Коха чашки

Наиболее простым является седиментационный метод (Коха). Стерильные чашки Петри с плотной питательной средой открывают в местах отбора проб воздуха и экспонируют в течение определенного времени (5 - 30 минут), после чего закрывают и инкубируют Преимуществами этого метода являются легкость использования, экономичность, возможность применения различных дифференциальных питательных сред и множественных чашек. Однако его существенным недостатком является то, что на поверхности питательной среды преимущественно оседают более крупные частицы эффективность метода зависит от температуры воздуха, направления и скорости движения воздушных потоков, предел обнаружения не определен и переменчив, а достоверность результатов при количественном определении [c.770]

Можно отливать мембрану прямо на стекле. Для этого на стеклянную пластинку толщиной 5-7 мм кладут другую пластинку такой же толщины, но с овальным отверстием. Пластинки устанавливают строго в горизонтальной плоскости по уровню. Через овальное отверстие наливают коллодий, который растекается между пластинками равномерным тонким слоем. После испарения растворителя пластинки погружают в воду для отделения пленки. Пленку хранят в чашках Коха (см. рис. 61) под водой или в 30%-м этаноле. [c.36]

Для приготовления мембран на основе желатины фильтровальную бумагу погружают на 10-15 мин в 5-10%-й водный раствор желатины, нагретый до 40 °С. Вынутую из раствора бумагу некоторое время оставляют на воздухе, а затем еще влажной погружают в охлаждаемый льдом 4%-й раствор формальдегида на 30-45 мин. Пропитанную таким образом бумагу промывают в течение суток чистой проточной водой и хранят до применения в чашках Коха (см. рис. 61) под водой, содержащей 3-4 капли хлороформа. Вместо хлороформа во избежание появления плесени на дно чашки Коха кладут медную пластинку или свернутую в круг медную проволоку. [c.37]

Рис. 61. Чашки фарфоровые и кварцевые (а), Коха (б) и Петри (в)

Для определения численности бактерий в воздухе можно использовать более простой, но менее точный метод Коха (осаждением зародышей микроорганизмов на плотных питательных средах). Суть его сводится к следующему. Стерильные чашки Петри с питательной средой (МПА, МПЖ или кусок вареной картофелины) [c.76]

Высшие растения. В чашки Коха или кристаллизаторы наливают растворы по 150—200 мл указанных выше концентра- [c.46]

Пример условного обозначения чашки биологической (Коха) высокой номинальным диаметром 100 мм [c.87]

Фиксация парами формалина. Препарат помещают в чашку Коха на подставку, на дно чашки кладут вату, смоченную крепким неразбавленным формалином. Чашку закрывают и донышко слегка подогревают. На фиксацию требуется несколько минут. [c.70]

Чашка Коха с крышкой высокая типа ЧВ [c.80]

Пример оформления заказа. Чашка Коха с крышкой высокая типа ЧВ, ГОСТ 11232-65, 100 шт. [c.80]

Чистая культура. Под чистой культурой понимают потомство одной единственной клетки (клон). Получить чистую культуру, с несомненностью доказать ее чистоту и уберечь от загрязняющих организмов — главная задача микробиолога. Чистые культуры микроорганизмов, за редкими исключениями, выделяют на поверхности или внутри твердой питательной среды. Процедура начинается с отделения от клеточной популяции одной-единственной клетки, причем вырастающая из клетки колония тоже должна оставаться изолированной от других клеток и колоний. Аэробные бактерии выделяют по методу Коха-рассеивают суспензию по поверхности среды в чашках Петри или применяют менее [c.188]

При взвешивании на аналитических весах взвешиваемое вещество обязательно должно находиться в какой-либо таре часовое стекло, стакан, тигель, бюкс (рис. 243), чашка Петри (рис. 244), чашка Коха (рис. 245) и т. д. Масса тары должна быть предварительно определена на аналитических весах (т. е. с точностью до четвертого десятичного знака). [c.205]

Для выделения сшитого сополимера — гель-фракции осадок из центрифужных пробирок количественно переносят, смывая метилэтилкетоном в чашку Коха или Петри, предварительно взвешенную с точностью до 0,0002 г гпх). [c.167]

Растворитель из чашки Коха испаряют при комнатной температуре, остаток сушат в вакуум-сушильном шкафу при комнатной температуре и остаточном давлении 666 Па до постоянной массы. Чашку Коха с высушенным остатком взвешивают с точностью до 0,0002 г (тг). [c.167]

Содержимое колбы взбалтывают, разливают в пробирки и центрифугируют в течение 30 мин (в два приема по 15 мин). По окончании центрифугирования раствор над осадком осторожно по палочке сливают в чашку Коха, а в пробирки вновь добавляют оставшийся в колбе раствор и снова центрифугируют. [c.169]

Растворитель из чашки Коха (I) испаряют при комнатной температуре, остаток сушат в вакуум-сушильном шкафу при комнатной температуре до постоянной массы (/Пг). [c.170]

Для выделения привитого сополимера осадок из центрифужных пробирок количественно переносят гептаном в чашку Коха (П), предварительно взвешенную с точностью до 0,0004 г (шз). Растворитель из чашки Коха испаряют при комнатной температуре до постоянной массы (т ). В чашке Коха (П) остается привитый сополимер. [c.170]

Ход работы. Небольшие сосуды (чашки Коха) заполняют почвой, слегка уплотняя. На поверхность ее пульверизатором наносят раствор (суспензия или эмульсия) испытываемого препарата в количестве 4 мл на сосуд с содержанием действующего вещества, соответствующего 10 кг/га, а при вторичном скрининге— 10 5 2,5 1 кг/га. [c.157]

Рис. 67. Чашки Петри (слева) и Коха.

Чашки Коха отличаются от чашек Петри большим размером. Применяются для тех же целей. [c.681]

Для изучения роли бактерий в процессе атмосферной коррозии металлов их выращивали методом Коха. С этой целью в чашки Петри наливали агар, который 15 мин выдерживали в условиях свободного доступа воздуха, затем их закрывали и помещали в термостат, где выдерживали при температуре 37 °С в течение 48 ч. После этого культуру микробов применяли для испытаний. Для этого в колбах Эрлемейра емкостью 670 мл на капроновых нитях подвешивали образцы различных металлов, обработанные по общепринятой методике. Культуру бактерий разводили в 2 мл дистиллированной воды, для каждого опыта помещали в колбы (в контрольные колбы наливали также по 2 мл дистиллированной воды, но не обогащенной бактериями). Опыты проводили в лабораторных условиях в течение 40 сут при температуре 18 2 °С, которая не вполне благоприятна для жизнедеятельности бактерий. Несмотря на это, на торцах стальных пластин, помещенных в бактериальной среде, примерно через 24 ч были обнаружены очаги коррозии. В контрольной же колбе признаки коррозии были обнаружены на 9 ч позже. По истечении 20 сут в целях изучения форм бактерий, поселившихся на образцах, последние сразу же после извлечения из колбы обмывали стерильной водой (по 5 мл на образец). После этого под микроскопом МБИ-6 были обнаружены в основном кокки и палочки. Затем продукты коррозии удаляли с помощью соответствующих реактивов для каждого вида металла и образцы выдерживали в эксикаторе в течение 24 ч, после чего их взвешивали. Результаты исследований приведены в табл. II. 4. [c.41]

Методика опыта. Навеску 3—5 г свежего растительного материала (ячменя, ржи, пшеницы, молодых листьев и т. д.) помещают невысоким рыхлым слоем в фарфоровую чашку и фиксируют паром, для чего чашку помещают в работающий стерилизатор Коха на 20 мин. После этого растительную массу растирают и переносят с 15—20 мл теплой воды в коническую колбу емкостью 50 мл и ставят в водяную баню (для экстракции) при температуре 60— 80° С на 30 мин. Полученную разваренную массу фильтруют вначале через стеклянную вату, а затем через стеклянный фильтр № 4, осадок промывают 3—4 мл дистиллированной воды. Фильтрат и промывные воды собирают в мерную колбу емкостью 25 мл и содержимое ее доводят водой до метки. Отбирают пипеткой Мора 10 мл экстракта и выпаривают в небольшой фарфоровой чашке досуха. Сухой остаток растворяют в 1 мл воды. На полоску хроматографической бумаги (длина 55—60 см, ширина 5—6 см), отпустив 5 см от нижнего края, наносят в виде поперечной полосы 0,01 мл полученного концентрата. Пятно высушивают на воздухе и конец бумаги опускают в растворитель (насыщенный водой фенол). Хроматографическое разделение ведут нисходящим способом. Влажной камерой служит плотно закрывающийся аквариум, в который налито немного воды. После прохождения по бумаге фронта растворителя на расстояние 400мм (за 24—30 ч) от места нанесения испытуемого раствора хроматограмму подсушивают в вытяжном шкафу при комнатной температуре, а затем в сушильном шкафу при 70—80° С. Сухую хроматограмму проявляют, опрыскивая ее из стеклянного пульверизатора аммиачным раствором А НОз. После опрыскивания хроматограмму снова сушат в сушильном шкафу при 100—105° С. Через 5 мин бумага приобретает светло-коричневый цвет, а в местах расположения редуцирующих сахаров появляются темно-коричневые пятна (рис. 34). Эта реакция основана на восстановлении серебра редуцирующими сахарами. Для получения более четкой хроматограммы рекомендуют [c.156]

Стеклянные и кварцевые чашки Коха (рис. 61, б) используют для хранения твердых нелетучих веществ и для биологических работ, а чашки Петри (рис. 61, в), изготовленные из более тонкостенного стекла с невысоким бортиком, применяют в демонстрационных опытах при использовании проекторов типа Полилюкс или Кадоскоп , а также для взвешивания твердых веществ и выпаривания на воздухе растворов (как кристаллизаторы). [c.111]

Шйльного металлического столика Коха. Промывать их удобно на приспособлениях — перекладинах или на так называемых препаратодержателях — параллельно расположенных стеклянных палочках, соединенных резиновыми трубками (длина палочек 20—30 см, трубок 15— 20 см). Палочки устанавливают над фарфоровыми чашками или ваннами. [c.22]

Соляную кислоту плотностью 1,10 смешивают с жидким стеклом плотностью 1,06 (а для более плотного геля— 1,08) в равных объемах стекло осторожно прибавляют (при постоянном помешивании) к соляной кислоте. Для устранения возможности появления в толще геля чечевицеобразных полостей при стерилизации (по Н. М. Лазареву) раствор соляной кислоты и стекла нагревают до кипения и смешивают. Затем смесь перемешивают и разливают в чашки слоем не менее 0,7 см. Через 8— 12 ч образуется гель. Дав ему хорошо застыть и обсохнуть сверху, чашки с гелем помещают в эмалированную кастрюлю или в большой стеклянный сосуд 1 ставят под кран для промывки. На водопроводный кран надевают толстую каучуковую трубку, конец которой опускают на дно кастрюли или сосуда. Струя воды должна быть слабая. Промывают кремневые пластины до исчезновения следов хлора (проба 1 %-ного AgNOз в присутствии НЫОз), окунают в кипящую воду, а при необходимости стерилизуют в кипятильнике Коха при температуре 100°С 30 мин (3 раза через 24 ч). [c.119]

Проведение опытов с зоопланктоном имеет много общего с изложенным выше. Организмы отбираются из сетяных планктонных проб и рассаживаются по нескольку десятков экземпляров в чашки Коха с чистой морской водой. Организмы выбираются для опыта без видимых травматических повреждений. [c.281]

После 2—3-часового выдерживания в лабораторных условиях наиболее активные экземпляры отбираются пипеткой (под МБС-1) и берутся в эксперимент. Опыты проводятся з чашках Коха со 100 мл морской воды, содержащей заданное количество токсиканта, куда помещается по 10—15 организмов. При длительности опыта в несколько суток подопытные особи подкармливаются культурами диатомовых или перидиниевых водорослей. Параллельно ставится контроль. При наблюдении за выживаемостью организмов необходимо помнить, что время выживаемости их, взятых в одном и том же районе моря, но с интервалом, например, в один день, может расходиться в 2 и бо- ее раза. При этом по внешним признакам обе группы гидробионтов могут не отличаться одна от другой. [c.281]

Коха показало преимущество первого в отношении точности, быстроты, легкости в1з1полнения. Однако при определении кривых роста культуры счет па чашках дает лучшие результаты, очевидно, вследствие учета прибором как живых, так и мертвых бактерий (Mountney, Mollev, [c.90]

Кукуруза. Для определения жизнеспособности семян кукурузы Центральной контрольно-семенной лабораторией разработана следующая методика семена разрезают вдоль зародыша на две половинки, по одной половинке от каждого семени помещают в чашки Петри или Коха на слег-1еа увлажненную фильтровальную бумагу срезами вверх. Зародыши 7кизне- [c.232]

Количественные работы и успехи генетических исследований. Методы, с помощью которых можно выращивать в лаборатории микроорганизмы, разработали О. Брефельд, Р. Кох и его школа в прошлом веке. Введение в практику прозрачных питательных сред, уплотненных желатиной или агаром, позволило изолировать отдельные клетки, следить за их ростом в колонии и получать чистые культуры. Разработка стандартных методов стерилизации и приготовления питательных сред привела к быстрому развитию медицинской микробиологии. Хотя еще Кох описал количественные методы, их преимущества при работе с микроорганизмами были поняты только в последние 50 лет. Малые размеры микроорганизмов позволяют получать в одной пробирке или чашке Петри и исследовать популяции, состоящие из 10 -10 отдельных клеток, и благодаря этому выявлять такие редкие события, как мутация или передача приобретенного признака, не нуждаясь в сложных вспомогательных средствах и довольствуясь малым пространством. Огромные успехи биохимических и генетических исследований не в последнюю очередь достигнуты благодаря легкости обращения с бактериями. [c.21]

Число живых клеток. Обычно подсчитывают число колоний, образуемых жизнеспособными клетками в благоприятных для роста условиях. Если пользуются чашечным методом Коха, то равные доли соответственно разбавленной гомогенной суспензии клеток смешивают с расплавленной агаризованной средой (40-45°С) и выливают на чашки Петри. Можно также размазать суспензию по поверхности агара в чашке Петри с помощью (треугольного) шпателя Дри-гальского или же осадить клетки после фильтрования на агаризованную срду или на картонные диски с питательной средой. Во всех случаях после надлежащей инкубации подсчитывают число колоний. Применение чашечного метода Коха, а также различных его модификаций предусматривает подсчет клеток [c.191]

Навеску высушиваемого вещества равномерно распределяют по дну алюминиевой или фарфоровой кюветы, чашки Коха или Петри, или бюксов соответствующей формы. Вначале включают лампу, создают требуемую температуру (в центре освещенного круга, поместив туда резервуар термометра или термопару) и регулируют высоту рефлектора. После этого сосуд с высушиваемым веществом помещают в центр освещенного круга. Есл1 высушивание проводилось в бюксе, после окончания операции бюкс закрывают крышкой, охлаждают, как обычно, и взвешивают. [c.445]

Поверхность гелевой среды необходимо затем освободить от капельно-жидкой воды. Для этого чашки ставят в сушильный шкаф и верхние их крышки слегка лриопсрывают, что дает возможность нарам воды беспрепятственно испаряться. При этом нельзя допускать пересушку кремнекислого агара. Затем чашки прогревают в аппарате Коха и, если нужно, еще раз подсушивают. [c.566]

Раствор с осадком разливают в 3 или 4 центрифужные пробирки (в зависимсти от комплектности центрифуги) и центрифугируют в течение 30 мин (2 раза по 15 мин). Раствор над осадком осторожно по стеклянной палочке сливают в чашку Коха или Петри, а в пробирку вновь добавляют свежую порцию раствора и продолжают центрифугирование. [c.167]

После разделения раствора осадок промывают, добавляя в лробирки по 5 мл метилэтилкетона и тщательно размешивая стеклянной палочкой. Остаток на палочке после размешивания смывают в ту же пробирку небольшим количеством растворителя (до вместимости пробирки) и центрифугируют 15 мин. Операцию повторяют до полного удаления гомополистирола. Осадок считается отмытым, если при добавлении 2—3 капель раствора к 2 мл этилового спирта отсутствует помутнение. Промывные жидкости собирают в ту же чашку Коха. После центрифугирования в чашке Коха остается раствор, содержащий гомополистирол и небольшое количество привитого растворимого сополимера в центрифужных пробирках — осадок, содержащий привитый нерастворимый сополимер (гель-фракция), привитый растворимый сополимер. [c.167]

Для выделения из раствора гомополистирола и привитого растворимого сополимера, перешедшего в раствор, растворитель из чашки Коха испаряют при комнатной температуре, остаток сушат в вакуум-сушильном шкафу при комнатной температуре и остаточном давлении 666 Па (5 мм рт. ст.) до постоянной массы (в течение 1,5—2 ч). [c.167]

После разделения раствора из колбы осадок промывают, добавляя в пробирки по 5 мл метилэтилкетона и тщательно размешивая смывают в ту же пробирку небольшим количеством метилэтилкетона (до вместимости пробирки) и центрифугируют. Промывные жидкости сливают в ту же чашку Коха, осадок промывают до полного удаления гомополистирола. Осадок считается отмытым, если при добавлении 2—3 капель раствора к 2 мл этилового спирта отсутствует помутнение. После центрифугирования в чашке Коха находится раствор гомополистирола, а в центрифужных пробирках — осадок, содержащий привитый сополимер и этиленпропиленовый каучук. [c.169]

Для выделения гомополистирола растворитель из чашки Коха испаряют при комнатной температуре, остаток сушат в вакуум-сущильном шкафу при комнатной температуре до постоянной массы. В чашке Коха остается гомополистирол. [c.169]

Экспланты вставляли в застывший 1%-ный агар, налитый по 50 мл в чашки Петри или Коха, куда предварительно были внесены дефолианты. Чашки Петри использовали в опытах с эксиланта-ми кормовых бобов и семядольных листьев хлопчатника, чашки Коха — при работе с более крупными эксплаптами настоящих листьев хлопчатника. Все опыты были проведены в четырехкратной повторности, причем каждая повторность включала 10 зон отделения. Закрытые чашки выдерживали при температуре 25—28° и естественном освещении, интенсивность которого была снижена в 4 раза. [c.129]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология