Гемагглютинации реакция

Результаты реакции учитывают по наличию гемагглютинации — рыхлого осадка из склеившихся эритроцитов на дне и боковых поверхностях лунок ( зонтик ). В контролях гемагглютинации быть не должно (отмечается появление плотного осадка эритроцитов в виде пуговки или колечка). Пример учета микрометода РНГА представлен на цветной вклейке, рис. 14. [c.62]

Реакция обратной непрямой гемагглютинации РОНГА). Применяется для индикации бактериальных и вирусных АГ в исследуемом материале, а также для экспресс-диагностики ряда инфекций. [c.64]

Результаты РГА зависят от ряда факторов видовой и индивидуальной чувствительности эритроцитов, температуры, pH среды и т.д. Гемагглютинацию эритроцитов могут вызывать и некоторые микроорганизмы — стафилококки, эшерихии, а также сальмонеллы, шигеллы, холерный вибрион Эль-Тор. Поэтому при выявлении вирусов в материале, загрязненном бактериями, нужно с осторожностью подходить к оценке результатов реакции. [c.269]

Если в материале содержится специфический антиген, он соединяется с сывороткой, адсорбированной на поверхности лунок, и, в свою очередь, связывает иммуноглобулины на поверхности эритроцитов. В результате происходит агрегация эритроцитов (гемагглютинация). В описанной модификации реакция применяется для выявления антигенов ротавирусов и других вирусов в фекалиях больных. [c.279]

Бактериальные и эритроцитарные диагностикумы применяю г соответственно в реакциях агглютинации и гемагглютинации. [c.487]

Реакция пассивной гемагглютинации (РПГА) [c.215]

Количественный контроль реакций гемагглютинации и проверка активности агглютинирующих сывороток контроль реакций антиген — антитело [599—62)]. [c.11]

Реакция торможения гемагглютинации РТГА). Эта реакция основана на блокировании вирусных гемагглютининов специфическими антителами. Ее можно рассматривать как частный случай реакции нейтрализации. РТГА может быть использована как для серологической диагностики, так и для идентификации гемагглютинирующих вирусов. Феномен РТГА проявляется в образовании компактного осадка эритроцитов вместо зонтика гемагглютинации. Реакцию проводят на полистироловых пластинах и оценивают по отсутствию склеивания эритроцитов, добавленных к смеси вируса и специфической сыворотки. Для удаления или разрушения неспецифических ингибиторов гемагглютинации сыворотки, используемые для РТГА, предварительно обрабатывают перйодатом калия, каолином, бентонитом, ацетоном или другими веществами. Затем готовят двукратные разведения сыворотки в ИХН и к каждому разведению добавляют равное количество вирусосодержащей жидкости с активностью 4 ГЕ. Смесь инкубируют 30 — 60 мин при необходимой для данного типа вирусов температуре (0,4, 20, 37 °С), а затем добавляют равный объем 0,5 — [c.271]

В настоящее время все более широкое применение в качестве продуктов диетического и лечебно-профилактического назначения получают белковые изоляты сои. В эксперименте пероральное введение белкового изолята сои морским свинкам в дозе 120 мг/сутки приводило к усилению тяжести пищевой анафилаксии. Гуморальный иммунный ответ у этих животных характеризовался тенденцией к увеличению реакции пассивной гемагглютинации [59]. [c.512]

Сначала кроликов иммунизируют по Мильгрому. Для этого из ушной вены животного берут 2 мл крови, смешивают с 0,5 мл 3,8%-ного раствора лимоннокислого натрия, осаждают эритроциты и трижды отмывают их пятью объемами физиологического раствора хлористого натрия. К осадку отмытых эритроцитов прибавляют два объема инактивированной сыворотки человека группы АВ и, периодически помешивая, инкубируют смесь в течение 1 ч при комнатной температуре. Затем эритроциты вновь трижды отмывают, доводят объем суспензии физиологическим раствором до 2 мл и вводят в вену тому же самому кролику. Эти инъекции повторяют каждые 3 дня, пока титр антиглобулиновых антител не достигнет 1 1000—2000 в реакции пассивной гемагглютинации с эритроцитами НЬ (О) +, сенсибилизированными неполными анти-О-антите-лами с титром 1 32. [c.117]

Поскольку в большинстве гликопротеинов углеводная часть является определяющей для проявления специфической биологической активности, очень важное место в установлении концевой последовательности олигосахаридных цепей играют иммунохимические методы, которые одновременно позволяют непосредственно определить и структуру антигенных детерминантов. Так, испытывая ингибирующее действие различных моно-и олигосахаридов и их производных на нммунохимпческую реакцию исследуемого гликопротенна с соответствующей антисывороткой, можно сделать заключение о природе антигенных детерминантов . Этот путь играет особенно большую роль в исследовании гликопротеинов и оказался весьма плодотворным при изучении групповых веществ крози. Испытывалось ингибирующее действие на реакции гемагглютинации групповых веществ крови с соответствующими им антисыворотками различных веществ как продуктов частичной деградации этих биополимеров, так и модельных соединений. На основании этих данных были сделаны заключения о природе концевых моносахаридов в групповых веществах, являющихся антигенными детерминантами (обзор см. ). [c.575]

Реакция непрямой пассивной) гемагглютинации. Наиболее высокой адсорбционной способностью обладают эритроциты. Реакция с использованием эритроцитов называется непрямой, или пассивной, гемагглютинацией (РИГА, или РИГА). Для постановки РНГА могут быть использованы эритроциты барана, лошади, кролика, курицы, мыши, человека и другие, которые заготавливают впрок, обрабатывая формалином или пгютаральдегидом. Адсорбционная емкость эритроцитов уг(еличивается при обработке их растворами танина или хлорида хрома. [c.61]

Реакция торможения пассивной (непрямой) гемагглютинации (РТПГЛ). Реакцию проводят для обнаружения АГ возбудителей в исследуемом материале, добавляя к нему диагностическую иммунную сыворотку. При наличии гомологичного АГ происходит связывание АТ, поэтому после добавления сенсибилизированных АГ эритроцитов их агглютинации не происходит. Это расценивают как положительный результат. [c.63]

Во все лунки добавляют по 1 капле 1%-й суспензии сенсибилизированных эритроцитов (антительный эритроцитарный диагностикум) и тщательно встряхивают планшеты. Результаты реакции учитывают через 30 — 40 мин. При наличии специфического АГ гемагглютинации отмечается в первом и третьем рядах (с гетерологичной сывороткой) и отсутствует во втором ряду, где АГ предварительно нейтрализован гомологичной сывороткой. Реакцию сопровождают контролями сенсибилизированных эритроцитов на отсутствие спонтанной агглютинации. [c.65]

Реакция торможения обратной непрямой гемагглютинации РТОНГА). Данная реакция позволяет определить наличие АТ в сыворотках людей и животных. В ней принимают участие исследуемая сыворотка, АГ и антительный эритроцитарный диагностикум. [c.65]

После контакта компонентов смеси в течение 20 мин при комнатной температуре во все лунки вносят по 1 капле антительного эритроцитарного диагностикума и тщательно встряхивают. Через 1,5— 2,0 ч инкубации при комнатной температуре по гемагглютинации учитывают результаты реакции. Титром сыворотки является ее наибольшее разведение, которое полностью тормозит реакцию гемагглютинации с 4 агглютинирующими единицами АГ. [c.65]

Реакцию гемагглютинации куриных эритроцитов проводят на предметном стекле. В капле ИХН растирают петлю 18-часовой культуры вибриона и добавляют каплю 2,5%-й взвеси куриных эритроцитов. Холерный вибрион Эль-Тор агглютинирует эритроциты в течение 1 —3 мин, а классический биовар не вызывает их склеивания. [c.170]

С целью серологической диагностики могут быть также использованы реакции макроагглютингации, иммуноадсорбции и пассивной гемагглютинации. [c.232]

Серологическое исследование. Реакции агглютинации, преципитации, связывания комплемента, непрямой гемагглютинации, ИФА, иммуноблотинг или иммунофлюоресценции проводят с антигенами из грибов по обычным методикам, используемым для диагностики других инфекций. [c.318]

Для диагностики сифилиса выпускают кардиолипиновый антиген для реакции микропреципитации. Этот антиген включает 3 очищенных липида 0,03% 1,3-дифосфатглицерина (кардиолипин), 0,27% фосфатидилхолина (лецитин) и 0,9% холестерина в абсолютном этаноле. Препарат выпускают в ампулах по 2 мл. Срок хранения — 4 год. Инактивированные вирусные диагностикумы используют в реакциях связывания комплемента, нейтрализации и торможения гемагглютинации. [c.487]

РУПЛ оказалась наиболее чувствительной реакцией по сравнению со всеми испытанными — конъюнктивальной пробой, реакцией пассивной гемагглютинации (РПГА) и РСАЛ. [c.212]

Реакция пассивной гемагглютинации по Бойдену позволяет выявлять агглютинины к растворимым аллергенам и гаптенам вследствие введения в реагирующую систему эритроцитов, соединенных с антигеном. Процесс соединения антигена с эритроцитами называют сенсибилизацией, а полученный таким образом искусственный корпускулярный антиген — сенсибилизированными эритроцитами. В РПГА используют эритроциты барана или человеческие О группы крови. В первом случае исследуемую сыворотку предварительно освобождают от гетерофильных антител к форсмановскому антигену поверхности бараньих эритроцитов. Эта реакция уже более 20 лет широко используется в исследовательских и прикладных целях благодаря своей чувствительности, позволяющей определять 0,003 — 0,006 мкг N антител в [c.215]

Вероятно, изучение диссоциации ГТХ под действием мочевины [14], рассмотренное выше, необходимо проводить параллельно с измерением отношения осей по вязкости. Такой подход позволил прийти к важному выводу о том, что угнетающее действие на гемагглютинацию, вызываемое вирусами, оказывают в равной степени основные молекулы ГТХ, половина и четверть молекулы (ГТХ 2 , ГТХ 2" и ГТХ 2" ). Более мелкие фрагменты не оказывают угнетающего действия на гемагглютинацию. Другими словами, существует определенный минимальный размер субъединиц ГТХ, необходимый для эффекта угнетения гемагглютинации под действием вирусов. Мягкая обработка, приводящая к диссоциации молекул ГТХ, не затрагивает углеводную часть молекулы и не оказывает влияния на активность той ее части, которая является субстратом для нейраминидазы. Действительно, все фрагменты ГТХ, обладающие ингибирующей активностью, дают положительную реакцию Шиффа (йодная кислота реактив Шиффа). Влияние размера молекулы гликопротеипа па его ингибирующие свойства было ранее подчеркнуто Готтшалком [32]. В дальнейшем этот вопрос специально изучали Фазекас де Санта Грос и Готтшалк [33]. [c.157]

Пуэ [20] и Перлманн с сотр. [19] показали, что после обработки препаратов ГТХ человека нейраминидазой их электрофоретическая подвижность изменяется приблизительно от —8,4-10" до —6,7-10 см сек в при pH 7. Это может происходить в результате уменьшения отрицательного или (по данным титрования) увеличения положительного заряда ГТХ. При pH 7 гидроксильная группа тирозина не заряжена и не может обусловливать такое изменение в подвижности. Пейп и Максфилд [45] нашли, что молярное количество аргинина в ГТХ, определенное по методу Сакагучи, увеличивается после действия нейраминидазы пропорционально количеству отщепленной NANA. Благодаря этому факту становится понятным обнаруженное увеличение положительного заряда, о котором было сказано ранее. В противоположность необычному поведению тирозина в ГТХ человека увеличение количества аргинина наблюдается в каждом из четырех исследованных гликопротеинов, оказывающих тормозящее действие на реакцию гемагглютинации под действием вирусов. В гликопротеипе, не оказывающем тормозящего действия (например, в фетуине), никаких изменений количества аргинина не обнаружено. [c.161]

Смотреть страницы где упоминается термин Гемагглютинации реакция: [c.216] [c.3] [c.3] [c.3] [c.4] [c.6] [c.168] [c.257] [c.257] [c.257] [c.269] [c.272] [c.280] [c.158] [c.23] [c.177] [c.66] [c.151] [c.165] [c.66] [c.139] [c.151] [c.159] [c.160]

Справочник химика 21

Химия и химическая технология