Определение лигнина в растительных тканях

Лигнин Класона существенно отличается от лигнина, содержащегося в исходном сырье, по нему нельзя изучать строение природного лигнина. И все же со временем сернокислотный метод стал основным аналитическим методом определения содержания лигнина в растительных тканях. Следует, однако, отметить, что он обладает существенными недостатками, так как конечный его результат зависит от многих факторов концентрации кислоты, температурного и временного режимов, природы исходного сырья. В связи с этим возникла необходимость стандартизации методики и исследователи [7] модифицировали метод Класона. [c.94]

Указанные операции обычно проводят в определенной последовательности. Вначале из растительного материала удаляют экстрактивные вещества, затем освобождают ткань от лигнина, после чего из оставшейся холоцеллюлозы выделяют полисахариды экстракцией различными реагентами. Полученную смесь полисахаридов разделяют на отдельные фракции, которые затем очищают с целью получения индивидуальных полисахаридов, свободных от посторонних примесей. [c.23]

Как и при сульфитной варке, гемицеллюлозы древесины хвойных пород переходят в раствор с некоторым опережением по сравнению с растворением лигнина, а при использовании древесины лиственных пород значительное растворение гемицеллюлоз начинается лишь после извлечения из растительной ткани основной массы лигнина. Степень полимеризации переходящих в раствор олигосахаридов определяется в первую очередь их природой. В табл. 7.2 приведены данные, полученные при хроматографическом определении моносахаридов в щелоках, отобранных в начальной стадии варки, когда растворилось менее 40 % массы древесины смеси хвойных и лиственных пород. Табличные данные представляют собой отношение концентрации моносахаридов после проведения инверсии щелоков к их содержанию в исходных щелоках. [c.211]

Определение лигнина в растительных тканях [c.373]

Различают качественное и количественное определение лигнина в одревесневших тканях растительного сырья, а также в технических целлюлозах и других волокнистых полуфабрикатах целлюлозно-бумажного производства. Качественное определение проводят с целью обнаружения присутствия лигнина, а количественное - для определения массовой доли лигнина. [c.373]

Минеральные вещества входят в состав растительных тканей. Их природа и количество зависят от вида растительной ткани, условий произрастания и других причин. Минеральные вещества разделяют на растворимые и нерастворимые во время гидролиза полисахаридов. Растворимые минеральные вещества состоят из солей калия, натрия н других металлов с угольной, серной, соляной и кремневой кислотами. Нерастворимые вещества, которые после гидролиза полисахаридов остаются в лигнине, состоят из окислов кальция, магния, железа, марганца и их солей с фосфорной и кремневой кислотами. При определении качества сырья, предназначенного для гидролиза, интересуются содержанием в нем растворимых минеральных веществ, так как, переходя в раствор во время гидролиза, они вступают в реакцию с серной кислотой, понижают ее концентрацию, что замедляет процесс гидролиза. [c.21]

Метод предназначен для определения метоксильных групп [22, 23] в растительных тканях, в лигнине и в сульфитном щелоке. Из всех метоксильных групп, содержащихся в древесине, 85—90% входит в состав лигнина и только 10—15% принадлежит метилированным углеводам и их производным. Метод основан на реакции разложения простых эфиров концентрированной йодистоводородной кислотой с образованием йодистого метила по уравнению [c.52]

Для определения лигнина в древесине хвойных и лиственных пород предназначен метод, основанный на удалении из растительной ткани углеводов и экстрактивных веществ [6, с. 85]. [c.55]

С аналитической точки зрения под лигнином понимают ту часть растительного материала, которая удаляется при выделении холоцеллюлозы и которая остается в нерастворимом остатке после гидролиза углеводов крепкими кислотами. Это понятие в некоторой степени условно. Возможно, что при выделении лигнина из древесины от природного лигнина (протолигнина) отщепляются какие-то группы, поэтому выделенный лигнин по своему составу и свойствам будет значительно отличаться от исходного природного лигнина. Однако, несмотря на условность, кислотные методы количественного определения лигнина до сих пор считаются наиболее приемлемыми. Результаты, полученные при прямом определении лигнина путем гидролиза углеводов крепкими кислотами, совпадают с потерей в весе при выделении холоцеллюлозы. Поэтому ту часть растительной ткани, которая в последнем случае переходит в раствор, можно практически считать идентичной с лигнином, выделенным при прямом определении. [c.81]

При количественном определении лигнина необходимо удалить из растительной ткани смолы, жиры и воски, так как они не растворяются при обработке минеральными кислотами. Эти вещества легко извлекаются различными органическими растворителями эфиром, бензолом, спирто-бензольной смесью. Чистый спирт применять не рекомендуется, так как он извлекает из древесины некоторое количество лигнина. [c.82]

Существенная трудность, с которой приходится сталкиваться при всех методах определения альдегидных групп, заключается в установлении времени, необходимого для окончания реакции. Иногда, как поступают, например, при определении медного числа, выбирают условное время. Часто также невозможно решить, реагирует ли данный реагент только с альдегидными группами или же происходят и побочные реакции. Выделенная из растительных тканей целлюлоза всегда содержит различные примеси, что усложняет проблему побочных реакций. Так, целлюлоза, полученная из древесины, всегда содержит небольшое количество лигнина, который является сравнительно легко окисляющимся веществом. [c.245]

При количественном определении лигнина приходится всегда опасаться возможности реверсии и осмоления углеводов. Если образуется осадок, не содержащий метоксильных групп, не следует принимать его за лигнин без детального химического исследования. Несоблюдение этого условия часто приводит к ошибочным выводам о содержании лигнина в растительных материалах. Так, до сих пор является спорным вопрос о наличии лигнина в молодых растительных тканях, мхах и водорослях (см. стр. 643). [c.577]

Гибберт признает, следовательно, наличие в лигнине между звеньями как С—О—С-связей, так и С—С-связей. Углерод-углеродные связи между звеньями образуются в лигнине преимущественно при его выделении из растительных тканей. В последних работах Гибберт не дает определенных схем строения лигнина, а говорит о структуре элементарного звена, указывая на характер связей между звеньями. [c.636]

Вопрос о структуре и молекулярной массе протолигнина, с одн троны, тесно связан с пониманием места и роли лигнина в структу [стительной ткани, а с другой - определяет подход к оценке хара ра его превращений в технологических процессах. Вместе с тем да однозначный ответ на этот вопрос не просто, так как извлечь основн] 1ссу лигнина из растительной ткани в неизменном виде невоэможь рособы его выделения различны, а методы определения молекул 1Й массы выделенных препаратов многообразны. В результате все того данные различных авторов по этому вопросу противоречивы. [c.117]

Однако до сих пор еще очень распространено мнение, чго молодые, только что образовавшиеся растительные ткани содержат лигнин в значительных количествах. Это ошибочное мнение основано на неправильных методах количественного опреде-лэния лигнина в этих случаях. Молодые ткани содержат значительные количества фруктозы. При кислотных методах количественного определения лигнина фруктоза дает гумифицированные осадки, которые некоторыми исследователями принимались за лигнин. Так, Бекман, Лише и Леман определяли содержание лигнина по солянокислотному способу в стеблях озимой ржи (посеянной в октябре) в Шести стадиях развития. В первой стадии (192 дня), при длине стебля в 22 см, содержание лигнина составляло 13,03%, а содержание метоксильных групп в лигнине— 3,03%. Во второй стадии, при еще зеленом состоянии стебля (223 дня) и длине 130 см, содержание лигнина составляло 17,24%, а содержание метоксильных групп в лигнине— 11,46% в конечной стадии (274 дня) стебли содержали 20,49% лигнина с 13,42% метоксильных групп. Таким образом, по данным этих исследователей, уже в первой стадии развития стебель содержит много лигнина, но лишь с низким содержанием метоксильных групп. [c.644]

Таким образом, спорный вопрос о наличии готового лигнина в только что образовавшихся молодых растительных тканях решается, повидимому, отрицательно. Вероятно, лигнин образуется в растениях постепенно, по мере одревеснения, и сразу с определенным содержанием хметоксильных групп. Образование лигнина (одревеснение), по мере роста растения, мол<но сравнить с филогенетическим появлением лигнина у высших растений 2 . Подобно тому, как лигнин начинает появляться только у наземных растений вследствие необходимости приспособления к условиям жизни, в молодых ростках одревеснение также наступает по мере необходимости приспособления молодого растительного организма к жизненным условиям. [c.649]

Лигнин содержит разнообразные функциональные группы. Содержание метоксильных групп в Л- различных типов неодинаково. Л. лиственных содержит больше метоксильных групп. Содержание гидроксильных групп в Л. разного происхождения тоже неодинаково и зависит также от способа выделения Л. из растительных тканей. Результаты определения тех или иных функциональных групп в Л. часто весьма отличаются в зависимости от используемого метода, что обусловлено сложностью и неустойчивостью структуры Л., а также наличием в нем функциональных групп, занимающих разное положение в молекулах. Лигнин Бьёркмаяа содержит ок. 1,15 ОН на одну ОСНз-грунпу, из них при41ерно 0,3 — фенольные. Содержание алифатических ОН-групп, следовательно, составляет ок. 0,85. Часть этих групп — первичные. [c.480]

Ткани живых и мертвых растений составляют основной компонент почвы и являются главным источником органического вещества для биодеградации. Основные компоненты растений, которые попадают в почву, — это целлюлоза (40%), гемицеллюлоза (30%) и лигнин (25%), остальное приходится на белки, жиры, нуклеиновые кислоты и т. д. Эти вещества в конце концов разрущаются под действием биологических и химических процессов с образованием множества простых и сложных химических соединений, часть из которых неблагоприятно влияет на рост растений. Первоначально исследования были в основном связаны с изучением возможного влияния растительных отходов и продуктов их распада на плодородие почвы. Пикеринг одним из первых обнаружил, что продукты распада токсичны для растений. Впоследствии многие исследователи подтвердили н расширили эти данные. В своем превосходном обзоре Патрик с сотр. 485] обобщили эти ранние исследования по определению и испытанию фитотоксинов, их специфическому действию на растения и специфичности отдельных фитотоксинов по отношению к определенным видам растений. Они установили, что пшеничная солома, оставленная на поверхности земли, иногда вызывает снижение урожая при следующем посеве пшеницы. Было показано, что этот негативный эффект частично связан с фитотоксичными веществами, образующимися при гниении растительных остатков [486, 487]. Более того, водные кислотные экстракты соломы злаков обладали умеренной ростоподавляющей активностью по отношению к корням и побегам пшеницы, кукурузы и сорго [488]. В Австралии Кимбер [489] обнаружил краткосрочное влияние гниющей пшеничной соломы на прорастание зерен пшеницы и овса. Он отметил, что в асептических условиях, исключающих влияние патогенной микрофлоры, степень ингибирования зависит от времени гниения. В ходе эксперимента измерялся рост корней и побегов в течение различных промежутков времени. Начальный рост корней при проращивании [c.258]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология