропластах, которые, таким образом, служат постоянным внутреш1им источником питательных веществ (разд 9.3). Органические продукты фотосинтеза могут непосредственно использоваться клетками для различных процессов биосинтеза, могут запасаться в виде осмотически инертных полисахаридов (обычно крахмала) или превращаться в сравнительно низкомолекулярные сахара (как правило, сахарозу), которые транспортируются в другие ткаии растения, например корни, в соответствии с метаболическими нуждами этих тканей. [c.182]

Механизмы концентрирования СОг существуют у некоторых водорослей и ряда высших растений с С4-ТИПОМ фотосинтеза. Группа С4-растений включает несколько родов в основном это тропические растения. К их числу принадлежат такие коммерчески важные культуры, как сахарный тростник, кукуруза и сорго, а также тропическая слоновья трава (Рептзе ит). В опытах с э врми растениями была зарегистрирована максимальная скорость образования сухого вещества у них имеется дополнительный цикл карбоксилирования- (С путь), который работает,, как насос, перекачивающий СО2 из атмосферы к месту восстановительной реассимиляции за счет ВПФ-цикла в клетках об-кладки проводящих пучков. Вначале углекислый газ атмосферы ассимилируется с образованием четырехуглеродных кислот (ма-лата и аспартата) в наружном (мезофильном) слое фотосинтезирующей ткани. Эти кислоты переносятся в слой клеток об- [c.46]

После отделения ядер хлоропласты могут быть осаждены (в случае анализа фотосинтезирующих тканей) путем центрифугирования яри 500—2000 g. Хотя дифференциальное центрифугирование по предложенной схеме в некоторых случаях и обеспечивает разделение ядер и хлоропластов, обычно фракция ядер оказывается загрязненной хлоронластами и наоборот. Для лучшего разделения компонеитов используют центрифугирование в градиенте плотности сахарозы. В общих чертах метод сводится к следующему. Центрифужную пробирку заполняют раствором сахарозы, так что его концентрация в пробирке плавно уменьшается в направлении снизу вверх. Например, в нижней части пробирки концентрация раствора сахарозы может составлять 1,6 М, тогда как в верхней части концентрация может соста- [c.11]

Гипотеза Мюнха чисто физическая, и не объясняет, почему ситовидные трубки должны оставаться живыми и метаболически активными. Она не объясняет также, каким образом клетки мезофилла листа способны загружать ситовидные трубки ассимилятами против осмотического градиента известно, что у флоэмы /о более отрицательный, чем у фотосинтезирующей ткани. С учетом этого гипотеза Мюнха бьша впоследствии дополнена — в нее включили механизм активной загрузки растворенных веществ в ситовидные трубки. Он подразумевает, что осмотический и гидростатический градиенты начинаются не в фотосинтезирующем мезофилле, а непосредственно во флоэме. Кроме того, полагают, что разгрузка флоэмы на уровне потребителей — тоже активный процесс. Такая современная версия гипотезы Мюнха называется гипотезой тока под давлением. [c.135]

Вартапетян Б. Б., Участие HjO в метаболизме фотосинтезирующих тканей. Физиология растений, 7, 414—418 (1960). [c.359]

Пероксисомам приписывают участие в метаболизме глико-лятов в фотосинтезирующих тканях [4760] и в удалении Н2О2 из животных тканей [4281]. Биогенез пероксисом пока неясен, хотя отмечалось близкое родство между этими органеллами и эндоплазматическим ретикулумом. [c.94]

Утечка растворенных веществ в обратном направлении через апонласт на входных участках ксилемы блокируется так называемыми поясками Каспари, которые по своей функции аналогичны плотным контактам между соседними энителиальными клетками животных (рис. 20-26). На выходе проводящих путей ксилемы особые паренхимные клетки, снабженные специфическими транспортными белками, локализованными в мембране, перекачивают растворенные вещества в фотосинтезирующие ткани. Большая часть растворителя (воды), проходящего по сосудам ксилемы, в конце концов испаряется, главным образом с поверхности фотосинтезирующих тканей листа. [c.404]

Лист — это обычно плоский орган. Его основная, фотосинтезирующая, ткань (мефозилл) пронизана сильно разветвленными жилками, состоящими из ксилемы и флоэмы. Лист окружен эпидермисом, покрыт воскообразной кутикулой. Многочисленные устьица, отверстость которых регулируется тургором замыкающих клеток, обеспечивают газообмен между внутренним пространством листа и атмосферой. [c.102]

Нитратредуктаза — индуцируемый фермент, синтезируемый в клетке в ответ на поступление N0 . Индуктором синтеза фермента у растений способны быть также органические нитросоединения и цитокинин. Уровень нитратредуктазы в растениях зависит от ряда факторов внешней среды, таких, как свет, температура, pH, концентрация СО2 и О2, водный потенциал, характер источника азота и др. При слабой освещенности активность нитратредуктазы в фотосинтезирующих тканях низка, что может вести к накоплению в листьях свободных неассими-лированных ионов N0 . Активность нитратредуктазы высока в меристематических клетках, ею богаты молодые листья и кончики корней. [c.229]

Фермент, катализирующий образование амилозы, называется крахмал-синтазой. В растительных тканях содержатся, по крайней мере, два изофермента крахмал-синтазы. Первым был открыт изофермент, тесно связанный с развивающимися крахмальными зернами. Второй изофермент крахмал-синтазы это растворимый фермент, присутствующий в амилопластах созревающих семян, клубней и других запасающих органах и в хлоропластах фотосинтезирующих тканей. Оба изофермента катализируют перенос В-гликопиранозного остатка от НДФ-В-глюкозы к невосстанавливающему концу 1,4-В-глюкана-рецептора или молекулы-затравки и прикрепление его гликозидной (1-4)-связью. [c.28]

Биосинтез триглицеридов можно подразделить на три этапа 1) образование остатков жирных кислот 2) образование остатка глицерола 3) присоединение жирных кислот к глицеролу. Главным источником образования компонентов триглицеридов являются гексозы, в первзоо очередь глюкоза и фруктоза, поступающие в созревающее семя в виде сахарозы из фотосинтезирующих тканей растения. Эти моносахариды фосфорилируются гексокиназой и подвергаются дальнейшим превращениям под действием ферментов гликолиза в цитоплазме клеток эндосперма или семядолей. Образующийся при этом пируват подвергается окислительному декарбоксилированию с образованием ацетил-СоА, который превращается в целый ряд СоЛ-производных под влиянием ферментов сферосом. [c.66]

Хотя и существует определенная корреляция между структурой и функцией хлоропластов данного типа у С4-растений,, тенденцию к появлению в фотосинтезирующей ткани аграналь-ных хлоропластов ие всегда можио рассматривать -как доказательство отсутствия ФС II (так, иапример, в хлоропластах красных водорослей встречаются только единичные ламеллы). [c.339]

Для ТОГО чтобы ПОНЯТЬ механизм фотосинтеза у С -расте-ний, прежде всего следует изучить те реакции, которые протекают в изолированных клетках и субклеточных фракциях. При сравнении таких препаратов с исходной фотосинтезирующей тканью не следует забывать, что скорость фотосинтеза у С -растеиий равна 200 мкмоль Oj-(мгХл) -ч . Поскольку реальная фиксация СО в конечном итоге идет только за счет ВПФ-цикла, при почти равном распределении хлорофилла листа между клетками разного типа скорость С4-цикла в клетках мезофилла будет составлять, как и скорость ВПФ-цикла в клетках обкладки проводящих пучков, 400 мкмоль-(мгХл) -ч . [c.362]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология